Characteristics and regeneration potential of soil seed banks in green space of urban parks in Beijing
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摘要:目的
作为潜在的植物群落,土壤种子库在一定程度上代表地上植被的更新演替潜力,研究城市公园绿地土壤种子库特征及其对地上植被和土壤因子的响应,为近自然城市公园的营造提供理论依据。
方法以北京市六环内公园绿地为对象,将其划分为综合公园、郊野公园、文化遗址公园、社区公园4种类型。在随机选取的75个公园内,采用样方法进行地上植被调查,随机法进行土壤采样,土壤种子库采用萌发试验确定,常规方法获取土壤理化指标。
结果(1)北京城市公园土壤种子库共有77种植物,隶属34科74属,以草本植物为主(97.5%),其中菊科物种数最多(16种)。土壤种子库密度在352 ~ 899粒/m2之间,其中菊科种子储量最高,其次为禾本科和豆科,密度最大的物种为马唐(147.11粒/m2),其次为苜蓿(128.40粒/m2)、狗尾草(122.67粒/m2)等。4类城市公园均以一、二年生草本为主,郊野公园的多年生草本相对丰度要高于其他类型公园,其种子库密度显著大于其他类型公园(P < 0.05)。(2)城市公园土壤种子库的Shannon-Wiener多样性指数范围在1.04 ~ 1.46,Simpson优势度指数范围在0.53 ~ 0.62,Patrick丰富度指数范围在4.79 ~ 8.41,Pielou均匀度指数范围在0.74 ~ 0.84,其中郊野公园种子库物种丰富度显著大于其他类型公园(P < 0.05)。(3)相似系数(Sørensen指数)和非度量多维尺度排序分析表明,不同类型公园间土壤种子库、地上植被相似性系数较高,且群落结构差异不显著。4类城市公园土壤种子库与地上植被相似性偏低,相似系数为0.10 ~ 0.18,且土壤种子库与地上植被间群落构成存在明显差异。(4)土壤种子库密度与草本多样性指数、草本物种丰富度指数、土壤铵态氮和非毛管孔隙度呈显著正相关(P < 0.05),与土壤全氮和硝态氮呈显著负相关;土壤种子库物种丰富度指数与土壤全氮和硝态氮呈显著正相关,与草本多样性指数和土壤铵态氮呈显著负相关。土壤种子库均匀度、优势度和多样性指数与灌木物种丰富度指数呈显著正相关,与草本物种丰富度指数呈显著负相关。其中,草本多样性指数和灌木物种丰富度指数对城市公园土壤种子库的密度和物种多样性影响较大。
结论城市公园土壤种子库密度较小,与其对应地上植被间相似性也较低,且以草本植物种子为主;种子库密度和物种多样性主要受地上草本多样性指数和灌木物种丰富度指数影响较大。因此城市公园绿地土壤种子库更新潜力较低,采取人工促进木本植被更新,是营建近自然城市公园的关键。
Abstract:ObjectiveAs a potential plant community, soil seed bank represents the regeneration and succession potential of aboveground vegetation to some extent. To study the characteristics of soil seed banks and their response to aboveground vegetation and soil factors in urban park green spaces can provide theoretical basis for the construction of urban parks near nature.
MethodTaking the green spaces of parks within the Sixth Ring Road of Beijing as the object, they were divided into four types: comprehensive park, country park, cultural heritage park, and community park. In 75 randomly selected parks, aboveground vegetation surveys were carried out by sampling methods and soil sampling was carried out by randomization methods, the soil seed bank was determined by greenhouse germination method, soil physical and chemical indexes were obtained by conventional method.
Result(1) There were 77 species in the soil seed banks of Beijing City Parks, belonging to 34 families and 74 genera. Most of them were herbs (97.5%), with the highest number of species in the Asteraceae (16 species). Density of soil seed bank ranged from 352 to 899 grain/m2, with Asteraceae having the highest seed reserves, followed by Gramineae and Leguminosae. The species with the highest density was Digitaria sanguinalis (147.11 grain/m2), followed by Medicago sativa (128.40 grain/m2), Setaria viridis (122.67 grain/m2) and others. Annal and biennial herbs were dominant in the four types of urban parks. The relative abundance of perennial herbs in country parks was higher than that in other types of parks, and the density of their seed banks was significantly greater than that in other types of parks (P < 0.05). (2) The Shannon-Wiener diversity index of the soil seed banks in urban parks ranged from 1.04 to 1.46, the Simpson dominance index ranged from 0.53 to 0.62, the Patrick richness index ranged from 4.79 to 8.41, and the Pielou evenness index ranged from 0.74 to 0.84, with the species richness of seed banks of country parks significantly greater than that of other types of parks (P < 0.05). (3) Similarity coefficients (Sørensen index) and non-metric multidimensional scaling analysis indicated that the similarity coefficients of soil seed bank and aboveground vegetation among different types of parks were high, and the differences in community structure were not significant. The similarity between soil seed bank and aboveground vegetation in the four types of urban parks was low, with similarity coefficients ranging from 0.10 to 0.18, and there were significant differences in community composition between them. (4) The density of soil seed banks was significantly positively correlated with herb diversity index, herb species richness index, soil ammonium nitrogen, and non-capillary porosity (P < 0.05), and significantly negatively correlated with soil total nitrogen and nitrate nitrogen. The species richness index of soil seed banks was significantly positively correlated with soil total nitrogen and nitrate nitrogen, and significantly negatively correlated with herb diversity index and soil ammonium nitrogen. The soil seed bank evenness, dominance, and diversity indices were significantly positively correlated with shrub species richness index and negatively correlated with herb species richness index. Among them, the herb diversity index and shrub species richness index had a greater impact on the density and species diversity of soil seed bank in urban parks.
ConclusionThe density of soil seed banks in urban parks and the similarity between the soil seed banks and its corresponding aboveground vegetation is low, and the seeds of herb plants are dominated. The density and species diversity of the seed banks are mainly influenced by the diversity index of aboveground herb plants and the richness index of aboveground shrub species. Therefore, the soil seed bank renewal potential of urban parks is low, and artificial promotion of woody vegetation renewal is the key to build a near-natural urban park.
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类毒过敏原蛋白(venom-allergen proteins,VAPs)是一种富含半胱氨酸的分泌蛋白(cysteine-rich secretory protein,CRISP),属于精子包被蛋白(sperm coating protein)的Tpx-1 / Ag-5 / Pr-1 / Sc-7(SCP / TAPS)超家族[1]。动植物寄生线虫的栖息地不同,但它们的分泌物共享一组结构保守的蛋白质—VAPs。这些蛋白在线虫生命周期的寄生阶段上调表达,而且对线虫在植物和动物体内的持续侵染至关重要[2-3]。寄生线虫在侵染植物过程中使用口针刺穿植物细胞壁,将分泌的VAPs传递到细胞中,并从活植物细胞中获取低分子量化合物。目前,编码VAP蛋白的基因在许多植物寄生线虫中已被分离鉴定,如南方根结线虫(Meloidogyne incognita)[4-5]、大豆孢囊线虫(Heterodera glycines)[6]、马铃薯腐烂茎线虫(Ditylenchus destructor)[7]、松材线虫(Bursaphelenchus xylophilus)[8]、马铃薯金线虫(Globodera rostochiensi)[9]、禾谷胞囊线虫(Heterodera avenae)[10]和香蕉穿孔线虫(Radopholus similis)[11]。目前的研究主要集中在VAPs作为宿主免疫反应的激活剂和抑制剂的作用上。例如,马铃薯金线虫的Gr-VAP-1蛋白与番茄细胞外半胱氨酸蛋白酶Rcr3pim的结合会触发由表面定位受体Cf-2介导的防御相关超敏反应。另外,Gr-VAP-1基因在番茄(Solanum lycopersicum)中还可以抑制细胞外受体蛋白Cf-4及其同源诱导子Avr-4引起的细胞死亡。在转基因植物的细胞外基质中,异位表达的线虫基因VALs(Gr-VAP-1、Hs-VAP-1和Hs-VAP-2)的表达显著提高了其对植物寄生线虫的敏感性[9]。在植物寄生线虫中,VAPs基因的表达与入侵宿主及随后在宿主组织的迁移有关[2,6,12-13]。VAPs基因的RNA干扰(RNA interference,RNAi)会降低植物寄生线虫在宿主植物内迁移并成功建立永久性觅食位点的能力[9,13-14]。禾谷胞囊线虫的2个类毒素过敏原蛋白新基因HaVAP1和HaVAP2均参与了该线虫的寄生,但它们具有不同的功能。RNAi沉默HaVAP1基因增强了禾谷胞囊线虫的毒力,RNAi沉默HaVAP2基因阻碍了禾谷胞囊线虫的寄生[10]。这些研究表明,植物寄生线虫在宿主组织的迁移以及感染的早期阶段,口针分泌的VALs可能通过抑制表面定位受体介导的植物固有免疫力,从而增强宿主植物对线虫感染的总体敏感性,这对于调节宿主反应非常重要。根结线虫的Mi-VAP-1作为已知的效应子,对其沉默后的表达进行转录组分析,得出该基因的沉默对其他效应子表达产生干扰。这种对其他基因的级联效应也可有助于降低线虫的寄生能力[15]。香蕉穿孔线虫的类毒素过敏原蛋白RsVAP可能与LeRabA1d(Ras-related protein)相互作用以影响宿主防御反应,进而促进线虫感染[11]。因此,明确类毒素过敏原蛋白VAPs的结构与功能,有助于了解植物寄生线虫的致病机理,从而设计针对植物寄生线虫寄主的新型保护策略。
松材线虫病(pine wilt disease)即松树(Pinus spp.)萎蔫病,是一种以松材线虫为病原的国际检疫性林业病害[16],已造成我国生态与林业经济的巨大损失。全国大面积的健康松林均面临着松材线虫入侵扩张的高风险和大流行的威胁[17-18]。2011年首次在松材线虫中发现一个VAP基因家族,包括3个以基因簇形式存在的功能性类毒过敏原蛋白基因(Bx-vap-1、Bx-vap-2、Bx-vap-3)和一个不表达的假基因(Bx-vap-P)[8]。Bx-vap-1与Bx-vap-2基因核苷酸序列不同,但蛋白序列相同。原位杂交显示这3个基因均在松材线虫的食道腺特异表达。免疫组化分析显示Bx-VAP1 蛋白特异存在于松材线虫的中食道球和食道腺中,该基因和蛋白的表达水平均于松材线虫在松树体内生长繁殖阶段达到最高,RNAi 沉默该基因会显著降低松材线虫的迁移率,但对繁殖率没有影响[14]。这些结果表明Bx-VAP1 蛋白可能经口针分泌至体外抑制松树的防卫反应,参与松材线虫的迁移过程。转录组分析发现松材线虫6个类毒过敏原蛋白[19],为研究松材线虫 VAP 的多态性和功能提供了新的线索。后来,采用重叠延伸PCR 基因合成法人工合成松材线虫Bxvap2基因序列在大肠杆菌(Escherichia coli)内表达,获得原核表达的VAP2蛋白,纯化后注入新西兰白兔体内制备多克隆抗体[20]。利用杆状病毒表达系统在sf9昆虫细胞中表达Bx-vap-1基因[14,21],获得VAP1蛋白接种的3年生马尾松(Pinus massoniana)后,寄主马尾松细胞发生质壁分离、细胞核降解等现象,表现出典型的细胞程序性死亡[22]。由此,本研究推测松材线虫VAPs作为关键的致病基因之一,在该线虫与寄主植物互作过程中发挥着至关重要的作用。
类毒素过敏原蛋白VAPs可能作为效应子或者病程相关蛋白参与松材线虫致病过程。虽然这类功能蛋白已被筛选出,但是其结构及具体功能尚不明确。因此,本文以松材线虫的4个VAPs 基因为例,检测不同发育阶段的基因表达量,构建原核表达载体,使其在大肠杆菌中得到快速高效表达,并以纯化的原核表达产物为抗原制备相应的多克隆抗体,分析此类蛋白的生物信息学,为进一步研究这类蛋白的组织定位及功能提供实验材料,为明确该基因在松材线虫与寄主植物互作中的作用机理奠定基础。
1. 材料与方法
1.1 供试虫源的准备
供试松材线虫虫株来自于本实验所保存的Nxy61 虫株,该虫株分离于浙江宁波2012 年 10 月当年发病的马尾松枝条,通过贝尔曼漏斗法分离后长期保存于长满灰葡萄孢(Botrytis cinerea)的玉米培养基中。试验接种线虫为混合虫态松材线虫(包括虫卵、2 ~ 4 龄幼虫以及成虫),在灰葡萄孢 PDA 培养基上25 ℃黑暗培养5 d后,贝尔曼漏斗法收集分离线虫,无菌水冲洗3 次后,再用0.5% 的硫酸链霉素溶液处理2 min 后,无菌水冲洗3 次,调整线虫悬浮液浓度为30 头/μL后,备用。
之后,获取不同发育阶段的松材线虫。收集松材线虫的卵,加入10 mL ddH2O于25 ℃处理24 h后,卵孵化为繁殖型2龄线虫(L2),收集L2接种在长满灰葡萄孢的PDA培养基上,24 h后获得繁殖型3龄线虫(L3);L2培养52 h后获得繁殖型4龄线虫(L4),L2培养72 h后获得成虫。
将收集到的卵、L2、L3、L4、成虫经无菌水冲洗后13 000 rpm离心5 min,充分去除上清液,收集混合虫态松材线虫,液氮速冻后保存于−80 ℃冰箱,用于线虫RNA的提取。
1.2 松材线虫RNA的提取及cDNA的合成
利用RNA提取试剂盒RNeasy Plus Mini Kit(No. 74134;Qiagen,Hilden,Germany)提取松材线虫不同发育阶段卵、L2、L3、L4、成虫的RNA,通过NanoDrop 8000(Thermo,Waltham,MA,USA)检测其纯度和浓度。之后使用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(No. RR047Q,TaKaRa,Shiga,Japan)试剂盒进行松材线虫cDNA第一链合成,作为实时荧光定量PCR的模板。
1.3 不同发育阶段松材线虫Bx-VAPs基因的表达量
根据NCBI上松材线虫的VAPs基因的mRNA完整编码序列,利用Primer Premier 6.0软件设计实时荧光定量PCR引物(表1),以不同龄期的松材线虫cDNA 为模板,松材线虫β-actin 基因为内参(表1),根据KAPA Roche480 SYBRFast(北京,普凯瑞)操作步骤,使用Roche480 Real-time PCR 扩增仪进行实时荧光定量PCR分析,检测不同发育阶段的松材线虫Bx-VAP1、Bx-VAP2、Bx-VAP3和Bx-VAP4基因表达量。每个样品设3 个重复,以卵作为对照,采用2–ΔΔCt 法计算目的基因的相对表达量,采用SPSS软件进行单因素方差分析。
表 1 引物信息Table 1. Primer information引物名称
Primer name引物序列
Primer sequence引物用途
Primer usageBx-VAP1-F ATGTTCGGTCTACTGTTAGT 全长克隆
Full-length gene cloneBx-VAP1-R TCAGGCGCTACACAGACTGT Bx-VAP2-F ATGGTTCGAGTATTAGTTCT Bx-VAP2-R TCAGGCACTGCACAAACTGT Bx-VAP3-F ATGTTCCGAGTTCTCCTGAC Bx-VAP3-R CTATTCGGCACTGCAGAGTG Bx-VAP4-F ATGATAACTAAATTCCTGTG Bx-VAP4-R TTAAGCGACGCACAATCCCT EX-VAP1-F GTATTTTCAGGGATCCGAATTCGACAGGTTCAGCAACAGCCAA 添加双酶切位点
Addition of double cleavage sitesEX-VAP1-R GGTGGTGGTGGTGGTGCTCGAGTCAGGCGCTACACAGACTGT EX-VAP2-F GTATTTTCAGGGATCCGAATTCACCAAATTCAGCGAAAGCCAA EX-VAP2-R GGTGGTGGTGGTGGTGCTCGAGTCAGGCGCTACACAGACTGT EX-VAP3-F GTATTTTCAGGGATCCGAATTCGCCAGGTTAAGCGACGATGAG EX-VAP3-R GGTGGTGGTGGTGGTGCTCGAGCTATTCGGCACTGCAGAGTG EX-VAP4-F GTATTTTCAGGGATCCGAATTCGAAAAGTTGAATAGCGCTGAG EX-VAP4-R GGTGGTGGTGGTGGTGCTCGAGTTAAGCGACGCACAATCCCT RT-VAP1-F AATGTGATGGAGGCTGAC 实时荧光定量PCR
Real-time quantitative polymerase chain reactionRT-VAP1-R GCTACACAGACTGTCACT RT-VAP2-F GCTGTGCCATTCAGAACT RT-VAP2-R GCTCCCATCATGTTTCCA RT-VAP3-F TTGGACCTTCACCGTCTG RT-VAP3-R CTTCTTCTTCCTCGCACTG RT-VAP4-F CTCCGACCTGGAAGACAA RT-VAP4-R CGCTCTCATGGCAATGTT β-actin -F TCCGTACCCTGAAGTTGGCTAACC β-actin -R AAGTGGAGACGAGGGAATGGAACC 1.4 松材线虫Bx-VAPs基因的克隆
根据NCBI上松材线虫的VAPs基因的mRNA完整编码序列,利用Primer Premier 6.0软件设计克隆引物,由华大蛋白(Beijing,China)合成(表1),使用PrimeSTAR HS(TaKaRa,日本)目的基因全长PCR扩增体系:cDNA模板1 μL,2 × PrimeSTAR Max Premix12.5 μL,正反向引物各1 μL,补ddH2O至25 μL。PCR反应程序:94 ℃预变性5 min;35个循环的94 ℃变性30 s,55 ℃退火10 s,72 ℃延伸1 min;72 ℃再延伸10 min,保存温度为4 ℃。使用北京全式金生物技术有限公司的pEASY-Blunt Simple Cloning Kit (No. CB111-01;TransGen Biotech,Beijing,China)试剂盒进行连接并转化,将得到的阳性克隆菌液,送至北京六合华大基因科技有限公司进行质粒提取和双向测序,获得测序正确的Bx-VAPs基因全长质粒。
1.5 重组质粒pET-32b-VAPs的构建
将pET-32b空载体分别经EcoRⅠ/XhoⅠ双酶切,37 ℃处理3 h,回收相应目的片段。利用Primer Premier 5.0软件设计扩增引物(表1),添加双酶切位点EcoRⅠ(GAATTC)和XhoI(CTCGAG),引物由北京六合华大基因科技有限公司合成。以克隆的VAPs全长质粒为模板、EX-VAPn-F/ EX-VAPn-R为引物分别进行VAPs的扩增。25 µL PCR扩增体系和反应条件同1.4。产物经1%的琼脂糖凝胶电泳检测,在−20 ℃条件下保存。使用PCR 产物纯化试剂盒(EZNA cycle pure,kit vacuum protocal,OMEGA公司)纯化并回收目的片段。使用一步法克隆试剂盒(ClonExpress® II One Step Cloning Kit,Vazyme)将回收目的片段产物与线性化pET-32b载体进行同源重组,并将其转化至DH5α感受态细胞中,次日挑取单克隆菌落进行PCR鉴定,测序正确的菌液扩大培养并提取重组质粒,命名为pET-32b-VAPn。
1.6 重组Bx-VAPs蛋白的诱导表达与纯化
将测序正确的重组质粒pET-32b-VAPn分别转化大肠杆菌 BL21DE3感受态细胞,并涂布于相应LB平板,37 ℃倒置培养16 h。次日挑单菌落进行PCR鉴定正确后,送至六合华大基因科技有限公司测序,并将测序正确的目的菌株Bx-VAPn用15%甘油保存,用于目的蛋白表达。将验证正确的目的菌株接种至Amp+(100 μg/mL)抗性LB液体培养基中37 ℃ 220 rpm振荡培养至对数生长期(OD600介于0.4 ~ 0.6)。加入终浓度为1 mmol/L的IPTG,37 ℃ 180 rpm振荡培养5 h后,于 50 ml离心管中4000 rpm离心15 min,收集诱导前和诱导后菌体,与1 × SDS混合煮沸,进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)检测。诱导后的菌液以0.1 mmol/L PBS洗涤沉淀后再次重悬,冰浴条件下超声波破碎后,4 ℃ 12 000 rpm 离心 15 min,使上清和菌体碎片完全分离,至溶液澄清。收集上清液,经Ni亲和层析预装柱纯化后,分别用含10 mmol/L和250 mmol/L咪唑的缓冲液分别洗脱杂质蛋白和目的蛋白。使用 Ni2+-NTA 琼脂糖凝胶预装柱(全式金)对 VAPs蛋白进行纯化。纯化后的蛋白进行SDS-PAGE分析以判断其纯化效果。
1.7 重组Bx-VAPs蛋白多克隆抗体的制备与鉴定
1.7.1 动物免疫
将纯化后的Bx-VAPn蛋白分别作为免疫原与弗氏完全佐剂,取200 µL 1∶1混匀液(含100 µg的Bx-VAPn重组蛋白)在每只Balb/c小鼠进行背部皮下脊柱两侧均匀免疫(8 ~ 10个点)。初免14 d或21 d后,分别将Bx-VAPn蛋白与等体积的弗氏不完全佐剂混匀后进行二次免疫。二免14 d后,进行三免,方法同二免。三免7 d后,尾静脉采血,3000 ~ 10 000 rpm离心5 min,分离血清(10 ~ 20 µL)。
1.7.2 抗体效价
按《SOP-抗体鉴定》方法进行效价检测:
包被:用 pH9.6 CB的1 × 包被液,按1 ug/mL的抗原质量浓度,4 ℃包被过夜(100 µL/孔),洗板1次,用封闭液200 µL /孔37 ℃封闭2 h,拍干备用;
加样:将多抗血清(1 mg/mL)用样稀液依次稀释100、200、400、800、1 600、3 200、6 400、12 800倍,以阴性血清1 000倍稀释液做阴性对照,100 µL/孔37 ℃孵育30 min,洗板3次拍干;
二抗:取适当稀释的酶标二抗(羊抗鼠IgG-HRP),100 µL /孔37 ℃孵育30 min,洗板5次拍干;
显色:取显色液按100 µL /孔 加入酶标板,37 ℃避光显色15 min;
终止:各反应孔加入终止液 50 µL终止反应;
读值:酶标仪设定450 nm和630 nm双波长读值,采用OD450 ~ OD630 的值为1为抗体;记录并分析数据,1/2最大吸光度对应的稀释倍数为多抗血清效价。
1.8 Bx-VAPs蛋白的蛋白免疫印迹
纯化血清抗体anti-VAPs分别稀释至1 mg/mL后,留存备用。取50 µg 经过蛋白定量处理的松材线虫蛋白液(Bx)和原核表达的蛋白(Bx-VAPn),检测抗体的特异性,进行15% SDS-PAGE电泳,转膜、封闭后以1∶10 000的稀释比孵育对应的多克隆抗体,二抗采用羊抗鼠IgG-HRP(1∶4 000稀释),进行DAB显色压片曝光并拍照保存。
1.9 Bx-VAPs蛋白的生物信息学在线分析
利用ExPASyProtparam在线程序(https://web.expasy.org/protparam/)分析Bx-VAPs蛋白的理化性质,利用SOPMA在线程序预测Bx-VAPs蛋白的二级结构,利用SWISS-MODEL在线程序(https://swissmodel.expasy.org/)预测Bx-VAPs蛋白的三级结构,利用SingalP5.0在线程序(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)预测Bx-VAPs蛋白是否存在信号肽,利用DNAStar软件中Protean软件对Bx-VAPs进行B细胞抗原表位预测与分析。
2. 结果与分析
2.1 松材线虫Bx-VAPs的基因全长克隆
扩增松材线虫的Bx-VAPs基因全长并进行琼脂糖凝胶电泳检测,条带单一。测序分析结果显示克隆所得的基因序列与NCBI和Wormbase上所提交的基因序列(表2)大小一致。Bx-VAP1基因编码区长度为615 bp,Bx-VAP2基因编码区长度为621 bp,Bx-VAP3基因编码区长度为612 bp,Bx-VAP4基因编码区长度为606 bp(图1)。
表 2 松材线虫的Bx-VAPs蛋白序列及理化性质Table 2. Protein sequence and physicochemical properties of Bx-VAPs in B. xylophilus蛋白名称
Protein name基因库登录号
GenBank ID氨基酸数
Number of
amino acid分子量
Molecular
mass/Da理论等电点
Theoretical pI信号肽的位置
Signal peptide
location/aa跨膜结构域
Transmembrane
domain磷酸化位点数量
Number of phosphorylation site丝氨酸
Serine苏氨酸
Threonine络氨酸
ComplexinBx-VAP1 ADG86237.1 204 22 434.86 4.93 17 ~ 18 无 No 12 17 4 Bx-VAP2 ADG86238.1 206 22 418.83 4.68 17 ~ 18 无 No 15 15 4 Bx-VAP3 ADG86239.1 202 22 446.27 4.31 18 ~ 19 无 No 16 11 8 Bx-VAP4 CAD5147609.1 201 22 038.58 5.19 17 ~ 18 无 No 14 17 7 2.2 不同发育阶段松材线虫Bx-VAPs基因的表达量
收集各个龄期松材线虫的cDNA,分析Bx-VAPs基因的表达量(图2),结果表明在成虫时期,松材线虫的Bx-VAP1、Bx-VAP2基因相对表达量达到150和120倍。Bx-VAP3的基因表达量在L2和L3时期略有升高,Bx-VAP4基因表达量在不同龄期变化不超过3倍。
图 2 不同发育阶段松材线虫Bx-VAPs的相对表达量E代表卵,L2 ~ L4 代表繁殖型2 ~ 4龄幼虫,A代表成虫。不同小写字母表示不同发育阶段基因表达量差异显著性(P < 0.05)。下同。E indicates egg stage, L2 − L4 indicate propagative 2nd to 4th instar larvae, A indicates adult. Different lowercase letters indicate significant differences in gene expression at different developmental stages (P < 0.05). The same below.Figure 2. Relative expression level of Bx-VAPs in B. ylophilus at various developmental stages2.3 松材线虫Bx-VAPs蛋白的原核表达
构建pET-32b-VAPn重组表达载体,并转化至DH5α宿主菌中,获得重组蛋白pET-32b-VAPs菌液,添加IPTG诱导后,分别在37 ℃条件下诱导表达重组蛋白5 h。经SDS-PAGE分析显示,pET-32b-VAP1和pET-32b-VAP2在22.0 kDa左右显示条带,pET-32b-VAP3和pET-32b-VAP4在22 ~ 31 kDa间显示条带,且重组蛋白大多以包涵体形式存在于沉淀中;约1 L菌液经诱导后,菌体经亲和层析纯化后蛋白质量浓度可达到 0.6 mg/mL,获得8 mg蛋白,经考马斯亮蓝染色,TBST脱色后,利用软件Image J对其进行灰度分析,纯度达90 %以上,可作为免疫抗原(图3)。
图 3 重组蛋白在大肠杆菌BL21DE3中表达的SDS-PAGE分析1. 无IPTG诱导的BL21DE3-BxVAPn全菌;2. IPTG诱导的BL21DE3-BxVAPn 全菌;3. 上清液;4. 包涵体;5. 纯化的BxVAPn蛋白;6. 低分子量蛋白标记。1, BL21DE3–BxVAP1 without IPTG; 2, BL21DE3- BxVAP1 induced with IPTG; 3, supernatant; 4, inclusion body; 5, purified BXVAP1 protein; 6, low molecular mass protein marker.Figure 3. SDS-PAGE analysis of the expression of recombinant protein in E. coli BL21DE32.4 anti-VAPs抗体的效价及蛋白免疫印记结果
间接ELISA法测定结果发现:anti-VAP1多抗血清效价达到1∶12 800,anti-VAP2多抗血清效价达到1∶51 200,anti-VAP3多抗血清效价达到1∶25 600,anti-VAP4多抗血清效价达到1∶51 200(图4)。
免疫印迹法Western blot验证抗体特异性结果如图5所示,Bx-VAP1、Bx-VAP2、Bx-VAP3的抗体分别与对应的原核表达的VAP1、VAP2、VAP3反应,同时均与Bx蛋白液产生反应;Bx-VAP4的抗体与原核表达的VAP4产生反应,但并未与Bx蛋白液发生反应。结果表明所制备的Bx-VAP1、Bx-VAP2、Bx-VAP3多克隆抗体特异性好,灵敏度高,具有与松材线虫的蛋白提取液结合的能力。
2.5 松材线虫Bx-VAPs蛋白的功能和结构预测
利用ExPASy Protparam在线程序分析Bx-VAPs蛋白的理化性质,结果显示:Bx-VAP1编码204个氨基酸,Bx-VAP2编码206个氨基酸,Bx-VAP3编码202个氨基酸;Bx-VAP4编码201个氨基酸(图6A),均为疏水性蛋白(图6B)。为进一步研究Bx-VAPs蛋白的进化关系,根据Bioedit多序列比对结果,应用MEGA 6.0软件和N–J邻接法构建Bx-VAPs蛋白的系统进化树。系统进化树(图6C)显示:松材线虫Bx-VAPs蛋白与拟松材线虫(Bursaphelenchus mucronatus)、豆伞滑刃线虫(Bursaphelenchus doui)、马铃薯腐烂茎线虫、南方根结线虫聚为同一小分支,遗传距离较小,亲缘关系较近。
利用SingalP5.0在线程序预测Bx-VAPs蛋白均存在信号肽(表2),其中Bx-VAP1的信号肽位置为1 ~ 18号的氨基酸,Bx-VAP2的位置为1 ~ 18号的氨基酸;Bx-VAP3的位置为1 ~ 19号的氨基酸;Bx-VAP4的位置为1 ~ 18号的氨基酸。通过TMHMM2.0在线程序预测跨膜结构域,结果显示(表2),Bx-VAP1、Bx-VAP2、Bx-VAP3、Bx-VAP4蛋白均无跨膜结构域。利用NetPhos3.1Server在线程序预测Bx-VAPs蛋白的磷酸化位点,结果显示(表2),Bx-VAP1蛋白共有33个磷酸化位点,其中丝氨酸位点12个,苏氨酸位点17个,酪氨酸位点4个;Bx-VAP2蛋白共有34个磷酸化位点,其中丝氨酸位点15个,苏氨酸位点15个,酪氨酸位点4个;Bx-VAP3蛋白共有35个磷酸化位点,其中丝氨酸位点16个,苏氨酸位点11个,酪氨酸位点8个;Bx-VAP4蛋白共有38个磷酸化位点,其中丝氨酸位点14个,苏氨酸位点17个,酪氨酸位点7个。
采用SMART软件进行松材线虫Bx-VAPs蛋白的功能结构域分析可知(图7),Bx-VAP1、Bx-VAP2、Bx-VAP3、Bx-VAP4均具有保守的SCP结构域,分别在各自的第23 ~ 180位氨基酸、第23 ~ 180位氨基酸、第23 ~ 176位氨基酸、第23 ~ 175位氨基酸。此外,Bx-VAP2具有一个低复杂性区域,在第190 ~ 205位氨基酸。
利用SWISS-MODEL在线程序对Bx-VAP1蛋白的三级结构进行预测(图8A),结果显示,所得结构有较多的α螺旋和无规则卷曲,与利用SOPMA在线程序预测的Bx-VAPs蛋白的二级结构(图8B)结果一致。Bx-VAP1蛋白二级结构包括α螺旋(h,45.59%)、无规则卷曲(c,39.71%)、延伸链(e,13.24%)、β转角(t,1.47%)4种类型。Bx-VAP2蛋白二级结构包括α螺旋(h,42.72%)、无规则卷曲(c,42.23%)、延伸链(e,12.14%)、β转角(t,2.91%)4种类型。Bx-VAP3蛋白二级结构包括α螺旋(h,40.39%)、无规则卷曲(c,47.29%)、延伸链(e,10.84%)、β转角(t,1.48%)4种类型。Bx-VAP4蛋白二级结构包括α螺旋(h,37.31%)、无规则卷曲(c,43.28%)、延伸链(e,16.92%)、β转角(t,2.49%)4种类型。
2.6 松材线虫Bx-VAPs蛋白的B细胞表位预测
利用Protean软件,对Bx-VAPs的二级结构、表面可及性、可塑性、B细胞抗原表位等进行了预测与分析(图9)。综合Gamier-Robson和Chou-Fasman 2种方法预测Bx-VAP1蛋白的二级结构(图9A)发现其主要以α螺旋为主,主要分布在24 ~ 31、36 ~ 45、50 ~ 53、58 ~ 80、92 ~ 96、122 ~ 127、135 ~ 139、178 ~ 185氨基酸残基;β转角主要形成于20 ~ 22、83 ~ 84、116 ~ 118、129 ~ 130、142 ~ 143、151 ~ 154、170 ~ 172、189 ~ 191、193 ~ 200氨基酸残基;无规则卷曲主要分布在80 ~ 83、88 ~ 90、103 ~ 111、118 ~ 199、131 ~ 135、155 ~ 158、173 ~ 177氨基酸残基,β折叠较少。利用Kyte-Doolittle方法对Bx-VAP1蛋白的亲水性进行分析(图9A),结果显示,Bx-VAP1亲水性区域主要分布在:17 ~ 31、32 ~ 53、55 ~ 88、104 ~ 145、151 ~ 166、172 ~ 179、196 ~ 197氨基酸残基。可及性较高区域位于Bx-VAP1蛋白分子表面,而可及性较低区域埋藏于分子内部的区域。Bx-VAP1蛋白的表面可及性较高区域是:17 ~ 26、33 ~ 36、42 ~ 47、65 ~ 73、106 ~ 112、114 ~ 131、161 ~ 164氨基酸残基。利用Karplus-Schulz方法对Bx-VAP1蛋白的可塑性进行分析(图9A),结果显示,柔韧性较高区域有14 ~ 27、34 ~ 50、54 ~ 58、66 ~ 72、100 ~ 112、114 ~ 124、127 ~ 131、140 ~ 143、151 ~ 165、186 ~ 200氨基酸残基。这些区域可能具有一定的柔韧性,形成表位的可能性较大,容易与抗体进行嵌合。利用Jameson-Wolf方法对Bx-VAP1蛋白的B细胞抗原表位进行预测(图9A),可看出Bx-VAP1存在10个潜在的B细胞抗原表位位点,预测的B细胞抗原表位区域为16 ~ 29、31 ~ 59、65 ~ 75、78 ~ 91、99 ~ 112、115 ~ 125、126 ~ 133、140 ~ 147、151 ~ 166、186 ~ 204氨基酸残基。结合该蛋白的二级结构、亲水性、可塑性、抗原性和表面可及性进行综合分析,Bx-VAP1蛋白的优势抗原表位可能存在于20 ~ 23、32 ~ 35、46 ~ 49、81 ~ 84、104 ~ 111、116 ~ 119、129 ~ 132、140 ~ 143氨基酸残基及其附近。
图 9 Bx-VAPs蛋白的B细胞抗原表位预测A. Bx-VAP1蛋白的B细胞表位预测;B. Bx-VAP2蛋白的B细胞表位预测;C. Bx-VAP3蛋白的B细胞表位预测;D. Bx-VAP4蛋白的细胞表位预测。A, B cell epitope prediction of Bx-VAP1 protein; B, B cell epitope prediction of Bx-VAP2 protein; C, B cell epitope prediction of Bx-VAP3 protein; D, B cell epitope prediction of Bx-VAP4 protein.Figure 9. B cell antigenic epitope prediction of Bx-VAPs protein预测Bx-VAP2蛋白的二级结构(图9B),发现其主要以α螺旋为主,主要分布在25 ~ 31、50 ~ 53、58 ~ 77、92 ~ 94、108 ~ 115、122 ~ 126、135 ~ 142氨基酸残基;β转角主要形成于35 ~ 36、84 ~ 86、117 ~ 118、151 ~ 155、164 ~ 165、170 ~ 172、189 ~ 191、193 ~ 196、199 ~ 202氨基酸残基;无规则卷曲主要分布在32 ~ 34、38 ~ 41、80 ~ 82、87 ~ 90、102 ~ 108、119 ~ 121、129 ~ 134、156 ~ 160、173 ~ 175氨基酸残基;β折叠较少,主要形成于182 ~ 185氨基酸残基。利用Kyte-Doolittle方法对Bx-VAP2蛋白的亲水性进行分析(图9B),结果显示,Bx-VAP2亲水性区域主要分布在:20 ~ 54、64 ~ 94、109 ~ 133、151 ~ 166、173 ~ 179、188 ~ 201氨基酸残基。Bx-VAP2蛋白的表面可及性较高区域是:19 ~ 25、32 ~ 38、44 ~ 48、69 ~ 73、80 ~ 84、114 ~ 129、140 ~ 143、154 ~ 155、163 ~ 165氨基酸残基。利用Karplus-Schulz方法对Bx-VAP2蛋白的可塑性进行分析(图9B),结果显示,柔韧性较高区域有19 ~ 26、33 ~ 51、53 ~ 58、68 ~ 72、81 ~ 90、101 ~ 107、14 ~ 123、141 ~ 143、151 ~ 164、175 ~ 176、186 ~ 201氨基酸残基。利用Jameson-Wolf方法对Bx-VAP2蛋白的B细胞抗原表位进行预测(图9B),可看出Bx-VAP2存在10个潜在的B细胞抗原表位位点,预测的B细胞抗原表位区域:19 ~ 26、32 ~ 74、81 ~ 89、100 ~ 107、113 ~ 125、140 ~ 146、150 ~ 167、170 ~ 179、186 ~ 205氨基酸残基。综合分析Bx-VAP2蛋白的B细胞优势抗原表位可能存在于35 ~ 37、83 ~ 86、162 ~ 165氨基酸残基及其附近。
预测Bx-VAP3蛋白的二级结构(图9C),发现其主要以α螺旋为主,主要分布在35 ~ 37、151 ~ 166、189 ~ 193氨基酸残基;β转角主要形成于46 ~ 47、82 ~ 84、86 ~ 88、99 ~ 101、111 ~ 113、123 ~ 126、137 ~ 140、151 ~ 166、158 ~ 161、170 ~ 171、180 ~ 183氨基酸残基;无规则卷曲主要分布在31 ~ 33、39 ~ 44、48 ~ 58、80 ~ 81、90 ~ 91、95 ~ 96、102 ~ 103、117 ~ 121、128 ~ 129、152 ~ 153、156 ~ 157、172 ~ 176、187 ~ 188氨基酸残基;β折叠较少,主要形成于59 ~ 60、130 ~ 133氨基酸残基。利用Kyte-Doolittle方法对Bx-VAP3蛋白的亲水性进行分析(图9C),结果显示,Bx-VAP3亲水性区域主要分布在:16 ~ 69、76 ~ 127、136 ~ 142、150 ~ 166、168 ~ 199氨基酸残基。Bx-VAP3蛋白的表面可及性较高区域是:20 ~ 26、31 ~ 39、42 ~ 51、61 ~ 67、80 ~ 90、95 ~ 102、105 ~ 122、138 ~ 140、159 ~ 162氨基酸残基。利用Karplus-Schulz方法对Bx-VAP3蛋白的可塑性进行分析(图9C),结果显示,柔韧性较高区域有7 ~ 9、21 ~ 26、31 ~ 56、63 ~ 66、82 ~ 90、98 ~ 101、103 ~ 107、109 ~ 120、123 ~ 127、137 ~ 140、147 ~ 159、169 ~ 197氨基酸残基。利用Jameson-Wolf方法对Bx-VAP3蛋白的B细胞抗原表位进行预测(图9C),可看出Bx-VAP3存在10个潜在的B细胞抗原表位位点,预测的B细胞抗原表位区域:18 ~ 29、32 ~ 59、62 ~ 71、80 ~ 91、98 ~ 128、138 ~ 163、170 ~ 202氨基酸残基。综合分析Bx-VAP3蛋白的优势抗原表位可能存在于31 ~ 33、48 ~ 58、80 ~ 81、117 ~ 121、184氨基酸残基及其附近。
预测Bx-VAP4蛋白的二级结构(图9D),发现其主要以α螺旋为主,主要分布在16 ~ 26、67 ~ 78、120 ~ 122、135 ~ 141、189 ~ 193氨基酸残基;β转角主要形成于33 ~ 34、47 ~ 49、82 ~ 84、86 ~ 88、159 ~ 161、169 ~ 170、184 ~ 186、195 ~ 197氨基酸残基;无规则卷曲主要分布在41 ~ 46、54 ~ 56、80 ~ 81、99 ~ 101、108 ~ 110、129 ~ 131氨基酸残基;β折叠,主要形成于5 ~ 12、57 ~ 61、142 ~ 150、155 ~ 157、162 ~ 166、179 ~ 182、198 ~ 201氨基酸残基。利用Kyte-Doolittle方法对Bx-VAP4蛋白的亲水性进行分析(图9D),结果显示,Bx-VAP4亲水性区域主要分布在:17 ~ 53、58 ~ 88、90 ~ 93、102 ~ 143、183 ~ 195氨基酸残基。Bx-VAP4蛋白的表面可及性较高区域是:18 ~ 24、32 ~ 39、61 ~ 73、81 ~ 84、116 ~ 121、140 ~ 141、188 ~ 190氨基酸残基。利用Karplus-Schulz方法对Bx-VAP4蛋白的可塑性进行分析(图9D),结果显示,柔韧性较高区域有15 ~ 26、32 ~ 49、53 ~ 56、62 ~ 72、81 ~ 85、87 ~ 89、99 ~ 109、114 ~ 123、128 ~ 132、136 ~ 143、152 ~ 154、175 ~ 178、182 ~ 192氨基酸残基。利用Jameson-Wolf方法对Bx-VAP4蛋白的B细胞抗原表位进行预测(图9D),可看出Bx-VAP4存在10个潜在的B细胞抗原表位位点,预测的B细胞抗原表位区域:15 ~ 24、32 ~ 49、53 ~ 58、63 ~ 75、77 ~ 89、100 ~ 110、113 ~ 123、137 ~ 144、169 ~ 171、175 ~ 178、184 ~ 198氨基酸残基。结合该蛋白的二级结构、亲水性、可塑性、抗原性和表面可及性进行综合分析,Bx-VAP4蛋白的优势抗原表位可能存在于33 ~ 36、82 ~ 84氨基酸残基及其附近。
3. 结论与讨论
本研究成功构建4个不同的VAPs原核表达载体,并在大肠杆菌中获得分子量为22 ~ 31 kDa的VAPs蛋白,其中原核表达的Bx-VAP1蛋白与真核表达的VAP1蛋白分子量23.3 kDa[21]和22 kDa[14]相近,充分证明了VAP1蛋白原核表达成功。Bx-VAP2原核表达蛋白与人工合成的VAP2基因在大肠杆菌中原核表达获得的VAP2蛋白分子量(21.8 KDa)相似[20]。Bx-VAP3和Bx-VAP4蛋白首次在大肠杆菌中表达成功。同时,Bx-VAP1、Bx-VAP2、Bx-VAP3、Bx-VAP4基因在卵、L2、L3、L4、成虫中均有表达,其中Bx-VAP1、Bx-VAP2和Bx-VAP3基因的表达与前人研究类似[8],未发表的转录组数据中显示VAP1基因和VAP2基因在成虫表达量最高,分别为对照组的419.18倍和18.03倍,VAP3和VAP4基因在L3中表达量较高,表达量分别为8.5和6.4倍。推测VAP1和VAP2可能与成虫的发育有关,VAP3和VAP4可能与L3的发育有关,这些基因的持续性表达模式与松材线虫这类迁移性内寄生线虫整个生活史过程中的侵染、迁徙和取食行为之间是否存在必然联系需要深入研究。考虑到mRNA与蛋白质表达水平存在不一致性,我们有必要针对已获得的松材线虫VAPs蛋白进行更加详尽的表达和定位分析,从而为进一步探讨该类基因的功能提供一定的依据。
大肠杆菌表达系统具有遗传背景清晰、操作过程简单、生长繁殖快、产物稳定性好、成本低、产量高、不易污染等优点,是基因表达技术中最早发展且应用最广的经典表达系统[21]。目前,已得到了广泛应用并取得了巨大的科研价值和经济效益。原核表达中信号肽序列的高疏水性会抑制大肠杆菌细胞的生长和目的蛋白的表达,但是不会对表达蛋白的生物学活性造成影响[23-24],因此本研究设计了去信号肽的酶切引物,以满足松材线虫VAPs的免疫学检测的实验需求。同时,本研究利用纯化后的Bx-VAPs分别进行了Balb/c小鼠免疫,获取了高效价的抗体anti-VAP1、anti-VAP2和anti-VAP3,并通过蛋白免疫印迹成功检测松材线虫的蛋白液,但anti-VAP4抗体未能与松材线虫蛋白液结合反应,这可能是由于Bx-VAP4基因在扩散型4龄LⅣ中大量表达(未发表转录组数据),而本研究中的松材线虫蛋白液是室内培养的繁殖型不同虫态的松材线虫混合液。VAPs是松材线虫的分泌蛋白,该类蛋白在寄主体内的分布和流动是值得关注的问题。得到的重组VAPs分别作为抗原,获得了相应的抗体,使用这些相应的抗体结合ELISA 或免疫印迹等方法对相关病害木进行检测,结合免疫荧光及激光共聚焦对该蛋白在寄主中位置进行鉴定,为后续体外结合实验验证松材线虫的分泌蛋白-寄主植物蛋白相互作用、质谱分析深入研究 VAPs的作用机制及蛋白间的相互作用提供了有力的实验材料基础。
生物信息学分析结果显示,这4个Bx-VAPs蛋白均无跨膜结构域,蛋白质的二级结构有α螺旋、β折叠、β转角、无规则卷曲4种,其中α螺旋和β折叠常位于蛋白质的内部,因此不易与抗体结合,β转角和无规则卷曲更容易突出在蛋白质的表面,与抗体嵌合可能性很大,成为候选抗原表位的可能性更大。运用DNAStar软件对Bx-VAPs蛋白的二级结构、亲水性、表面可及性、柔韧性、B细胞抗原表位等进行分析与预测,综合分析得出Bx-VAP1蛋白的优势B细胞抗原表位较多。该预测结果在后续研究中可通过人工合成表位多肽,或者将抗原表位多肽与其他抗原性较大的蛋白相偶联来增加其免疫原性,以进行免疫学验证。4个Bx-VAPs蛋白均具有SCP结构域,属于前人报道的SCP/TAPS家族蛋白,这类蛋白的功能各不相同,如免疫应答、生殖、病原体入侵等。松材线虫Bx-VAPs蛋白的功能还有待进一步研究。
综上所述,本研究首次通过原核表达体系,诱导表达和纯化多个Bx-VAPs蛋白,并对其基本理化性质、结构与功能特性、潜在B细胞抗原表位进行生物信息学分析,制备了多克隆抗体,对松材线虫蛋白也有一定的免疫反应,为进一步制备Bx-VAPs的单抗、开发松材线虫诊断试剂盒及深入认识 VAPs蛋白在松材线虫致病过程中的作用奠定了基础。
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表 1 公园分类
Table 1 Classification of parks
公园类型
Type of park位置
Location功能特点
Functional characteristics人为管理
Artificial management综合公园
Comprehensive
park中心区
Central zone综合公园一般规模较大;以人工景观为主;具有休闲游憩、生态景观、文化科普、防灾避灾等功能并全面均衡发展;服务半径大
The scale of comprehensive park is generally large, mainly artificial landscape, and has the functions of recreation, ecological landscape, cultural science, disaster prevention and avoidance, and comprehensive and balanced development; the service radius of such park is large管理机制稳定健全,人为干扰强度较大;资源保护措施完善且效果好;绿地养护水平高
The management mechanism is stable and sound, and the intensity of human interference is large; the resource protection measures are perfect and effective; the level of green space maintenance is high文化遗址公园
Cultural
heritage park中心区
Central zone文化遗址公园规模适中;人文与自然景观相结合;具有突出的文化科普和休闲游憩的功能,对非本地游客有重要影响;服务半径适中
The scale of cultural heritage park is moderate, combining humanistic and natural landscapes, with outstanding functions of popularization of culture and recreation, and have an important impact on non-local visitors; the service radius of such park is moderate管理机制稳定健全,人为干扰强度较大;资源保护措施完善且效果好;绿地养护水平高
The management mechanism is stable and sound, and the intensity of human interference is large; the resource protection measures are perfect and effective; the level of green space maintenance is high社区公园
Community park中心区 (居民区附近)
Central zone (near a residential area)社区公园一般规模较小;以人工景观为主;周围居民为主要服务对象,具有休闲放松、生态景观和防灾避灾等功能;服务半径小
The scale of community parks is generally small, mainly artificial landscape, and the surrounding residents as the main service object, with the functions of leisure and relaxation, ecological landscape and disaster prevention and avoidance; the service radius of such park is small管理机制较稳定,人为干扰强度适中;资源保护措施比较完善且效果比较好;绿地养护水平中等
The management mechanism is relatively sound, and the intensity of human interference is moderate; the resource protection measures are sound and the effect is good; the level of green space maintenance is medium郊野公园
Country park近郊
Suburb郊野公园规模较大;以自然景观为主;生态服务功能突出,兼有休憩娱乐、文化科普和防灾减灾等功能;服务半径较大
The scale of country park is large, mainly natural landscape, with outstanding ecological service functions, and functions of leisure and recreation, culture and science popularization, and disaster prevention and mitigation; the service radius of such park is large管理机制有待提升,人为干扰强度较小;资源保护措施有待完善,效果较好;绿地养护水平一般
The management mechanism needs to be improved, and the intensity of human interference is small; the resource protection measures need to be improved and the effect is good; the level of green space maintenance is average注:引自文献[2, 23−25]。Note: cited from reference [2, 23−25]. 表 2 不同类型城市公园土壤种子库物种组成和密度
Table 2 Species composition and density of soil seed banks in different types of urban parks
科
Family属
Genus种
Species生活型
Life
form物种密度/(粒·m−2) Species density/(grain·m−2) 综合公园
Comprehensive
park郊野公园
Country
park文化遗址
公园
Cultural
heritage park社区公园
Community
park车前科 Plantaginaceae 车前属 Plantago 车前 Plantago asiatica P 14.81 62.96 14.81 22.22 婆婆纳属 Veronica 蚊母草 Veronica peregrina A 14.81 唇形科 Lamiaceae 薄荷属 Mentha 薄荷 Mentha canadensis P 14.81 111.11 活血丹属 Glechoma 活血丹 Glechoma longituba P 14.81 71.96 14.81 37.04 夏至草属 Lagopsis 夏至草 Lagopsis supina P 29.63 22.22 14.81 14.81 大戟科 Euphorbiaceae 大戟属 Euphorbia 地锦草 Euphorbia humifusa A 29.63 29.63 19.75 铁苋菜属 Acalypha 铁苋菜 Acalypha australis A 22.22 29.63 143.21 22.22 豆科 Fabaceae 胡枝子属 Lespedeza 胡枝子 Lespedeza bicolor S 74.07 决明属 Senna 决明 Senna tora A 103.70 米口袋属 Gueldenstaedtia 少花米口袋 Gueldenstaedtia verna P 59.26 苜蓿属 Medicago 苜蓿 Medicago sativa P 88.89 148.15 禾本科 Poaceae 地毯草属 Axonopus 地毯草 Axonopus compressus P 29.63 狗尾草属 Setaria 狗尾草 Setaria viridis A 18.52 216.67 56.30 122.22 黑麦草属 Lolium 黑麦草 Lolium perenne P 14.81 马唐属 Digitaria 马唐 Digitaria sanguinalis A 287.04 119.75 48.68 140.74 穇属 Eleusine 牛筋草 Eleusine indica A 55.56 129.29 154.07 67.72 早熟禾属 Poa 早熟禾 Poa annua A 79.01 77.04 196.83 29.63 虎耳草科 Saxifragaceae 虎耳草属 Saxifraga 虎耳草 Saxifraga stolonifera P 44.44 29.63 夹竹桃科 Apocynaceae 鹅绒藤属 Cynanchum 萝藦 Cynanchum rostellatum V 14.81 堇菜科 Violaceae 堇菜属 Viola 堇菜 Viola arcuata P 19.75 紫花地丁 Viola philippica P 14.81 14.81 88.89 锦葵科 Grewia 扁担杆属 Grewia 扁担杆 Grewia biloba S 14.81 苘麻属 Abutilon 苘麻 Abutilon theophrasti A 14.81 14.81 田麻属 Corchoropsis 田麻 Corchoropsis crenata A 14.81 菊科 Asteraceae 飞蓬属 Erigeron 小蓬草 Erigeron canadensis A 22.22 一年蓬 Erigeron annuus AB 14.81 鬼针草属 Bidens 鬼针草 Bidens pilosa A 14.81 蒿属 Artemisia 青蒿 Artemisia caruifolia A 59.26 29.63 44.44 黄鹌菜属 Youngia 黄鹌菜 Youngia japonica P 74.07 29.63 蓟属 Cirsium 蓟 Cirsium japonicum P 74.07 29.63 103.70 91.85 假还阳参属 Crepidiastrum 假还阳参 Crepidiastrum lanceolatum P 103.70 59.26 金光菊属 Rudbeckia 黑心金光菊 Rudbeckia hirta AB 14.81 菊三七属 Gynura 白子菜 Gynura divaricata P 59.26 苦苣菜属 Sonchus 长裂苣荬菜 Sonchus brachyotus A 14.81 22.22 苦苣菜 Sonchus oleraceus AB 31.75 47.41 14.81 24.69 苦荬菜属 Ixeris 中华苦荬菜 Ixeris chinensis P 113.58 44.44 鳢肠属 Eclipta 鳢肠 Eclipta prostrata A 14.81 牛膝菊属 Galinsoga 牛膝菊 Galinsoga parviflora A 22.22 29.63 14.81 蒲公英属 Taraxacum 蒲公英 Taraxacum mongolicum P 29.63 29.63 旋覆花属 Inula 旋覆花 Inula japonica P 14.81 苦木科 Simaroubaceae 臭椿属 Ailanthus 臭椿 Ailanthus altissima T 14.81 蓼科 Polygonaceae 千叶兰属 Muehlenbeckia 竹节蓼 Muehlenbeckia platyclada P 44.44 列当科 Orobanchaceae 地黄属 Rehmannia 地黄 Rehmannia glutinosa P 14.81 马齿苋科 Portulacaceae 马齿苋属 Portulaca 马齿苋 Portulaca oleracea A 74.07 48.48 276.54 72.22 木樨科 Oleaceae 梣属 Fraxinus 白蜡树 Fraxinus chinensis T 22.22 29.63 茜草科 Rubiaceae 耳草属 Hedyotis 耳草 Hedyotis auricularia P 14.81 29.63 拉拉藤属 Galium 车轴草 Galium odoratum P 14.81 蔷薇科 Rosaceae 委陵菜属 Potentilla 朝天委陵菜 Potentilla supina AB 207.41 51.03 44.44 37.04 茄科 Solanaceae 茄属 Solanum 龙葵 Solanum nigrum A 14.81 忍冬科 Caprifoliaceae 忍冬属 Lonicera 金银忍冬 Lonicera maackii S 14.81 桑科 Moraceae 构属 Broussonetia 构 Broussonetia papyrifera T 14.81 桑属 Morus 桑 Morus alba T 29.63 14.81 14.81 莎草科 Cyperaceae 莎草属 Cyperus 莎草 Cyperus rotundus P 14.81 水蜈蚣属 Kyllinga 短叶水蜈蚣 Kyllinga brevifolia P 29.63 44.44 14.81 薹草属 Carex 薹草 Carex spp. P 29.63 88.89 十字花科 Brassicaceae 独行菜属 Lepidium 独行菜 Lepidium apetalum AB 29.63 88.89 14.81 37.86 荠属 Capsella 荠 Capsella bursa-pastoris AB 14.81 诸葛菜属 Orychophragmus 诸葛菜 Orychophragmus violaceus AB 29.63 64.20 石竹科 Caryophyllaceae 繁缕属 Stellaria 繁缕 Stellaria media AB 14.81 29.63 488.89 漆姑草属 Sagina 漆姑草 Sagina japonica AB 14.81 天门冬科 Asparagaceae 沿阶草属 Ophiopogon 沿阶草 Ophiopogon bodinieri P 138.27 14.81 55.56 通泉草科 Mazaceae 通泉草属 Mazus 通泉草 Mazus pumilus A 14.81 44.44 14.81 125.93 无患子科 Sapindaceae 栾属 Koelreuteria 栾 Koelreuteria paniculata T 29.63 44.44 22.22 14.81 槭属 Acer 元宝槭 Acer truncatum T 59.26 苋科 Amaranthaceae 沙冰藜属 Bassia 地肤 Bassia scoparia A 74.07 藜属 Chenopodium 藜 Chenopodium album A 29.63 32.59 39.51 48.15 苋属 Amaranthus 凹头苋 Amaranthus blitum A 29.63 44.44 旋花科 Convolvulaceae 打碗花属 Calystegia 打碗花 Calystegia hederacea A 14.81 虎掌藤属 Ipomoea 牵牛 Ipomoea nil A 14.81 荨麻科 Urticaceae 雾水葛属 Pouzolzia 雾水葛 Pouzolzia zeylanica P 14.81 苎麻属 Boehmeria 苎麻 Boehmeria nivea S 29.63 29.63 74.07 44.44 鸭跖草科 Commelinaceae 鸭跖草属 Commelina 鸭跖草 Commelina communis A 14.81 银杏科 Ginkgoaceae 银杏属 Ginkgo 银杏 Ginkgo biloba T 14.81 罂粟科 Papaveraceae 紫堇属 Corydalis 紫堇 Corydalis edulis A 14.81 鸢尾科 Iridaceae 鸢尾属 Iris 鸢尾 Iris tectorum P 29.63 紫草科 Boraginaceae 附地菜属 Trigonotis 附地菜 Trigonotis peduncularis B 107.41 69.63 212.35 80.00 酢浆草科 Oxalidaceae 酢浆草属 Oxalis 酢浆草 Oxalis corniculata P 19.75 37.04 98.77 59.26 注:A.一年生草本;B.二年生草本;AB.一或二年生草本;P.多年生草本;V.藤本;S.灌木;T.乔木。Notes: A, annual herb; B, biennial herb; AB, annual or biennial herb; P, perennial herb; V, vine; S, shrub; T, tree. 表 3 不同类型城市公园之间土壤种子库、地上植被Sørensen相似性系数
Table 3 Sørensen similarity coefficients of soil seed banks and aboveground vegetation species among different types of urban parks
公园类型 土壤种子库间物种相似性
Species similarity among soil seed banks地上植被间物种相似性
Species similarity among aboveground vegetations综合公园
Comprehensive park郊野公园
Country park文化遗址公园
Cultural heritage park综合公园
Comprehensive park郊野公园
Country park文化遗址公园
Cultural heritage park郊野公园
Country park0.64 0.62 文化遗址公园
Cultural heritage park0.64 0.57 0.60 0.59 社区公园
Community park0.68 0.56 0.57 0.65 0.64 0.60 -
[1] Cheng Y Y, Zhang J G, Wei W, et al. Effects of urban parks on residents’ expressed happiness before and during the COVID-19 pandemic[J/OL]. Landscape and Urban Planning, 2021, 212: 104118[2021−10−25]. https://doi.org/10.1016/j.landurbplan.2021.104118.
[2] 陶晓丽, 陈明星, 张文忠, 等. 城市公园的类型划分及其与功能的关系分析: 以北京市城市公园为例[J]. 地理研究, 2013, 32(10): 1964−1976. Tao X L, Chen M X, Zhang W Z, et al. The classification of urban parks and its relationship with functions: a case study of urban parks in Beijing[J]. Geographical Research, 2013, 32(10): 1964−1976.
[3] Özgüner H. Cultural differences in attitudes towards urban parks and green spaces[J]. Landscape Research, 2011, 36: 599−620. doi: 10.1080/01426397.2011.560474
[4] Wang M, Zhang H, Fan S, et al. A zoning-based solution for hierarchical forest patch mosaic in urban parks[J/OL]. Urban Forestry & Urban Greening, 2021, 65: 127352[2022−12−23]. https://doi.org/10.1016/j.ufug.2021.127352.
[5] Morelli F, Benedetti Y, Su T, et al. Taxonomic diversity, functional diversity and evolutionary uniqueness in bird communities of Beijing’s urban parks: effects of land use and vegetation structure[J]. Urban Forestry & Urban Greening, 2017, 23: 84−92.
[6] Wu W, Ding K. Optimization strategy for parks and green spaces in Shenyang City: improving the supply quality and accessibility[J/OL]. International Journal of Environmental Research and Public Health, 2022, 19(8): 4443[2023−01−12]. https://doi.org/10.3390/ijerph19084443.
[7] Brown G, Rhodes J, Dade M. An evaluation of participatory mapping methods to assess urban park benefits[J]. Landscape and Urban Planning, 2018, 178: 18−31. doi: 10.1016/j.landurbplan.2018.05.018
[8] Mata L, Garrard G E, Fidler F, et al. Punching above their weight: the ecological and social benefits of pop-up parks[J]. Frontiers in Ecology and the Environment, 2019, 17: 341−347. doi: 10.1002/fee.2060
[9] 康冰, 王得祥, 崔宏安, 等. 秦岭山地油松群落更新特征及影响因子[J]. 应用生态学报, 2011, 22(7): 1659−1667. doi: 10.13287/j.1001-9332.2011.0236 Kang B, Wang D X, Cui H A, et al. Regeneration characteristics and related affecting factors of Pinus tabulaeformis secondary forests in Qinling Mountains[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2011, 22(7): 1659−1667. doi: 10.13287/j.1001-9332.2011.0236
[10] 李小双, 彭明春, 党承林. 植物自然更新研究进展[J]. 生态学杂志, 2007, 26(12): 2081−2088. doi: 10.13292/j.1000-4890.2007.0364 Li X S, Peng M C, Dang C L. Research progress on natural regeneration of plants[J]. Chinese Journal of Ecology, 2007, 26(12): 2081−2088. doi: 10.13292/j.1000-4890.2007.0364
[11] Harper J L. Population biology of plants[M]. London: Academic Press, 1977.
[12] Roberts H A. Seed banks in soils[J]. Advances in Applied Biology, 1981, 6: 1−55.
[13] 李彦娇, 包维楷, 吴福忠. 岷江干旱河谷灌丛土壤种子库及其自然更新潜力评估[J]. 生态学报, 2010, 30(2): 399−407. Li Y J, Bao W K, Wu F Z. Soil seed bank and natural regeneration potential of shrubland in dry valleys of Minjiang River[J]. Acta Ecologica Sinica, 2010, 30(2): 399−407.
[14] 卢正宽, 刘贺永, 蹇述莲, 等. 森林草原过渡带持久土壤种子库沿降水梯度的格局[J]. 应用生态学报, 2022, 33(9): 2363−2370. Lu Z K, Liu H Y, Jian S L, et al. Pattern of persistent soil seed bank along precipitation gradient in forest-steppe transition zone[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2022, 33(9): 2363−2370.
[15] 王东丽, 郭莹莹, 谢伟, 等. 风沙黄土区排土场不同恢复类型植物群落与土壤种子库特征[J]. 水土保持研究, 2022, 29(5): 171−177. Wang D L, Guo Y Y, Xie W, et al. Community and soil seed bank characteristics of different vegetation restoration types in aeolian sandy loess dumps[J]. Research of Soil and Water Conservation, 2022, 29(5): 171−177.
[16] 陈颖颖, 吴自荣, 潘萍, 等. 飞播马尾松林土壤种子库的萌发特征及其与土壤理化性质的关系[J]. 土壤通报, 2016, 47(1): 92−97. Chen Y Y, Wu Z R, Pan P, et al. The germination characteristics of soil seed bank and its relationship with doil properties in aerially-seeded Pinus massoiana plantations[J]. Chinese Journal of Soil Science, 2016, 47(1): 92−97.
[17] 李国旗, 邵文山, 赵盼盼, 等. 荒漠草原区4种植物群落土壤种子库特征及其土壤理化性质[J]. 生态学报, 2019, 39(17): 6282−6292. Li G Q, Shao W S, Zhao P P, et al. Analysis of soil seed bank characteristics and soil physical and chemical properties of four plant communities in a desert steppe region[J]. Acta Ecologica Sinica, 2019, 39(17): 6282−6292.
[18] Basto S, Thompson K, Phoenix G, et al. Long-term nitrogen deposition depletes grassland seed banks[J/OL]. Nature Communications, 2015, 6(1): 6185[2022−12−25]. https://www.nature.com/articles/ncomms7185.
[19] Zhao D J, Sun M Q, Xue Y W, et al. Spatial variations of plant species diversity in urban soil seed banks in Beijing, China: Implications for plant regeneration and succession[J/OL]. Urban Forestry & Urban Greening, 2023, 86: 128012[2023−10−30]. https://doi.org/10.1016/j.ufug.2023.128012.
[20] Zhao D J, Yang Q M, Sun M Q, et al. Urbanization and greenspace effect on plant biodiversity variations in Beijing, China[J/OL]. Urban Forestry & Urban Greening, 2023, 89: 128119[2023−10−30]. https://doi.org/10.1016/j.ufug.2023.128119.
[21] Monteiro M V, Doick K J, Handley P, et al. The impact of greenspace size on the extent of local nocturnal air temperature cooling in London[J]. Urban Forestry & Urban Greening, 2016, 16: 160−169.
[22] 仇宽彪. 北京市五环内城市植被格局及公园绿地生态服务功能价值初步研究[D]. 北京: 中国林业科学研究院, 2011. Qiu K B. Primary study on the urban vegetation pattern and the ecological services valuation of parks within the 5th Ring Road in Beijing[D]. Beijing: Chinese Academy of Forestry, 2011.
[23] 中华人民共和国建筑部. 城市绿地分类标准: CJJ/T85−2017[S]. 北京: 中国建筑工业出版社, 2017. Ministry of Construction of the People’s Republic of China. Classification standard of urban green space: CJJ/T85−2017[S]. Beijing: China Architecture and Building Press, 2017.
[24] 北京市园林绿化局. 北京市公园分类分级管理办法[EB/OL]. (2022−04−15)[2023−03−03]. https://www.beijing.gov.cn/zhengce/gfxwj/202210/W020221008609059716277.pdf. Beijing Municipal Forestry and Parks Bureau. Measures of Beijing for the Administration of Parks by Classification and Classification[EB/OL]. (2022−04−15)[2023−03−03]. https://www.beijing.gov.cn/zhengce/gfxwj/202210/W020221008609059716277.pdf.
[25] 王子尧, 高宇, 王向荣. 北京中心城区城市公园使用状况与影响因素量化研究[J]. 北京规划建设, 2020(2): 88−93. Wang Z Y, Gao Y, Wang X R. A quantitative study on the use status and influencing factors of urban parks in central Beijing[J]. Beijing Planning Review, 2020(2): 88−93.
[26] Warr S J, Kent M, Thompson K. Seed bank composition and variability in five woodlands in south-west England[J]. Journal of Biogeography, 1994, 21(2): 151−168. doi: 10.2307/2845469
[27] Bigwood D W, Inouye D W. Spatial pattern analysis of seed banks: an improved method and optimized sampling[J]. Ecology, 1988, 2: 497−507.
[28] 刘静逸, 牛艳东, 郭克疾, 等. 南洞庭湖杨树清理迹地恢复初期土壤种子库特征及其与土壤因子的关系[J]. 应用生态学报, 2020, 31(12): 4042−4050 doi: 10.13287/j.1001-9332.202012.005 Liu J Y, Niu Y D, Guo K J, et al. Characteristics of soil seed bank and their correlations with soil factors in the early restoration period of Populus deltoides cutting slash in Lake South Dongting, China[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2020, 31(12): 4042−4050. doi: 10.13287/j.1001-9332.202012.005
[29] 鲁如坤. 土壤农业化学分析方法[M]. 北京: 中国农业科技出版社, 2002: 146−185. Lu R K. Methods for agricultural chemical analysis of soil[M]. Beijing: China Agricultural Science and Technology Press, 2002: 146−185.
[30] Gross K L. A comparison of methods for estimating seed numbers in the soil[J]. Journal of Ecology, 1990,78(4): 1079−1093.
[31] Wang J, Huang L, Ren H, et al. Regenerative potential and functional composition of soil seed banks in remnant evergreen broad-leaved forests under urbanization in South China[J]. Community Ecology, 2015, 16: 86−94. doi: 10.1556/168.2015.16.1.10
[32] Vieira M D, Overbeck G E. Small seed bank in grasslands and tree plantations in former grassland sites in the South Brazilian Highlands[J]. Biotropica, 2020, 52: 775−782. doi: 10.1111/btp.12785
[33] 罗超, 郭小平, 冯昶栋, 等. 乌海周边土壤种子库特征及其与地上植被和土壤因子的关系[J]. 草业学报, 2021, 30(11): 13−28. Luo C, Guo X P, Feng C D, et al. The characteristics of the soil seed bank in Wuhai and surrounding areas and the relationship with vegetation and soil factors[J]. Acta Prataculturae Sinica, 2021, 30(11): 13−28.
[34] 胡安. 滩羊轮牧对典型草原土壤种子库的作用[D]. 兰州: 兰州大学, 2021. Hu A. Rotational grazing of Tan-Sheep affects soil seed bank of typical steppe[D]. Lanzhou: Lanzhou University, 2021.
[35] Bengtsson J. Which species? What kind of diversity? Which ecosystem function? Some problems in studies of relations between biodiversity and ecosystem function[J]. Applied Soil Ecology, 1998, 10: 191−199. doi: 10.1016/S0929-1393(98)00120-6
[36] 李晓鹏, 董丽, 关军洪,等. 北京城市公园环境下自生植物物种组成及多样性时空特征[J]. 生态学报, 2018, 38(2): 581−594. Li X P, Dong L, Guan J H, et al. Temporal and spatial characteristics of spontaneous plant composition and diversity in a Beijing urban park[J]. Acta Ecologica Sinica, 2018, 38(2): 581−594.
[37] 刘庆艳, 王国栋, 姜明, 等. 三江平原沟渠土壤种子库特征及其与地上植被的关系[J]. 植物生态学报, 2014, 38(1): 17−26 doi: 10.3724/SP.J.1258.2014.00002 Liu Q Y, Wang G D, Jiang M, et al. Characteristics of soil seed banks and their relationships with aboveground vegetation in ditches in the Sanjiang Plain[J]. Chinese Journal of Plant Ecology, 2014, 38(1): 17−26. doi: 10.3724/SP.J.1258.2014.00002
[38] Decocq G, Valentin B, Toussaint B, et al. Soil seed bank composition and diversity in a managed temperate deciduous forest[J]. Biodiversity & Conservation, 2004, 13: 2485−2509.
[39] Pearson T R H, Burslem D F R P, Mullins C E, et al. Germination ecology of neotropical pioneers: interacting effects of environmental conditions and seed size[J]. Ecology, 2002, 10: 2798−2807.
[40] Sitvertown J W. Introduction to plantation population ecology[M]. London: Longman, 1982: 126−135.
[41] 张姝萌. 上海城市废弃地杂草种子库季相动态与城乡差异[D]. 上海: 华东师范大学, 2017. Zhang S M. Seasonal dynamics of weed seed bank in wasteland of Shanghai and its difference along urban-rural gradient[D]. Shanghai: East China Normal University, 2017.
[42] 张博, 高尚军, 殷鸣放, 等. 城市近郊林土壤种子库研究[J]. 辽宁林业科技, 2009(3): 5−9. Zhang B, Gao S J, Yin M F, et al. Studies on soil seed bank of forest in suburbs[J]. Liaoning Forestry Science and Technology, 2009(3): 5−9.
[43] 伏凯. 北京山区自然边坡土壤种子库特征研究[D]. 北京: 北京林业大学, 2016. Fu K. Soil seed bank of typical slope in Beijing mountain area[D]. Beijing: Beijing Forestry University, 2016.
[44] 牛瑞芳, 吴铁航, 柴宝峰. 黄土高原亚高山草地退化对土壤种子库的影响[J]. 草地学报, 2021, 29(5): 972−981. Niu R F, Wu T H, Chai B F. Effects of subalpine grassland degradation on soil seed bank in the Loess Plateau[J]. Acta Agrestia Sinica, 2021, 29(5): 972−981.
[45] Paluch J G. Ground seed density patterns under conditions of strongly overlapping seed shadows in Abies alba Mill. stands[J]. European Journal of Forest Research, 2011, 130: 1009−1022. doi: 10.1007/s10342-011-0486-4
[46] Thompson K. Small-scale heterogeneity in the seed bank of an acidic grassland[J]. Journal of Ecology, 1986, 74: 733−738. doi: 10.2307/2260394
[47] Pekas K M, Schupp E W. Influence of aboveground vegetation on seed bank composition and distribution in a Great Basin Desert sagebrush community[J]. Journal of Arid Environments, 2013, 88: 113−120. doi: 10.1016/j.jaridenv.2012.08.013
[48] 贺士元, 邢其华, 尹祖棠,等. 北京植物志[M]. 北京: 北京出版社, 1984. He S Y, Xing Q H, Yin Z T, et al. Flora of Beijing[M]. Beijing: Beijing Publishing Group, 1984.
[49] Tedoradze G, Nakhutsrishvili G, Seip M, et al. Terrain impacts the composition of the persistent soil seed bank: a case study of steep high mountain grasslands in the Greater Caucasus, Georgia[J]. Phytocoenologia, 2020, 50: 47−63. doi: 10.1127/phyto/2019/0321
[50] Zhang D J, Zhang J, Yang W Q, et al. Plant and soil seed bank diversity across a range of ages of Eucalyptus grandis plantations afforested on arable lands[J]. Plant and Soil, 2014, 376: 307−325. doi: 10.1007/s11104-013-1954-z
[51] Thompson K, Grime J P. Seasonal variation in the seed banks of herbaceous species in ten contrasting habitats[J]. Journal of Ecology, 1979, 67: 893−921. doi: 10.2307/2259220
[52] White E, Tucker N, Meyers N, et al. Seed dispersal to revegetated isolated rainforest patches in North Queensland[J]. Forest Ecology and Management, 2004, 192: 409−426. doi: 10.1016/j.foreco.2004.02.002
[53] Klimkowska A, Diggelen R V, Held S D, et al. Seed production in fens and fen meadows along a disturbance gradient[J]. Applied Vegetation Science, 2009, 12: 304−315. doi: 10.1111/j.1654-109X.2009.01024.x
[54] Guo Y L, Li Y F, Li J X, et al. Comparison of aboveground vegetation and soil seed bank composition among three typical vegetation types in the karst regions of Southwest China[J/OL]. Agronomy, 2022, 12: 1871[2022−12−23]. https://doi.org/10.3390/agronomy12081871.
[55] 孙映通, 夏礼庆, 林琳, 等. 香格里拉亚高山森林带退化群落土壤种子库特征与土壤理化性质分析[J]. 云南大学学报(自然科学版), 2020, 42(5): 1014−1026. Sun Y T, Xia L Q, Lin L, et al. Characteristics of soil seed bank and soil physicochemical properties of degraded communities in Shangri-la subalpine forest belt[J]. Journal of Yunnan University (Natural Sciences Edition), 2020, 42(5): 1014−1026.
[56] 冯璐, 刘京涛, 韩广轩, 等. 黄河三角洲滨海湿地地下水位变化对土壤种子库特征的影响[J]. 生态学报, 2021, 41(10): 3826−3835. Feng L, Liu J T, Han G X, et al. Effects of groundwater level fluctuation characteristics of soil seed banks in coastal wetlands of the Yellow River Delta[J]. Acta Ecologica Sinica, 2021, 41(10): 3826−3835.
[57] Valdés-Rodríguez O A, Sánchez-Sánchez O, Pérez-Vázquez A. Effects of soil texture on germination and survival of non-toxic Jatropha curcas seeds[J]. Biomass and Bioenergy, 2013, 48: 167−170. doi: 10.1016/j.biombioe.2012.10.025
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期刊类型引用(6)
1. 莫崇杏,董明亮,李荣生,余纽,郑显澄,杨锦昌. 米老排杂交子代苗期生长性状遗传变异及选择. 森林与环境学报. 2023(05): 555-560 . 百度学术
2. Shuchun Li,Jiaqi Li,Yanyan Pan,Xiange Hu,Xuesong Nan,Dan Liu,Yue Li. Variation analyses of controlled pollinated families and parental combining ability of Pinus koraiensis. Journal of Forestry Research. 2021(03): 1005-1011 . 必应学术
3. 潘艳艳,许贵友,董利虎,王成录,梁德洋,赵曦阳. 日本落叶松全同胞家系苗期生长性状遗传变异. 南京林业大学学报(自然科学版). 2019(02): 14-22 . 百度学术
4. 秦光华,宋玉民,乔玉玲,于振旭,彭琳. 旱柳苗高年生长与气象因子的灰色关联度. 东北林业大学学报. 2019(05): 42-45+51 . 百度学术
5. 李峰卿,陈焕伟,周志春,楚秀丽,徐肇友,肖纪军. 红豆树优树种子和幼苗性状的变异分析及优良家系的初选. 植物资源与环境学报. 2018(02): 57-65 . 百度学术
6. 张素芳,张磊,赵佳丽,张莉,张含国. 长白落叶松小RNA测序和其靶基因预测. 北京林业大学学报. 2016(12): 64-72 . 本站查看
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