Establishment of high-efficiency regeneration system from in vitro leaves of ‘Jingzao 39’
-
摘要:目的 ‘京枣39’是一种优质的枣鲜食新品种,目前尚无有效的离体再生体系,影响了自根苗的培育和苗木纯度。为了解决枣遗传转化效率低等问题,本研究探究了枣叶片再生的不同影响因素,以期建立高效的叶片再生体系。方法 以‘京枣39’组培苗叶片为试材,研究了不同接种方式、基本培养基种类、植物生长调节剂种类和浓度配比对离体叶片直接诱导不定芽再生的影响。结果 正交试验结果表明:叶片正放的接种方式再生率远高于叶片反放,是‘京枣39’叶片再生不定芽的最佳放置方式;基本培养基对‘京枣39’叶片再生的影响要大于植物生长调节剂,且最优培养基为1/2 MS,最佳植物生长调节剂为细胞分裂素6-BA,本研究确立的‘京枣39’组培苗叶片再生的最优体系为1/2 MS + 1 mg/L噻苯隆 + 0.5 mg/L 6-BA + 0.2 mg/L NAA + 30 g/L麦芽糖 + 6 g/L琼脂,再生率可达79.17%,平均每叶片再生不定芽能达到4.67个。进而初探并建立了‘京枣39’组培苗的最佳扩繁体系为:MS + 20 g/L麦芽糖 + 6 g/L琼脂 + 3 mg/L 6-BA + 0.1 mg/L NAA,分枝率高达88%,平均分枝数达2.76枝;以及最适生根体系为:1/2MS + 20 g/L蔗糖 + 8 g/L琼脂 + 1.5 mg/L IBA + 0.3 mg/L NAA,生根率达90.91%,平均根长达4.08 cm。结论 ‘京枣39’叶片再生效率受外界影响因素很大,尤其是基本培养基种类和接种方式,且每个因素都不是独立起作用的。本研究为之后以‘京枣39’叶片为转基因材料进行枣相关基因功能验证建立了完整的培育体系,同时为加快枣的相关研究进程奠定基础。Abstract:Objective ‘Jingzao 39’ is a new high-quality jujube variety. There is no effective regeneration system in vitro at present, which affects the cultivation of self-rooted seedlings and the purity of seedlings. In order to solve the problems of low genetic transformation efficiency of jujube, different influencing factors of jujube leaf regeneration were explored in this study, in order to establish an efficient leaf regeneration system.Method Using the leaves of tissue cultured seedlings of ‘Jingzao 39’ as experimental materials, the effects of different inoculation methods, types of basic culture medium, types and concentration ratio of plant growth regulators on the direct induction of adventitious bud regeneration from detached leaves were studied.Result The results showed that the regeneration rate of the inoculation method with the leaves being placed upward was much higher than that of back up, which was the best placement method for the regeneration of adventitious buds from leaves of ‘Jingzao 39’. The effect of basic culture medium on leaf regeneration of ‘Jingzao 39’ was greater than that of plant growth regulator, and the optimal basic medium and plant growth regulator were 1/2 MS and cytokinin 6-BA, respectively. The optimal regeneration system for leaves of ‘Jingzao 39’ tissue cultured seedlings established in this study was 1/2 MS medium + 1.0 mg/L thiabenduron + 0.5 mg/L 6-BA + 0.2 mg/L NAA + 30 g/L maltose + 6 g/L agar, an average of 4.67 adventitious buds could be regenerated for each leaf. Then, the optimal propagation system of ‘Jingzao 39’ tissue culture seedlings was initially explored and established: MS + 20 g/L maltose + 6 g/L agar + 3.00 mg/L 6-BA + 0.10 mg/L NAA, with the branching rate up to 88%, and the average branch number of 2.76; the most suitable rooting medium was: 1/2MS + 20 g/L sucrose + 8 g/L agar + 1.50 mg/L IBA + 0.30 mg/L NAA, with rooting rate of 90.91%, and the average root length up to 4.08 cm.Conclusion The leaf regeneration efficiency of ‘Jingzao 39’ is greatly influenced by external factors, especially the basic medium type and inoculation method, and each factor does not play an independent role. This study establishes a complete cultivation system for the functional verification of interested gene with the leaves of ‘Jingzao 39’ as transgenic materials, and lays a foundation for accelerating the jujube research process.
-
Keywords:
- ‘Jingzao 39’ leaf /
- direct regeneration /
- adventitious bud /
- optimal medium
-
森林作为最重要的陆地生态系统,具有消减洪峰、涵养水源等生态服务功能,通常被称为“森林水库”[1]。森林水源涵养的能力主要体现在其枯落物层和土壤层[2],是森林发挥水源涵养功能的主体部分[3]。枯落物是森林生态系统结构中重要的一环[4]。作为降水降落至地表面先于土壤接触到的部分,枯落物具有涵养水源、拦蓄降水与径流、维持土壤湿度等重要作用[5]。林地土壤层的水文效则通过自身蓄水能力和入渗特性所体现,对降水分配、水分循环和土壤流失等过程具有显著作用[6]。研究枯落物和土壤的水文特征,揭示枯落物和土壤与生态环境要素之间的定性与定量关系,对研究森林生态系统的水土保持能力,合理规划和利用水资源方面具有重要意义[7]。
国内外学者对不同区域、不同森林植被类型的枯落物和土壤水文效应进行了大量研究[8-10],不同林分枯落物及土壤水文效应随立地条件、树种配置以及林分结构的变化而产生显著差异。近年来对冀北地区林地水源涵养功能的研究也取得一定成果,但多以完全郁闭的成熟林为研究对象,重点集中在不同林分类型、林分密度的比较研究[11-12],相较于人工成熟林,人工幼龄林处于植被恢复的初期,也是目前人工抚育和经营管理的主要作业阶段,了解人工幼龄林的水源涵养能力,后期通过适宜的抚育方式和经营措施,优化林分结构,促进林木生长,抑制不利因素的发生,可为其发挥水源涵养主导功能提供支持,而目前对植被恢复下的不同人工幼龄林及其与灌木混交配置模式下的水源涵养功能研究甚少。
河北省崇礼区西沟流域植被稀少,大部分为荒山秃岭,且裸岩率较高[13],加上人为不合理开垦、放牧,使得该地区已有植被被破坏,水土流失问题严重,导致该地区植被水源涵养等生态服务功能难以充分发挥,严重制约区域社会和经济发展。为恢复和改善生态环境,西沟流域自2009年以来,先后通过人工营造、自然恢复等手段,建设了大面积的针叶纯林及其与灌木的乔灌混交林。由于地处崇礼区冬奥场馆周边,如何快速且充分发挥人工针叶幼龄林及乔灌混交林的水源涵养与水土保持功能,对于保障崇礼赛区冬奥场馆的正常运营、改善冬奥场馆周边小流域生态环境尤为重要。因此,亟需对人工针叶幼龄林及其不同混交配置模式的生态服务功能进行深入研究。为研究项目实施后冬奥周边小流域的林地水源涵养能力,以崇礼区西沟−羊草沟流域的5种典型配置模式的人工针叶幼龄林为研究对象,定量分析和比较其枯落物层及土壤层的水源涵养能力,为冬奥会崇礼赛区乃至整个冀北地区人工林的恢复、经营和水源涵养、水土保持功能的研究提供理论依据和科学参考。
1. 研究区概况
研究区位于河北省张家口市崇礼区驿马图乡的羊草沟流域(图1),地处冀北接坝山区,属于清水河支流−崇礼西沟流域,清水河(永定河水系上游)源头即起源于此,地理坐标为41°04′05″ ~ 41°08′30″N,114°58′30″ ~ 115°02′30″E,海拔在1 084 ~ 1 575 m之间,属温带大陆性季风气候,地形大部分为山地,地势东高西低、北高南低,受地形影响,结霜期较晚,年均降雨量456.8 mm,全年降雨集中在6—9月,降雨时空分布不均。土壤以山地褐土和栗钙土为主。
图 1 研究区地理位置图Ⅰ.落叶松纯林,Ⅱ.樟子松纯林,Ⅲ.落叶松柠条混交林,Ⅳ.樟子松柠条混交林,Ⅴ.樟子松落叶松柠条混交林。下同。Ⅰ, Larix gmelinii pure forest;Ⅱ, Pinus sylvestris pure forest;Ⅲ, Larix gmelinii and Caragana korshins mixed forest;Ⅳ, Pinus sylvestris and Caragana korshins mixed forest;Ⅴ, Pinus sylvestris, Larix gmelinii and Caragana korshins mixed forest. Same as below.Figure 1. Geographical location map of the study area2010年开始在荒山荒坡内实施封山育林和人工造林相结合的植被恢复与重建,坝头山地以营造水土保持林、防风固沙林和水源涵养林为主;阴坡、半阴坡土层较厚的坡面以落叶松(Larix gmelinii)、樟子松(Pinus sylvestris var. mongolica)为主;阳坡、半阳坡土层较薄,树种设计以樟子松、油松(Pinus tabuliformis)为主;沟壑设计栽植沙棘(Hippophae rhamnoides)、杨树(Populus simonii var. przewalskii),乔灌混交达到7∶3。混交方式以不规则块状混交和班间混交为主,现已形成华北落叶松(Larix gmelinii var. principis-rupprechtii)针叶纯林、樟子松针叶纯林、华北落叶松柠条(Caragana korshinskii)混交林、樟子松柠条混交林、华北落叶松樟子松柠条混交林5种主要人工林地。灌木林地主要有山杏(Armeniaca sibirica)、沙棘(Hippophae rhamnoides)等。
2. 研究方法
2.1 样地调查
于2021年5月初,在流域内选取了代表该区域管理后植被恢复都为12年的5块面积为20 m × 20 m的标准样地,包括Ⅰ落叶松纯林、Ⅱ樟子松纯林、Ⅲ落叶松柠条混交林、Ⅳ樟子松柠条混交林、Ⅴ樟子松落叶松柠条混交林(图1),并对5种不同配置模式的造林地进行了野外调查,包括GPS定位、每木检尺调查,并记录了海拔、坡向、坡度、郁闭度以及林分密度等,生长季初期林下无草本生长。表1记录了5个采样点的植物种类和地形信息。
表 1 样地类型和基本特征Table 1. Sample plot types and basic characteristics林分类型
Forest stand type海拔
Altitude/m坡度
Slope/(°)林龄/a
Stand age/year树高
Tree height/mDBH/cm 林分密度/(株·hm−2)
Forest density/(tree·ha−1)Ⅰ 1 521 20 12 2.35 3.75 950 Ⅱ 1 493 22 12 2.21 4.17 1 075 Ⅲ 1 286 22 12 3.24 3.55 1 250 Ⅳ 1 569 22 12 3.52 4.37 1 275 Ⅴ 1 249 23 12 2.68 3.86 1 125 2.2 枯落物调查
枯落物储量调查在每个样地内都选取3个(坡上、坡中、坡下)面积为0.2 m × 0.2 m的小样方,用钢尺分别测量未分解层和半分解层的厚度并记录,分层取样后装入牛皮纸袋中进行称鲜质量,然后带回放入烘箱在105 ℃下烘12 h后称干质量。
枯落物持水测定采用室内浸泡法[14]进行枯落物持水量和持水速率的测定。
枯落物有效拦蓄量计算通过枯落物持水、蓄积量以及自然含水率[15]进行推算,得到枯落物的有效拦蓄量。
2.3 土壤调查
土壤物理性质测定采用剖面法,在每块样地内选取3个样点挖取土壤剖面,由于该地区土层较薄,且多为砾石,加上每个样地土层深度不同,为保证所有样地取土层相同,所以仅在0 ~ 10 cm的土层取环刀土样,并用环刀法[16]测定土壤密度、孔隙度等物理性质。
土壤入渗测定采用原状土双环法[17]测定土壤入渗,在每块样地随机选取3个样点进行试验。
2.4 数据处理
采用Excel 2016和SPSS 22.0软件进行数据处理,使用ArcGIS 10.4.1和Origin 2021进行做图,采用单因素方差分析进行差异显著性分析(P < 0.05)。
3. 结果与分析
3.1 不同配置模式的枯落物蓄积量
由表2可知:5种配置模式的枯落物总厚度处于5.10 ~ 6.70 mm之间,总蓄积量处于2.55 ~ 4.50 t/hm2之间,其大小排序为樟子松纯林(4.50 t/hm2) > 樟子松落叶松柠条混交林(3.81 t/hm2) > 樟子松柠条混交林(3.76 t/hm2) > 落叶松纯林(3.64 t/hm2) > 落叶松柠条混交林(2.55 t/hm2)。5种配置模式枯落物的半分解层蓄积量及厚度均小于对应未分解层的蓄积量及厚度,半分解层枯落物的蓄积量大小排序为樟子松纯林 > 樟子松柠条混交林 > 落叶松纯林 > 樟子松落叶松柠条混交林 > 落叶松柠条混交林;未分解层枯落物的蓄积量大小排序为樟子松纯林 > 樟子松落叶松柠条混交林 > 樟子松柠条混交林 > 落叶松纯林 > 落叶松柠条混交林,落叶松柠条混交林与3种有樟子松的林地都表现为差异显著(P < 0.05)。
表 2 不同配置模式的枯落物厚度及持水情况Table 2. Litter thickness and water holding capacity of different configuration models林分类型
Stand type枯落物层
Litter layer枯落物蓄积量/(t·hm−2)
Litter volume/(t·ha−1)枯落物厚度
Litter thickness/mmⅠ 半分解层 Semi-decomposed layer 1.68 ± 0.15a 2.60 ± 0.34ab Ⅱ 2.03 ± 0.32a 2.90 ± 0.29a Ⅲ 1.08 ± 0.06b 2.30 ± 0.15b Ⅳ 1.69 ± 0.49a 2.80 ± 0.17a Ⅴ 1.61 ± 0.35ab 2.70 ± 0.14ab Ⅰ 未分解层 Undecomposed layer 1.96 ± 0.12ab 3.30 ± 0.11b Ⅱ 2.47 ± 0.15a 3.80 ± 0.06a Ⅲ 1.47 ± 0.11b 2.80 ± 0.09c Ⅳ 2.07 ± 0.63a 3.30 ± 0.26b Ⅴ 2.20 ± 0.08a 3.50 ± 0.05b 注:同列不同小写字母表示同一分解状态下各处理间差异显著(P < 0.05);表中数据为平均值 ± 标准差。下同。Notes: different lowercase letters in the same column indicate significant differences between treatments at the same decomposed layer(P < 0.05); the data in the table are mean ± standard deviation. The same below. 3.2 不同配置模式的枯落物持水能力
3.2.1 枯落物最大持水量和最大持水率
由表3可知:5种配置模式的枯落物总的最大持水率处于231.20% ~ 333.05%之间,其大小排序为樟子松落叶松柠条混交林 > 落叶松纯林 > 落叶松柠条混交林 > 樟子松柠条混交林 > 樟子松纯林。在半分解层和未分解层中,樟子松落叶松柠条混交林的枯落物最大持水率都为最大,分别是161.42%和171.63%,樟子松纯林的枯落物最大持水率都为最小,分别是126.70%和104.50%。
表 3 不同配置模式枯落物层的拦蓄能力Table 3. Interception capacity of litter layer of different configuration models林分类型
Stand type枯落物层 Litter layer 自然含水率
Natural moisture content/%最大持水率
Maximum water holding rate/%最大持水量/(t·hm−2)
Maximum water holding capacity/(t·ha−1)有效拦蓄率
Effective interception rate/%有效拦蓄量/(t·hm−2)
Effective interception capacity/(t·ha−1)Ⅰ 半分解层
Semi-decomposed layer15.09 ± 0.02ab 149.46 ± 40.02a 0.95 ± 0.32b 107.58 ± 40.33a 0.63 ± 0.04a Ⅱ 17.76 ± 0.03a 126.70 ± 33.18a 1.48 ± 0.34ab 92.60 ± 25.81a 0.70 ± 0.04a Ⅲ 15.09 ± 0.02ab 159.93 ± 50.38a 1.46 ± 0.35ab 123.52 ± 41.39a 0.71 ± 0.05a Ⅳ 17.76 ± 0.03a 151.23 ± 8.96a 1.30 ± 0.61a 123.59 ± 9.97a 0.68 ± 0.04a Ⅴ 11.01 ± 0.01b 161.42 ± 33.51a 1.33 ± 0.22ab 127.85 ± 27.67a 0.68 ± 0.05a Ⅰ 未分解层 Undecomposed layer 11.97 ± 0.04a 147.65 ± 27.28a 1.00 ± 0.07b 113.41 ± 25.04a 0.54 ± 0.02c Ⅱ 16.78 ± 0.06a 104.50 ± 11.61b 1.46 ± 0.41ab 74.56 ± 8.92b 0.71 ± 0.03b Ⅲ 11.97 ± 0.04a 120.11 ± 3.94b 1.17 ± 0.04ab 92.44 ± 2.58b 0.65 ± 0.03b Ⅳ 16.78 ± 0.06a 106.44 ± 5.14b 1.59 ± 0.33a 83.94 ± 3.93b 0.78 ± 0.04a Ⅴ 10.06 ± 0.02a 171.63 ± 9.42a 1.37 ± 0.16ab 137.33 ± 6.79a 0.69 ± 0.04b 枯落物总的最大持水量处于1.95 ~ 2.94 t/hm2之间,其大小排序为樟子松纯林 > 樟子松柠条混交林 > 樟子松落叶松柠条混交林 > 落叶松柠条混交林 > 落叶松纯林。在半分解层中,樟子松纯林的枯落物最大持水量最大,为1.48 t/hm2,而落叶松纯林最小,为0.95 t/hm2,5种配置模式之间无显著差异;在未分解层中,樟子松 柠条混交林的枯落物最大持水量最大,为1.59 t/hm2,而落叶松纯林最小,为1.00 t/hm2,樟子松柠条混交林和落叶松纯林差异显著(P < 0.05)。
3.2.2 枯落物有效拦蓄量
由表3可知:5种配置模式的有效拦蓄量处于1.17 ~ 1.46 t/hm2之间,其大小排序为樟子松柠条混交林 > 樟子松纯林 > 樟子松落叶松柠条混交林 > 落叶松柠条混交林 > 落叶松纯林。在半分解层中落叶松柠条混交林的枯落物有效拦蓄量最大,落叶松纯林的最小;在未分解层中樟子松柠条混交林的枯落物有效拦蓄量最大,落叶松纯林的最小。方差分析表明5种配置模式的有效拦蓄量在半分解层和未分解层的显著性与最大持水量一致,即5种配置模式在半分解层之间无显著差异,在未分解层樟子松纯林,落叶松柠条混交林和樟子松落叶松 柠条混交林之间无显著差异,但他们与另外两种配置模式之间差异显著(P < 0.05)。
3.2.3 枯落物持水过程
5种配置模式的枯落物半分解层和未分解层的持水过程变化趋势总体上大致相同(图2),在2 h内都快速上升,2 h后上升的速率逐渐减小,直到8 h后逐渐趋于稳定,在浸泡12 h时都已趋于饱和状态。对不同配置模式枯落物持水量和浸水时间进行统计分析,得出5种林分的关系式为(表4)Q = alnt + b,式中:Q为枯落物持水量(g/kg),t为枯落物浸水时间(h),a、b为方程系数[18]。
表 4 不同配置模式枯落物层持水量、吸水速率与浸水时间的关系式Table 4. Relationship between water holding capacity, water absorption rate and immersion time ofdifferent configuration models in litter layers林分类型
Stand type枯落物层
Litter layer持水过程
Water holding procedure吸水过程
Water absorption procedure回归方程
Regression equationR2 回归方程
Regression equationR2 Ⅰ 半分解层 Semi-decomposed layer Q = 138.28lnt + 1 087.4 0.989 4 V = 5 632.4t−1.822 0.951 1 Ⅱ Q = 137.38lnt + 883.7 0.964 1 V = 4 335.3t−1.770 0.947 1 Ⅲ Q = 96.27lnt + 1 310.4 0.980 1 V = 5 740.4t−1.758 0.944 5 Ⅳ Q = 121.49lnt + 1 051.0 0.979 1 V = 1 379.5t−0.935 0.999 7 Ⅴ Q = 191.92lnt + 1 185.7 0.951 3 V = 5 560.5t−1.837 0.948 5 Ⅰ 未分解层 Undecomposed layer Q = 133.70lnt + 1 100.7 0.976 6 V = 5 780.1t−1.829 0.948 7 Ⅱ Q = 107.70lnt + 745.9 0.971 9 V = 3 714.6t−1.786 0.946 0 Ⅲ Q = 88.59lnt + 920.2 0.958 7 V = 6 793.0t−1.840 0.953 6 Ⅳ Q = 86.81lnt + 824.8 0.977 2 V = 5 102.8t−1.887 0.957 3 Ⅴ Q = 153.35lnt + 1 286.5 0.970 5 V = 4 444.9t−1.862 0.951 9 3.2.4 枯落物吸水过程
由图3可知:5种配置模式的枯落物吸水速率变化规律基本一致,在2 h内最大且快速下降,2 h后吸水速率逐渐减慢,到6 h后逐渐趋于稳定,24 h时已经接近零。对不同配置模式枯落物吸水速率和浸水时间进行统计分析,得出5种配置模式的关系式为(表4)V = mtn,式中:V为枯落物吸水速率,g/(kg·h);t为枯落物浸水时间,h;m为方程系数;n为指数[19]。
3.3 土壤水文物理性质
3.3.1 土壤物理性质及持水能力
由表5可知:5种配置模式的土壤密度大小排序为落叶松纯林 > 樟子松纯林 > 落叶松柠条混交林 > 樟子松柠条混交林 > 樟子松落叶松柠条混交林。5种配置模式的土壤总孔隙度大小排序为:樟子松落叶松柠条混交林 > 樟子松柠条混交林 > 落叶松柠条混交林 > 樟子松纯林 > 落叶松纯林。樟子松落叶松柠条混交林的非毛管孔隙度和毛管孔隙度都最大,分别为7.93%和33.16%,落叶松纯林的非毛管孔隙度和毛管孔隙度都最小,分别为3.25%和28.19%。
表 5 不同配置模式土壤层的土壤持水及物理性质Table 5. Soil water holding capacity and physical properties of soil layers in different configuration models林分类型
Stand type土壤密度
Soil density/
(g·cm−3)非毛管孔隙度
Non-capillary porosity/%毛管孔隙度
Capillary porosity/%总孔隙度
Total porosity/%最大持水量/(t·hm−2)
Maximum water holding capacity/(t·ha−1)毛管持水量/(t·hm−2)
Capillary water holding capacity/(t·ha−1)有效持水量/(t·hm−2)
Effective water holding capacity/(t·ha−1)Ⅰ 1.62 ± 0.07a 3.25 ± 0.26b 28.19 ± 0.46b 31.44 ± 0.63b 516.21 ± 6.04b 468.45 ± 2.54b 47.76 ± 4.60b Ⅱ 1.56 ± 0.12ab 3.58 ± 0.52b 28.33 ± 1.28b 31.91 ± 1.80b 529.40 ± 13.21ab 477.28 ± 13.79ab 52.12 ± 2.88b Ⅲ 1.44 ± 0.02bc 5.14 ± 0.28ab 28.51 ± 0.87b 34.11 ± 1.51ab 550.89 ± 20.75ab 474.45 ± 18.70ab 76.44 ± 2.05a Ⅳ 1.42 ± 0.02bc 5.60 ± 0.75ab 29.27 ± 0.54ab 34.42 ± 0.33ab 557.10 ± 7.57ab 475.87 ± 3.43ab 81.23 ± 4.18a Ⅴ 1.20 ± 0.03c 7.93 ± 0.38a 33.16 ± 0.44a 41.09 ± 0.63a 645.36 ± 10.07a 558.57 ± 6.99a 86.79 ± 6.10a 5种配置模式土壤的最大持水量处于516.21 ~ 645.36 t/hm2,其大小排序为:樟子松落叶松柠条混交林 > 樟子松柠条混交林 > 落叶松柠条混交林 > 樟子松纯林 > 落叶松纯林,这与土壤总孔隙度、毛管孔隙度和非毛管孔隙度的变化规律一致。林地内有效持水量处于47.76 ~ 86.79 t/hm2之间,其中樟子松落叶松柠条混交林的有效持水量最大,是落叶松纯林的有效持水量的1.82倍。
方差分析表明:整体上,樟子松落叶松柠条混交林和2种纯林配置模式的土壤水文物理性质差异显著(P < 0.05),混交配置模式表现为樟子松落叶松柠条混交林和其他2种混交林配置模式的土壤水文物理性质无显著差异。
3.3.2 土壤入渗
由表6可知:5种配置模式的初渗速率和稳渗速率分别处于9.60 ~ 16.57 mm/min和2.10 ~ 5.34 mm/min之间。5种配置模式初渗速率和稳渗速率的大小排序都为:樟子松落叶松柠条混交林(Ⅴ) > 樟子松柠条混交林(Ⅳ) > 落叶松柠条混交林(Ⅲ) > 樟子松纯林(Ⅱ) > 落叶松纯林(Ⅰ)。樟子松落叶松柠条混交林初渗速率和稳渗速率分别是落叶松纯林初渗速率和稳渗速率的1.73倍和2.54倍。方差分析表明2种纯林和3种混交林配置模式的初渗速率差异显著(P < 0.05),且3种混交林配置模式的初渗速率之间差异显著(P < 0.05),落叶松纯林的稳渗速率与3种混交林配置模式都存在显著性差异(P < 0.05)。对土壤入渗的时间和速率进行拟合,得出二者符合幂函数关系:y = at−b,式中:y为入渗速率(mm/min);a、b都为方程系数;t为入渗时间(min)。
表 6 不同配置模式的土壤渗透速率及模型Table 6. Soil infiltration rate and model of different configuration models林分类型
Stand type初渗速率
Initial infiltration rate/(mm·min−1)稳渗速率
Steady infiltration rate/(mm·min−1)回归方程
Regression equationR2 Ⅰ 9.60 ± 0.28d 2.10 ± 0.26c y = 8.97t−0.47 0.932 9 Ⅱ 10.04 ± 0.34d 3.39 ± 0.33bc y = 9.82t−0.31 0.929 1 Ⅲ 11.71 ± 0.36c 3.54 ± 0.31b y = 10.43t−0.35 0.955 3 Ⅳ 13.91 ± 0.42b 4.61 ± 0.39ab y = 10.65t−0.26 0.919 8 Ⅴ 16.57 ± 0.38a 5.34 ± 0.35a y = 11.65t−0.24 0.865 8 4. 讨 论
4.1 不同配置模式下枯落物的蓄积量
枯落物储量的大小受树种组成、林龄、水热环境、凋落量、分解速率、地表累积时间等要素的综合影响[20-21]。本研究中,5种配置模式的枯落物厚度和蓄积量各不相同,樟子松纯林由于自身结构较优且适应能力强,其厚度和蓄积量均为最大(表2);5种配置模式下,枯落物的半分解层厚度和蓄积量均小于未分解层,这可能是由于所有树种都处于幼龄林阶段且分解时间较短,加上研究区总体降水量较低(401.6 mm/a),平均气温偏冷(3.5 ℃),且处于高寒半干旱地区,特定的地理气候环境导致枯落物累积和分解速率均较慢,这也与公博等[12]的研究结果一致。
4.2 不同配置模式下枯落物层的水文特征
枯落物的持水能力受树种、枯落物组成、蓄积量和分解速率等多重影响[22]。本研究中,5种配置模式的枯落物最大持水量、最大持水率以及有效拦蓄量的变化规律并不一致,这与枯落物的生物量及其自身结构有关[9]。总体而言,不论乔灌混交林还是纯林,樟子松林的枯落物持水量均偏大(表5),这可能是由于同龄樟子松本身适应能力强,生长状况更好,加之同龄樟子松叶片轮廓均大于落叶松,使得樟子松的外型与枯落物厚度较之同龄的落叶松均更大;另外一个可能原因是,樟子松林地的林分密度较高(表1),受林内环境因素的影响,樟子松林地的持水量均普遍较大。尽管枯落物持水量和吸水速率都与浸水时间呈现出较好的函数关系,但樟子松和落叶松林地持水和吸水变化规律与邓继峰等[23]、孙拥康等[24]的研究结果不同,这种差异可能与树种的生长阶段不同直接相关,也可能是区域、树种生物学特性等差异的影响所导致。
4.3 不同配置模式下土壤层的水文特征
由于不同森林植被类型生态学特性的差异,同一区域相同生境内,不同配置模式的土壤层蓄水渗透性能也表现出差异[6]。本研究中,5种配置模式的土壤水文物理性质变化规律一致,即3种混交配置模式的土壤物理性质和入渗性能均优于纯林,其中,樟子松落叶松柠条混交林在5种配置模式中均为最优,可能是由于樟子松 落叶松柠条混交林相对于其他4种配置,其树种组成,土壤层的腐殖物质以及根系生物量更为复杂多样(本研究测得樟子松落叶松柠条混交林的平均根质量密度最大,为2.13 kg/m3,落叶松纯林的平均根质量密度最小,为1.93 kg/m3)。腐殖物质和根系对土壤的改良调控作用导致土壤理化性质和入渗性能的变化显著。一方面,说明与柠条混交的配置模式对于林地土壤密度、孔隙度等土壤物理性质的提升显著,另一方面,说明樟子松和落叶松的混交配置模式产生的枯落物及其分解过程对林地蓄水能力提升有一定改善,三者的相互耦合,使得林地土壤的蓄水能力得到显著提高,从而为混交林地中不同植被的生长生存提供了更有利的土壤水文条件。这也与廖军[25]、公博等[12]的研究结论一致,不同配置模式的土壤水文物理性质存在一定的差异,混交林配置模式由于树种、枯落物组成以及根系分布更加复杂,比人工纯林有更强的水源涵养能力,可以有效地延缓地表径流的产生,减少水土流失,改善生态质量[26]。
5. 结 论
综合来看,樟子松落叶松柠条混交林的枯落物层和土壤层的水文性能都高于其他林地,即该人工林的水源涵养能力最强,足以说明树种选择和配置方式在人工林重建和恢复过程中的重要性,可以作为该地区首选的植被恢复模式。恢复方式对于新营造的森林结构和功能至关重要[27],然而当前研究区人工林经营和抚育作业开展仍较少,大多以单次人工林营造为主,并且仍存在林分结构单一、不合理的现象。目前的恢复方式侧重于树种组成、结构、自然栖息地、生态系统过程和服务的恢复[28]。人工造林对生态系统服务功能的构建不仅与造林区域的气候与土壤有关[29],也与造林树种、造林密度和经营管理措施的差异有关[30]。森林结构的复杂性在调节森林生态系统功能方面起着至关重要的作用,并强烈影响生物多样性[31]。林分空间结构是林分特征的重要研究内容之一,而林分结构对森林功能的发挥有重要影响作用[32],混交林的林分结构相较于纯林更为复杂,物种更加丰富多样。因此,迫切需要加强人工林经营管理,根据不同的环境条件,充分考虑树种和配置模式,通过结构化森林经营技术[33-34],实施针叶纯林改造技术,改善林分状态,提高林分稳定性。
-
图 1 J39离体叶片在3种培养基中不同接种方式直接再生不定芽示意图
A ~ C. 离体叶片分别在2、11、12号培养基中的初始诱导状;D ~ E. 叶片分别在2、11、12号培养基中暗培养14 d后的状态;G ~ I. 叶片分别在2、11、12号培养基以及2种接种方式下分化出不定芽,其中红箭头所指为叶片正放,其他为反放。A−C, the initial induction state of detached leaves in medium 2, 11, and 12; D−E, the state of leaves after dark culture in medium 2, 11, and 12 for 14 days; G−I, the leaves are differentiated into adventitious buds on medium 2, 11, and 12 under the two inoculation methods: the red arrow points to the leaf being placed upright and the other is reversed.
Figure 1. Schematic diagram of adventitious buds directly regenerated from J39 detached leaves in three media with different inoculation methods
图 2 无菌苗在3种糖源的扩繁体系中生长情况
A ~ B. 糖源为20 g/L蔗糖;C ~ D. 糖源为15 g/L麦芽糖和7.50 g/L蔗糖;E ~ F. 糖源为20 g/L麦芽糖。A−B, the source of sugar is 20 g/L sucrose; C−D, the sugar source is 15 g/L maltose and 7.50 g/L sucrose; E−F, the source of sugar is 20 g/L maltose.
Figure 2. Growth condition of sterile seedlings in the propagation system of three glycogens
表 1 离体叶片不定芽诱导再生正交试验
Table 1 Orthogonal test of induction of adventitious bud regeneration from detached leaves
水平
Level培养基种类
Type of medium (A)TDZ(B)/(mg·L−1) NAA(C)/(mg·L−1) 6-BA(D)/(mg·L−1) IBA(E)/(mg·L−1) 1 1/2 MS 0.00 0.00 0.00 0.00 2 MS 0.50 0.20 0.50 0.20 3 WPM 1.00 0.40 1.00 0.40 表 2 离体叶片不定芽诱导再生正交试验因素水平
Table 2 Orthogonal test factor level of adventitious bud induction and regeneration from detached leaves
水平
Level糖源
Glycogen (a)6-BA(b)/(mg·L−1) IBA(c)/(mg·L−1) NAA(d)/(mg·L−1) 1 蔗糖20.00 g/L Sucrose 20.00 g/L 1.00 0.00 0.00 2 麦芽糖15.00 g/L + 蔗糖7.50 g/L Maltose 15.00 g/L + sucrose 7.50 g/L 2.00 0.40 0.10 3 麦芽糖20.00 g/L Maltose 20.00 g/L 3.00 0.80 0.20 表 3 不同接种方式对J39叶片再生的影响
Table 3 Effects of different inoculation methods on leaf regeneration of ‘Jingzao 39’
试验号
Test No.接种方式
Vaccination method接种叶片数
Number of inoculated leaf平均芽数
Average number of bud2 叶正面朝上(正)
Leaf face up (positive)12 2.31 叶背面朝上(反)
Leaf dorsal facing up (reverse)12 0.52 11 叶正面朝上(正)
Leaf face up (positive)12 1.93 叶背面朝上(反)
Leaf dorsal facing up (reverse)12 0.67 12 叶正面朝上(正)
Leaf face up (positive)12 4.79 叶背面朝上(反)
Leaf dorsal facing up (reverse)12 0.71 表 4 离体叶片不定芽诱导再生正交试验结果
Table 4 Orthogonal test results of adventitious bud induced regeneration of detached leaves
试验号
Test No.A B/(mg·L−1) C/(mg·L−1) D/(mg·L−1) E/(mg·L−1) 平均芽数
Average number of bud1 1/2 MS 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 2 1/2 MS 0.50 0.20 0.50 0.20 2.24 3 1/2 MS 1.00 0.40 1.00 0.40 0.33 4 MS 0.00 0.00 0.50 0.20 0.00 5 MS 0.50 0.20 1.00 0.40 0.00 6 MS 1.00 0.40 0.00 0.00 0.00 7 WPM 0.00 0.20 0.00 0.40 0.00 8 WPM 0.50 0.40 0.50 0.00 0.00 9 WPM 1.00 0.00 1.00 0.20 0.23 10 1/2 MS 0.00 0.40 1.00 0.20 0.18 11 1/2 MS 0.50 0.00 0.00 0.40 2.22 12 1/2 MS 1.00 0.20 0.50 0.00 4.67 13 MS 0.00 0.20 1.00 0.00 0.00 14 MS 0.50 0.40 0.00 0.20 0.46 15 MS 1.00 0.00 0.50 0.40 0.08 16 WPM 0.00 0.40 0.50 0.40 0.00 17 WPM 0.50 0.00 1.00 0.00 0.04 18 WPM 1.00 0.20 0.00 0.20 0.00 K1 9.64 0.18 2.58 2.68 4.71 K2 0.54 4.97 6.91 6.99 3.11 K3 0.27 5.31 0.97 0.78 2.64 x1 1.60 0.03 0.43 0.45 0.78 x2 0.09 0.83 1.15 1.17 0.52 x3 0.05 0.89 0.16 0.13 0.44 R 1.56 0.86 0.99 1.03 0.34 注:Ki = Σ(该因素在i水平下的平均芽数),xi = Ki/n(n = 该水平的重复数),R为极差。下同。Note: Ki = Σ (the average number of buds of the factor at the i level), xi = Ki/n (n = the number of replicates at this level), R means range. The same below. 表 5 不同因素对J39不定芽再生数影响的极差分析
Table 5 Range analysis of effects of different factors on the regeneration number of J39 adventitious buds
因子
Factor水平1
Level 1水平2
Level 2水平3
Level 3R A 1.61 0.09 0.05 1.56 B 0.03 0.83 0.89 0.86 C 0.43 1.15 0.16 0.99 D 0.45 1.17 0.13 1.03 E 0.78 0.52 0.44 0.34 表 6 不同因素对J39不定芽再生数影响的方差分析
Table 6 Variance analysis of effects of different factors on the regeneration number of J39 adventitious buds
因子 Factor SS df MS F P A 9.48 2 4.74 4.77* 0.05 B 2.75 2 1.37 1.38 0.31 C 3.14 2 1.57 1.58 0.27 D 3.37 2 1.69 1.70 0.25 E 0.39 2 0.20 0.20 0.83 误差 Error 6.95 7 1.00 总计 Total 26.08 17 注:F值 > F0.05表示显著差异,数值右上角标注“*”。Notes: F value > F0.05 means significant difference, with a “*” in the upper right corner of the value. 表 7 3种基本培养基对J39不定芽再生数影响的LSD多重比较
Table 7 Multiple comparisons of LSD of the effects of 3 basic media on the regeneration number of J39 adventitious buds
基本培养基
Basic medium基本培养基
Basic medium平均值差值
Mean difference标准误
Standard error显著性
Significance95% 置信区间
95% confidence interval下限
Lower limit上限
Upper limit1/2 MS MS 1.52* 0.61 0.03 0.22 2.81 WPM 1.56* 0.61 0.02 0.27 2.86 MS 1/2 MS −1.52* 0.61 0.03 −2.81 −0.22 WPM 0.05 0.61 0.94 −1.25 1.34 WPM 1/2 MS −1.56* 0.61 0.02 −2.86 −0.27 MS −0.05 0.61 0.94 −1.34 1.25 注:*显著性水平为0.05。Note: * means the significance level of 0.05. 表 8 J39幼苗扩繁正交试验结果
Table 8 Orthogonal test results of J39 seedling proliferation
试验号
Test No.a b/(mg·L−1) c/(mg·L−1) d/(mg·L−1) 分枝率
Branching rate/%1 蔗糖20.00 g/L Sucrose 20.00 g/L 1.00 0.00 0.00 47.37 2 蔗糖20.00 g/L Sucrose 20.00 g/L 2.00 0.40 0.10 85.00 3 蔗糖20.00 g/L Sucrose 20.00 g/L 3.00 0.80 0.20 68.42 4 麦芽糖15.00 g/L + 蔗糖7.50 g/L
Maltose 15.00 g/L + sucrose 7.50 g/L1.00 0.40 0.20 40.00 5 麦芽糖15.00 g/L + 蔗糖7.50 g/L
Maltose 15.00 g/L + sucrose 7.50 g/L2.00 0.80 0.00 56.52 6 麦芽糖15.00 g/L + 蔗糖7.50 g/L
Maltose 15.00 g/L + sucrose 7.50 g/L3.00 0.00 0.10 80.00 7 麦芽糖20.00 g/L Maltose 20.00 g/L 1.00 0.80 0.10 56.52 8 麦芽糖20.00 g/L Maltose 20.00 g/L 2.00 0.00 0.20 78.26 9 麦芽糖20.00 g/L Maltose 20.00 g/L 3.00 0.40 0.00 71.43 K1 200.79 143.89 205.63 175.32 K2 176.52 219.78 196.43 221.52 K3 206.21 219.85 181.46 186.68 x1 66.93 47.96 68.54 58.44 x2 58.84 73.26 65.48 73.84 x3 68.74 73.28 60.49 62.23 R 9.90 25.32 8.05 15.40 表 9 无菌苗在不同培养基中不定根的诱导情况
Table 9 Adventitious root induction of aseptic seedlings on different media
培养基号
Medium No.蔗糖
Sucrose/(g·L−1)IBA/(mg·L−1) NAA/(mg·L−1) 生根率
Rooting rate/%平均根长
Average root length/cm1 10 0.50 0.00 62.50cd 3.68def 2 20 0.50 0.00 66.67bcd 5.03cd 3 30 0.50 0.00 60.00cd 2.73f 4 10 0.50 0.30 81.82abc 2.74f 5 20 0.50 0.30 72.73abcd 3.58def 6 30 0.50 0.30 75.00abcd 4.24cdef 7 10 1.00 0.00 55.56de 4.80cd 8 20 1.00 0.00 80.00abc 4.22cdef 9 30 1.00 0.00 72.73abcd 4.43cde 10 10 1.00 0.30 63.64cd 4.26cdef 11 20 1.00 0.30 88.89ab 5.25c 12 30 1.00 0.30 63.64cd 2.84f 13 10 1.50 0.00 61.54cd 6.83ab 14 20 1.50 0.00 81.82abc 7.23a 15 30 1.50 0.00 70.00abcd 4.13cdef 16 10 1.50 0.30 25.00f 5.30bc 17 20 1.50 0.30 90.91a 4.08cdef 18 30 1.50 0.30 35.71ef 2.93ef 注:a ~ f表示生根率和平均根长指标下数据之间的显著性,带有相同字母表示差异不显著,反之则表示差异显著。Notes: a−f indicate the significance between the data under the rooting rate and average root length index, with the same letter indicates that the difference is not significant, and vice versa indicates that the difference is significant. -
[1] Liu M J, Cheng C Y. A taxonomy study on the genus Ziziphus[J]. Acta Horticulturae, 1995, 390: 161−165.
[2] Liu M J. Chinese jujube: botany and horticulture[J]. Horticultural Review, 2006, 32: 229−298.
[3] 何业华, 熊细满, 谢碧霞, 等. 枣树组织培养愈伤组织诱导的研究[J]. 中南林学院学报, 1997, 17(1): 13−18. He Y H, Xiong X M, Xie B X, et al. Inducement of calluses in the tissue culture of jujube trees[J]. Journal of Central South Forestry College, 1997, 17(1): 13−18.
[4] 周瑞金, 刘孟军. 枣离体叶片高效再生植株的研究[J]. 园艺学报, 2006, 33(3): 625−628. doi: 10.3321/j.issn:0513-353X.2006.03.034 Zhou R J, Liu M J. Establishment of high-efficient in vitro leaf regeneration system in Chinese jujube[J]. Acta Horticulturae Sinica, 2006, 33(3): 625−628. doi: 10.3321/j.issn:0513-353X.2006.03.034
[5] 李云, 王宇, 田砚亭, 等. 赞皇大枣叶片再生植株的初步研究[J]. 核农学报, 2003, 17(3): 187−190. doi: 10.3969/j.issn.1000-8551.2003.03.006 Li Y, Wang Y, Tian Y T, et al. A preliminary study on the plant regeneration from leaves of Zanhuang jujube[J]. Acta Agriculturae Nu-cleatae Sinica, 2003, 17(3): 187−190. doi: 10.3969/j.issn.1000-8551.2003.03.006
[6] 胡影, 崔建国, 施满, 等. 枣叶片愈伤组织的诱导和器官分化[J]. 甘肃林业科技, 1993, 18(4): 18−19. Hu Y, Cui J G, Shi M, et al. Induction and organ differentiation of calluses in jujube leaves[J]. Gansu Forestry Science and Technology, 1993, 18(4): 18−19.
[7] 张春雨. 黑果腺肋花楸离体叶片再生体系建立与原生质体分离培养研究[D]. 长春: 吉林农业大学, 2005. Zhang C Y. Study on the establishment of ex vivo leaf regeneration system and protoplast isolation and culture of black fruit glandular rib rowan[D]. Changchun: Jilin Agricultural University, 2005.
[8] 李晓青, 张晓申. 灰枣试管苗移栽技术研究[J]. 河南农业科学, 2007, 36(8): 97−98. doi: 10.3969/j.issn.1004-3268.2007.08.032 Li X Q, Zhang X S. Research on transplanting technology of gray jujube test tube seedlings[J]. Journal of Henan Agricultural Sciences, 2007, 36(8): 97−98. doi: 10.3969/j.issn.1004-3268.2007.08.032
[9] 陈宗礼, 延志莲, 齐龙. 枣叶片离体培养再生植株[J]. 植物生理学通讯, 1996, 32(1): 27−28. Chen Z L, Yan Z L, Qi L. Plantlet regeneration from leaves cultures of Ziziphus jujuba[J]. Plant Physiology Communications, 1996, 32(1): 27−28.
[10] 孙清荣, 孙洪雁, 郑红军, 等. 酸枣叶片不定植株的诱导[J]. 果树科学, 2000(1): 48−51. Sun Q R, Sun H Y, Zheng H J, et al. Study on the plant regeneration from leaves of sour jujube (Zizyphus spinosus Hu.)[J]. Journal of Fruit Science, 2000(1): 48−51.
[11] 王玖瑞, 刘孟军, 代丽. 枣树组织培养研究进展[J]. 果树学报, 2002(5): 336−339. doi: 10.3969/j.issn.1009-9980.2002.05.011 Wang J R, Liu M J, Dai L. Advances in tissue culture of Chinese jujube[J]. Journal of Fruit Science, 2002(5): 336−339. doi: 10.3969/j.issn.1009-9980.2002.05.011
[12] 陈宗礼, 延志莲, 薛皓, 等. 沾化冬枣叶片培养和植株再生[J]. 植物生理学通讯, 2002, 38(6): 584. Chen Z L, Yan Z L, Xue H, et al. In vitro culture of leaves and plantlet regeneration of Ziziphus jujuba var. zhanhua-dongzao[J]. Plant Physiology Communications, 2002, 38(6): 584.
[13] 胡桂兵, 陈大成, 郑启发, 等. 抗生素对台湾青枣茎段和愈伤组织生长的影响[J]. 华南农业大学学报, 2001, 22(2): 21−23. doi: 10.3969/j.issn.1001-411X.2001.02.007 Hu G B, Chen D C, Zheng Q F, et al. Effect of antibiotics on growth of stem segments and callus of ber (Ziziphus mauritiana Lam.)[J]. Journal of South China Agricultural University, 2001, 22(2): 21−23. doi: 10.3969/j.issn.1001-411X.2001.02.007
[14] 何振艳, 王玉国, 石武良, 等. 山西特有品种梨枣叶片的组织培养及植株再生[J]. 植物生理学通讯, 2002, 38(5): 457. He Z Y, Wang Y G, Shi W L, et al. Tissue culture and plant regeneration of leaves of Lizao endemic variety in Shanxi[J]. Plant Physiology Communications, 2002, 38(5): 457.
[15] 尹美强, 王玉国, 温银元, 等. 梨枣叶片和茎段再生体系的建立[J]. 西北植物学报, 2005, 25(10): 1954−1959. doi: 10.3321/j.issn:1000-4025.2005.10.005 Yin M Q, Wang Y G, Wen Y Y, et al. The construction of the regeneration system for the Chinese date cultivar Lizao to regenerate from its leaves and stems[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2005, 25(10): 1954−1959. doi: 10.3321/j.issn:1000-4025.2005.10.005
[16] 陈宗礼, 张向前, 齐向英, 等. 枣树叶片愈伤组织培养与再生植株的研究[J]. 福建林业科技, 2007, 34(3): 23−27. doi: 10.3969/j.issn.1002-7351.2007.03.006 Chen Z L, Zhang X Q, Qi X Y, et al. Callus culture from leaves and plant regeneration of jujube trees[J]. Journal of Fujian Forestry Science and Technology, 2007, 34(3): 23−27. doi: 10.3969/j.issn.1002-7351.2007.03.006
[17] 王国平, 李晓梅, 陈秋芳. 枣不定芽再生体系的研究[J]. 中国农学通报, 2006, 22(4): 281−283. doi: 10.3969/j.issn.1000-6850.2006.04.074 Wang G P, Li X M, Chen Q F. Study on jujube adventitious bud regeneration system[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2006, 22(4): 281−283. doi: 10.3969/j.issn.1000-6850.2006.04.074
[18] 黄健, 马锋旺, 樊军锋, 等. 枣树离体叶片不定芽再生体系建立的研究[J]. 西北植物学报, 2006, 26(5): 942−948. doi: 10.3321/j.issn:1000-4025.2006.05.012 Huang J, Ma F W, Fan J F, et al. In vitro plant regeneration with adventitious buds of Zizyphus jujuba leaves[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2006, 26(5): 942−948. doi: 10.3321/j.issn:1000-4025.2006.05.012
[19] Ma C H, Ye X, Chen Y H. Anatomical observations of adventitious bud regenetation from leaf explants of Ziziphus jujuba Mill. ‘Huizao’[J]. Horticulture Environment and Biotechnology, 2012, 53(4): 316−319. doi: 10.1007/s13580-012-0081-8
[20] 潘青华, 白金, 王保强. 枣鲜食优质新品种‘京枣39’[J]. 中国果树, 2003(4): 3−4. doi: 10.3969/j.issn.1000-8047.2003.04.002 Pan Q H, Bai J, Wang B Q. New high-quality jujube variety ‘Jingzao 39’[J]. China Fruits, 2003(4): 3−4. doi: 10.3969/j.issn.1000-8047.2003.04.002
[21] 程佑发, 安黎哲, 浦铜良, 等. 枣愈伤组织诱导和再生植株[J]. 西北植物学报, 2000, 20(3): 364−369. doi: 10.3321/j.issn:1000-4025.2000.03.008 Cheng Y F, An L Z, Pu T L, et al. Induction of callus and plant regeneration of Zizyphus jujuba Mill.[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2000, 20(3): 364−369. doi: 10.3321/j.issn:1000-4025.2000.03.008
[22] 王慧瑜, 马锋旺, 张晓申, 等. 鸡心枣试管苗叶片再生植株的研究[J]. 中国南方果树, 2007, 36(4): 48−50. doi: 10.3969/j.issn.1007-1431.2007.04.024 Wang H Y, Ma F W, Zhang X S, et al. Study on leaf regeneration plants of Jixinzao test tube seedlings[J]. South China Fruits, 2007, 36(4): 48−50. doi: 10.3969/j.issn.1007-1431.2007.04.024
[23] 肖蓉, 王国平, 李春燕, 等. 辣椒枣试管苗叶片再生植株研究[J]. 山西农业科学, 2012, 40(3): 193−196, 216. doi: 10.3969/j.issn.1002-2481.2012.03.02 Xiao R, Wang G P, Li C Y, et al. Research of leaf regeneration plant in Ziziphus jujuba Mill. Lajiaozao test tube seedlings[J]. Journal of Shanxi Agricultural Sciences, 2012, 40(3): 193−196, 216. doi: 10.3969/j.issn.1002-2481.2012.03.02
[24] 周瑞金. 枣(Ziziphus jujuba Mill.)离体叶片高效再生体系的建立[D]. 保定: 河北农业大学, 2004. Zhou R J. Establishment of an efficient regeneration system for ex vivo leaves of Ziziphus jujuba Mill.[D]. Baoding: Agricultural University of Hebei, 2004.
[25] 宁强, 刘晓光, 刘孟军. 冬枣叶片愈伤组织诱导研究[J]. 河北林果研究, 2008, 23(4): 348−352. doi: 10.3969/j.issn.1007-4961.2008.04.002 Ning Q, Liu X G, Liu M J. Callus inducement in tissue culture of jujube[J]. Hebei Forest Fruit Research, 2008, 23(4): 348−352. doi: 10.3969/j.issn.1007-4961.2008.04.002
[26] 徐明, 代培红, 罗淑萍, 等. 哈密大枣叶片不定芽再生体系研究[J]. 新疆农业大学学报, 2014, 37(3): 185−190. doi: 10.3969/j.issn.1007-8614.2014.03.003 Xu M, Dai P H, Luo S P, et al. Study on adventitious bud regeneration system of Hami-Dazao leaves[J]. Journal of Xinjiang Agricultural University, 2014, 37(3): 185−190. doi: 10.3969/j.issn.1007-8614.2014.03.003
[27] 李静, 张景臣, 郭伟, 等. 毛白杨叶片愈伤组织的诱导、芽的分化及不定根的再生[J]. 山东林业科技, 2007, 168(1): 52−53. doi: 10.3969/j.issn.1002-2724.2007.01.020 Li J, Zhang J C, Guo W, et al. Callus induction, bud differentiation and adventitious root regeneration from leaves of Populus tomentosa[J]. Shandong Forestry Science and Technology, 2007, 168(1): 52−53. doi: 10.3969/j.issn.1002-2724.2007.01.020
[28] 刘晓光, 单梅华, 苏帅, 等. 山杏组培苗生根培养基优化及移栽[J]. 分子植物育种, 2020, 18(6): 1999−2005. doi: 10.13271/j.mpb.018.001999 Liu X G, Shan M H, Su S, et al. Transplanting and optimization of rooting medium for apricot tissue cultured seedlings[J]. Molecular Plant Breeding, 2020, 18(6): 1999−2005. doi: 10.13271/j.mpb.018.001999
-
期刊类型引用(0)
其他类型引用(9)