加纳木霉ACCC30153对山新杨幼苗促生抗病功能分析

黄颖; 苗嘉琪; 遇文婧; 刁桂萍

doi:10.12171/j.1000-1522.20230346

加纳木霉ACCC30153对山新杨幼苗促生抗病功能分析

黄颖^{1, 2,},
苗嘉琪^{1, 3},
遇文婧²,
刁桂萍^1, ,

1.
东北林业大学林学院，黑龙江哈尔滨 150040
2.
黑龙江省森林保护研究所，黑龙江哈尔滨 150040
3.
西安立讯科技技师学院，陕西西安 710000

基金项目: 中央高校基本科研业务费专项（2572022DS07），黑龙江省省属科研院所科研业务费项目（LKSB2024-2、CZKYF2022-1-C048），黑龙江省博士后出站基金项目（2023）。

详细信息

作者简介:
黄颖，博士。主要研究方向：森林保护。Email：729218328@qq.com　地址：150040 黑龙江省哈尔滨市和兴路 26 号东北林业大学林学院

责任作者:
刁桂萍，博士，副教授。主要研究方向：森林保护。Email：dgp2003@126.com　地址：同上。

中图分类号: S792.13
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出版历程
- 收稿日期: 2023-11-28
- 修回日期: 2024-05-29
- 录用日期: 2024-11-25
- 网络出版日期: 2024-11-26
- 刊出日期: 2024-12-24

Growth promotion and disease resistance function of Trichoderma ghanaiana ACCC30153 on Populus davidiana × P. bolleana seedlings

Huang Ying^{1, 2,},
Miao Jiaqi^{1, 3},
Yu Wenjing²,
Diao Guiping^1, ,

1.
School of Forestry, Northeast Forestry University, Harbin 150040, Heilongjiang, China
2.
Heilongjiang Forest Protection Institute, Harbin 150040, Heilongjiang, China
3.
Xi’an Lixun Technology Technician College, Xi’an 710000, Shaanxi, China

摘要

摘要:
目的
探索并分析加纳木霉ACCC30153的促生抗病功能，为该菌株的田间应用提供理论依据和技术支持。
方法
利用加纳木霉 ACCC30153分生孢子悬浮液灌施山新杨幼苗，对山新杨幼苗的生长指标、生理指标和光合作用进行了研究；通过加纳木霉 ACCC30153与病原菌对峙试验及分析相关抗病基因表达差异，明确加纳木霉ACCC30153抗病功能。
结果
（1）灌施不同孢子浓度加纳木霉ACCC30153分生孢子悬浮液能够促进山新杨幼苗的生长。与对照相比，灌施1.5 × 10⁷ cfu/mL孢子浓度60 d后幼苗平均株高增加了63.99%。生理指标测定显示，灌施处理显著提高叶绿素含量、净光合速率、蒸腾速率、气孔导度和胞间CO₂浓度，且显著高于对照组（P < 0.05）。（2）加纳木霉ACCC30153处理显著提高了山新杨叶片内防御酶的活性，包括苯丙氨酸解氨酶（PAL）、过氧化物酶（POD）、过氧化氢酶（CAT）和超氧化物歧化酶（SOD），表明加纳木霉通过提高防御酶活性增强了山新杨的抗病能力。（3）对峙试验结果表明，加纳木霉ACCC30153对多种病原真菌具有显著的拮抗作用。实时荧光定量RT-qPCR结果表明，加纳木霉ACCC30153分泌的溶解酶和蛋白水解酶在其拮抗病原真菌过程中发挥了重要作用。
结论
本研究明确了加纳木霉ACCC30153能够通过提高山新杨叶片内叶绿素含量、增强其光合速率促进山新杨幼苗的生长，并显著提高山新杨幼苗防御酶活性；同时能够分泌溶解酶及蛋白水解酶参与其对病原菌的拮抗作用。
- 加纳木霉 /
- 杨树 /
- 生防作用 /
- 促生作用
Abstract:
Objective
To provide a theoretical basis and technical support for the field application of Trichoderma ghanense ACCC30153, its growth-promoting and disease-resistance functions were analyzed.
Method
The study investigated the effects of irrigating poplar seedlings with a conidial suspension of T. ghanense ACCC30153 on growth indicators, physiological indicators, and photosynthesis. The disease resistance function of T. ghanense ACCC30153 was determined through pathogen confrontation tests and by analyzing the expression patterns of disease resistance genes.
Result
(1) Irrigating with different concentrations of T. ghanense ACCC30153 conidial suspension promoted the growth of poplar seedlings. Compared with the control, the average height of poplar seedlings increased by 63.99% after 60 days of irrigation with a conidial suspension of T. ghanense ACCC30153 at a concentration of 1.5 × 10⁷ cfu/mL. Additionally, physiological measurements demonstrated a significant increase in chlorophyll, net photosynthetic rate, transpiration rate, stomatal conductance and intercellular CO₂ concentration in leaves compared to the control group (P < 0.05). (2) Comparison of disease resistance in poplar leaves irrigated with or without T. ghanense ACCC30153 conidial suspension revealed a significant improvement in disease resistance after treatment. Enzymatic activity of defense-related enzymes, including phenylalanine ammonia-lyase (PAL), superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), and peroxidase (POD), indicated that T. ghanense ACCC30153 enhanced disease resistance by increasing the activity of these defense enzymes in the leaves (P < 0.05). (3)The confrontation experiment showed that T. ghanense ACCC30153 exhibited significant antagonistic effects on against various pathogenic fungi. Furthermore, real-time fluorescence quantitative RT-qPCR analysis revealed that lysozymes and proteolytic enzymes secreted by T. ghanense ACCC30153 played critical roles in its antagonistic effects against pathogenic fungi.
Conclusion
This study demonstrated that T. ghanense ACCC30153 can promote the growth of poplar seedlings by increasing chlorophyll content, enhancing photosynthetic rates, and it significantly increased the activity of defense enzymes. Moreover, the T. ghanense ACCC30153 can secrete lytic enzymes and proteolytic enzymes to participate in its antagonism against pathogenic organisms.
- Trichoderma ghanense /
- poplar /
- biocontrol effect /
- growth promoting effect

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从古至今，木材作为一种天然可再生的环保型材料，以其独特的性能和优良的环境学特性深受人们喜爱，并广泛应用于生产生活的各个方面。随着现代科学技术的突飞猛进、人类学理论的不断发展，考古木材作为进行植物考古学和环境考古学研究的一种典型生物材料，正成为专家学者的研究热点，国内外考古作业挖掘出大量的木质文物^[1-2]，例如：“Riksapplet号”沉船^[3]、“小白礁Ⅰ号”沉船^[4]、“南海Ⅰ号”船木^[5]等为出土考古木材的研究提供了丰富的材料。

Crestini等^[6]运用X射线衍射和扫描电镜的方法对埃及古代棺木进行研究，研究发现：考古木材中纤维素、半纤维素、木质素均产生不同程度的降解，小分子化合物发生改变，使考古木材变得脆弱而柔软。Łucejko等^[7]运用热裂解气相色谱–质谱联用法对取自比萨圣罗索雷古船的木材样品进行了主成分分析，样品木质素中愈创木基和紫丁香基的去甲基化表明考古木材中多糖产生了流失。卢芸^[8]指出大多木质文物纤维素结晶区被严重破坏，葡聚糖侧链的乙酰基消失，多糖类物质遭到严重降解，木质素相对含量明显增加。

考古木材微观结构的变化，将在很大程度上影响其水分吸着行为，因而可利用等温吸附曲线和水分吸着理论对考古木材与吸着水分子的相互作用进行分析，如Guggenheim-Anderson-de Boer模型^[9]、Hailwood-Horrobin模型^[10]等。Guo等^[11]利用Guggenheim-Anderson-de Boer模型计算得到每千克古代润楠木（Machilus pingii Cheng ex Yang）样品的最大单层吸水量为7.388 kg，而相同树种现代木材的最大单层吸水量仅为4.602 kg，考古木材的最大单层吸水量比现代木材增加了61%。

木材的水分吸着过程必然伴随着热量或能量的变化^[12]，因此基于吸附热力学考察水分吸着机理，有助于从本质上获得考古木材与水分相互作用方面的信息。曹金珍^[13]发现西藏云杉（Picea spinulosa）在水分吸着过程中微分吸着热、微分吸着熵值随吸湿过程不断增大。Simón 等^[14]研究了在吸湿和解吸平衡态下辐射松（Pinus radiata）的微分吸着熵值随含水率的变化曲线，结果显示在相同平衡含水率下辐射松解吸的微分吸着熵值大于吸湿值。

在以往的研究中，研究者多从成分、结构角度对考古木材水分吸着行为进行研究，且取得了一定进展，而对考古木材的吸附热力学研究较少，而且对各种热力学量变化的系统分析也很欠缺。本研究将聚焦考古木材在吸湿和解吸平衡状态下微分吸着热、自由能变化及微分吸着熵三大热力学量的研究，并分别利用电子显微镜（scanning electron microscope，SEM）、傅里叶红外光谱（Fourier transform infrared spectroscopy，FTIR）分析考古木材的细胞壁结构和化学成分变化，从而建立考古木材微观结构与其水分吸着行为间的构效关系，探究考古木材与现代木材在水分吸附热力学方面的差异及其原因，为从能量角度解析考古木材与水分之间的相互作用机制奠定理论基础，同时也可为我国木质文物的保护提供科学依据，以减少出土饱水木质文物与环境中水分的相互作用，提高木质文物的尺寸稳定性。

1. 材料与方法

1.1 材　料

本研究所用考古木材取自成都文物考古研究院发掘出土的南宋木棺残片，由研究院提供的材料和信息确定为考古柏木，并采集四川产柏木（Cupressus sp.）作为现代对照材。

1.2 细胞壁微观形貌表征

利用滑动切片机（REM-710，Yamato Kohki industrial Co.，Ltd，Japan）制得尺寸为1 mm（轴向） × 2 mm（弦向） × 2 mm（径向）的柏木考古木材与现代木材薄片试样（试样重复数为3），用于SEM观察。在80 ℃的鼓风干燥箱中将试样干燥至质量恒定后进行喷金处理，设置SEM（S-3400，Hitachi，日本）加速电压为3 kV，对柏木试样的细胞结构进行观察，初步了解考古木材的降解、腐朽情况。

1.3 化学成分表征

利用研磨机将考古木材与现代木材样品加工成100目以下的木粉，并在80 ℃的真空干燥箱中干燥至质量恒定，之后将木粉与溴化钾充分混合研磨压制成透明薄片，利用红外光谱仪（BRUKER vertex 70 V，德国）对试样进行检测分析，扫描范围设为400 ~ 4 000 cm⁻¹，分辨率为4 cm⁻¹，每个试样扫描次数为32次。重复测试3次，取平均值。

1.4 吸附热力学量测定

将柏木考古木材、现代木材样品加工为20 mg左右木片，并分别置于（103 ± 2）℃下干燥至质量恒定，用于动态水分吸附分析（dynamic vapor sorption，DVS）实验。将各组试样放入DVS中，分别预设恒定温度为25和50 ℃，相对湿度以10%为梯度从0%增加到90%，继续增加至95%，然后降回至90%，再以10%为梯度从90%降低到0%，试样在每个相对湿度下逐渐达到吸湿/解吸平衡后（当样品质量变化速率连续在10 min内小于0.000 1%/min，则认为样品达到吸湿/解吸平衡），仪器自动进入下一个相对湿度梯度。仪器每隔1 min记录样品质量、温度和相对湿度等数据，得到考古木材和现代木材的吸湿和解吸平衡的等温吸附曲线。

利用Hailwood-Horrobin水分吸着理论^[10]分析所获得的等温吸附曲线，木材在不同相对湿度条件下达到的平衡含水率可表达为

$M=M_{{\rm{h}}} + M_{{\rm{d}}}= \frac{18}{m}\left(\frac{{K}_{\mathrm{h}}{K}_{\mathrm{d}}H}{1 + {K}_{\mathrm{h}}{K}_{\mathrm{d}}H} + \frac{{K}_{\mathrm{d}}H}{1-{K}_{\mathrm{d}}H}\right)$

(1)

式中：M为试样平衡含水率（%）；M_h为水合水质量分数（%）；M_d为溶解水质量分数（%）；m为单位摩尔数吸着位点的绝干木材质量（g/mol）；K_h为水合水与溶解水之间的平衡常数；K_d为溶解水与环境温湿度之间的平衡常数；H为相对湿度（%）。

将式（1）整理成多项式，具体为

$\frac{H}{M}=A + BH-C{H}^{2}$

(2)

式中：A、B、C为多项式的拟合参数，A、B、C与K_h、K_d、m的关系为

$A=\frac{m}{18} \times \frac{1}{{K}_{\mathrm{d}}({K}_{\mathrm{h}} + 1)}$

(3)

$B=\frac{m}{18}\times \frac{{K}_{\mathrm{h}}-1}{{K}_{\mathrm{h}} + 1}$

(4)

$C=\frac{m}{18}\times \frac{{K}_{\mathrm{h}}{K}_{\mathrm{d}}}{{K}_{\mathrm{h}} + 1}$

(5)

通过不同相对湿度环境试样的等温吸湿曲线数据分析可得到拟合参数A、B、C的值，进而可以求解m、K_h和K_d的值，公式中 $\dfrac{m}{18}$ 的倒数 $\dfrac{18}{m}$ 表示木材中有效吸着基团被水合水饱和时的含水率，间接表达了水分吸着位点的数量。

利用各组试样的DVS数据拟合等温吸附曲线，进一步通过Clausius-Clapeyron公式^[15]分别计算考古木材与现代木材的微分吸着热Q_S、自由能变化ΔG和微分吸着熵ΔS，分析考古木材与现代木材在吸附热力学量间的差异，各热力学量的计算公式如下。

${Q_{\text{S}}} = 0.254\;{{{\text{d}}\left( {\ln \frac{1}{H}} \right)} \mathord{\left/ {\vphantom {{{\text{d}}\left( {\ln \frac{1}{H}} \right)} {{\text{d}}\left( {\frac{1}{T}} \right)}}} \right.} {{\text{d}}\left( {\frac{1}{T}} \right)}}$

(6)

$\Delta G= -\frac{\mathrm{R}T}{18} \ln\;H$

(7)

$\Delta S= Q_{\rm{S}} −\Delta G/T$

(8)

式中：T为温度（K）；R为气体常数。

T和H的值均由DVS实验的拟合数据获取，然后分别通过公式（6）、（7）计算得到Q_S和ΔG的值，进一步计算得到ΔS。

2. 结果与讨论

2.1 细胞壁结构

图1为考古木材与现代木材横切面、纵切面的SEM图片。对比考古木材与现代木材图像，可以发现在经历长时间的饱水腐朽下，考古木材除复合胞间层、细胞角隅保存相对完整外^[16-17]，其细胞壁结构发生了明显的变化，与现代木材完整有序的细胞排列相比（图1b），考古木材由于长时间遭受微生物降解，细胞结构发生破坏，细胞壁产生腐朽。

图 1 考古木材和现代木材的SEM图

Figure 1. SEM images of archaeological wood and recent wood

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具体而言，考古木材细胞壁上出现少量圆形孔洞（图1a），除此之外，从考古木材纵切面可见纹孔膜腐朽细节（图1c），并有菌丝体的存在（图1d），该菌丝体是导致考古木材在所处环境中受到降解的各类真菌的聚集体。Guo等^[11]通过氮气吸附法和压汞法对山桐子（Idesia polycarpa）考古木材多孔结构的研究结果表明，考古木材的中孔隙的总孔体积比现代木材样品增加了471%，这也进一步证明了本研究中考古木材孔洞增多的事实。

2.2 化学成分变化

对等量考古木材与现代木材样品的红外光谱进行归一化处理后，可用吸收峰高度半定量表示吸收峰所代表基团的含量^[18]，通过对比考古木材与现代木材试样红外光谱（图2）的特征吸收峰位置变化及消失情况，结合各特征吸收峰所代表的化学基团，研究得到考古木材3种主要化学成分（纤维素、半纤维素、木质素）的含量变化情况及极性基团−OH、−COOH类型和含量的变化情况。

图 2 考古木材与现代木材的红外光谱图

Figure 2. FTIR spectra of archaeological wood and recent wood

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3 337 ~ 3 401 cm⁻¹范围内的吸收峰代表极性基团−OH（O−H伸缩振动），考古木材在此处的吸收峰高度小于现代木材，证明考古木材中−OH含量减少。选取1 742 cm⁻¹（半纤维素C=O伸缩振动）、1 231 cm⁻¹（半纤维素酰氧键−COO伸缩振动）为半纤维素的代表特征峰，与现代木材相比，柏木考古木材的红外吸收光谱在1 742、1 231 cm⁻¹处吸光度变小，特别是在1 742 cm⁻¹处吸收峰几乎完全消失，证明考古木材细胞壁结构中的半纤维素降解严重；另一方面，1 231 cm⁻¹吸收峰代表半纤维素酰氧键−COO，考古木材在1 231 cm⁻¹处的吸收峰高度明显小于现代木材，证明考古木材半纤维素上的−COOH含量减少。

此外，由于考古木材纤维素结晶区中纤维素链的氢键网络的部分断裂，导致892 cm⁻¹处的峰几乎消失，而该处波峰代表C−H弯曲振动，并且对氢键系统的性质敏感，因此该峰几乎消失表明，在考古木材试样中形成更稳定氢键的羟基数量减少，同时这也表明考古木材中无论是无定形区还是结晶区中的纤维素链都发生部分降解^[19]。

指纹区吸收光谱峰数多、较为复杂，包含了更多能反映分子结构细微变化的信息^[20]。为了提供更多的信息，将FTIR光谱图分析细化至3个指纹区域（1 550 ~ 1 800 cm⁻¹、1 200 ~ 1 550 cm⁻¹和850 ~ 1 200 cm⁻¹），在这个范围内通过直接的红外光谱分析考古木材和现代木材仍存在一定局限性，因为指纹区往往存在高度重叠的峰，难以分辨和解析。为此，通过对考古木材和现代木材指纹区光谱进行分峰拟合处理，得到分峰拟合曲线，可以更直观地分析考古木材化学成分的变化。

通过对比考古木材和现代木材FTIR在1 550 ~ 1 800 cm⁻¹波数范围内的分峰拟合曲线（图3a）可以发现，考古木材在1 654 cm⁻¹（木质素中共轭C=O伸缩振动）处吸收峰吸光度值较高，这说明考古木材木质素相对含量升高。通过对比考古木材和现代木材FTIR在1 200 ~ 1 550 cm⁻¹波数范围内的分峰拟合曲线（图3b）可以发现，考古木材在1 418 cm⁻¹（木质素甲基中C−H弯曲振动）处吸收峰强度变大，代表考古木材木质素相对含量升高。通过对比分析考古木材和现代木材FTIR在850 ~ 1 200 cm^–1波数范围内的分峰拟合曲线（图3c）可以得到：考古木材在892 cm^–1（纤维素C−H弯曲振动）处峰几乎消失，这表明在考古木材中形成更稳定氢键的羟基数目减少；1 159 cm^–1（综纤维素C−O−C变形振动）处，考古木材吸收峰吸光度值很低，这表明综纤维素也有一定程度的降解。

图 3 考古木材与现代木材在1 550 ~ 1 800 cm^–1（a）、1 200 ~ 1 550 cm^–1（b）、850 ~ 1 200 cm^–1（c）波数范围内的分峰拟合曲线

Figure 3. Deconvolution of the “fingerprint” region for archaeological wood and recent wood FTIR spectrum 1 550 − 1 800 cm^–1 (a), 1 200 − 1 550 cm^–1(b), 850 −1 200 cm^–1(c)

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综上可以发现，考古木材与现代木材相比，半纤维素、纤维素降解严重，纤维素骨架结构受到破坏，因此在SEM下可观察到细胞壁产生腐朽，这种化学成分和化学结构的变化进一步导致了细胞壁孔洞的出现，从化学成分变化角度解释了SEM中观察到考古木材出现孔洞等腐朽现象的原因。通过Xia等^[21]的研究，考古木材木质素的化学结构也发生了变化，木质素仍会有降解，但考古木材中多糖类物质（纤维素、半纤维素）比芳环类物质（木质素）降解程度更高，因而木质素相对含量总体有升高趋势^[22-23]。除纤维素、半纤维素含量降低及木质素相对含量升高的变化外，考古木材中极性基团−OH、−COOH含量均减少，导致考古木材对水分的吸着减少。

2.3 吸附热力学分析

2.3.1 Hailwood-Horrobin模型拟合

通过Hailwood-Horrobin模型拟合等温吸附曲线，不仅可以得到给定温度下木材吸湿和解吸任意平衡含水率状态下的相对湿度，更可以通过研究考古木材与现代木材的曲线差异，帮助理解考古木材水分吸附行为的差异本质。

根据Hailwood-Horrobin模型分别拟合出在25和50 ℃下考古木材、现代木材的等温吸附曲线（图4）。从中可以看出各等温吸附曲线的拟合度R²值均高于0.99，即Hailwood-Horrobin模型能够较好地描述考古木材及现代木材的等温吸附曲线。所有的等温吸附曲线均呈现“S”形，这说明无论考古木材还是现代木材都属于Ⅱ类等温吸附曲线，具备多孔材料的吸附特征^[24-25]。在给定温度的每一个相对湿度条件下，考古木材的平衡含水率均高于现代木材，以温度为50 ℃，相对湿度为0.6时为例，考古木材平衡含水率为7.94%，现代木材为7.46%，考古木材是现代木材的1.1倍。这是因为图1a的 SEM图像显示考古木材物理环境遭到改变，细胞壁孔洞增多，即木材降解程度越大，木材细胞壁内孔隙越多，对水分的容纳空间增加，含水率越高，所以考古木材在经历长时间的降解后平衡含水率高于现代木材。

图 4 考古木材与现代木材的等温吸附曲线

Figure 4. Adsorption isotherms of archaeological wood and recent wood

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图5为50 ℃下考古木材吸湿和解吸平衡状态的等温吸附曲线，图5显示考古木材的解吸曲线始终位于吸湿之上，即出现了水分吸湿滞后现象。表1总结了在不同相对湿度条件下，考古木材、现代木材分别在25、50 ℃下的滞后率。从表1可以看出：随着温度或相对湿度的升高，考古木材和现代木材的滞后率均增大，即水分吸湿滞后均减小，这与以往研究结果一致^[13]；另一方面，考古木材与现代木材的水分吸湿滞后大小差异不大。

图 5 50 ℃下考古木材的吸湿和解吸等温吸附曲线

Figure 5. Adsorption and desorption isotherms of archaeological wood at 50 ℃

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2.3.2 吸湿平衡状态下的热力学量分析

2.3.2.1 微分吸着热

图6是吸湿平衡状态下考古木材与现代木材中水分的微分吸着热（Q_S）随含水率（moisture content，MC）的变化曲线，Q_S值越大表示木材中水分子与周围分子之间的结合力越强^[13]。与以往研究结果略有不同的是，在MC为5%处产生一明显拐点。根据曲线变化趋势，可以将曲线分为两个阶段，当MC小于 5%的低含水率状态下时，Q_S值逐渐增大直至达到最大值，这表明水分子和木材之间的氢键结合首先表现为单层分子之间的相互结合，且随MC增大，单个水分子和木材中的−OH形成了更多的氢键结合，相互作用更强，形成的键能更高^[18]。当含水率大于5%时，Q_S值随MC的增大而减小，此时单分子层吸着水几乎达到饱和，吸着水分子与木材实质之间形成的氢键结合作用变弱，键能降低^[13]。

表 1 考古木材、现代木材在25、50 ℃下不同相对湿度下的吸湿滞后

Table 1. Moisture sorption hysteresis of archaeological wood and recent wood under different relative humidities at 25 and 50 ℃

相对湿度 Relative humidity	滞后率 Hysteresis rate
相对湿度 Relative humidity	25 ℃考古木材 25 ℃-archaeological wood	50 ℃考古木材 50 ℃-archaeological wood	25 ℃现代木材 25 ℃-recent wood	50 ℃现代木材 50 ℃-recent wood
0.1	0.62	0.74	0.63	0.71
0.2	0.63	0.72	0.64	0.73
0.3	0.64	0.72	0.65	0.74
0.4	0.66	0.73	0.67	0.76
0.5	0.68	0.75	0.70	0.78
0.6	0.71	0.77	0.73	0.81
0.7	0.76	0.81	0.77	0.84
0.8	0.82	0.86	0.84	0.89
0.9	0.91	0.94	0.93	0.95

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图 6 考古木材与现代木材中水分的微分吸着热（Q_S）随含水率（MC）的变化曲线

Figure 6. Variation curves of differential heat of sorption (Q_S) of moisture in archaeological wood and recent wood against moisture content (MC)

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考古木材与现代木材相比，整体曲线形状基本相同，但考古木材的Q_S值随MC的变化曲线位于现代木材之下。根据上文FTIR分析，考古木材化学成分中纤维素、半纤维素大量降解，因此外界水分子可结合−OH、−COOH位点数量减少，这种化学环境的改变导致吸着水与木材分子之间的结合减少，Q_S值降低^[26]。

2.3.2.2 自由能变化

水分的自由能变化的物理意义是水分子润胀木材并切断木材分子相互间氢键结合，裸露木材吸着点所需做的功^[13]。基于图7所示吸湿平衡状态下考古木材与现代木材中水分的自由能变化ΔG值随MC的变化曲线，可以发现考古木材与现代木材的ΔG值均随MC的增大而减小。ΔG值与MC变化呈负相关可以解释为，MC升高使木材可塑性增大，吸着水分子与木材实质分子的协同运动加剧，因此裸露木材吸着点所需做的功减少。

图 7 考古木材（a）与现代木材（b）中水分的自由能变化（ΔG）随含水率的变化曲线

Figure 7. Variation curves of free energy change (ΔG) of moisture in archaeological wood (a) and recent wood (b) against moisture content

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其次，无论是考古木材或是现代木材，50 ℃相较于25 ℃的ΔG值都有一定程度的减小，这是因为温度升高吸着水分子能量增加，活动加剧，所需做的功减小。

2.3.2.3 微分吸着熵

微分吸着熵（ΔS）体现了木材中吸着的水分子与液态水分子相比排列规则上的差异，ΔS > 0代表木材中水分子排列更有规律^[13]。根据吸湿平衡状态下考古木材与现代木材中水分的ΔS值随MC的变化曲线（图8）可知：ΔS值与Q_S值随MC的变化曲线在MC小于5%呈现相似的变化趋势，都随MC的增大而增大。在MC小于5%的低含水率阶段，ΔS < 0表明木材中吸着的水分子比液态水分子更无序，这是因为此时木材中吸着的水分子主要为单分子层吸着水，它们比处于液体状态的水分子显示出更无序的状态；在经过5%的拐点之后，ΔS值随MC变化不明显。而随着MC的增大，ΔS值经历了由负到正、由无序到有序的变化，这说明吸着在木材中的水分子排列越来越规则。

图 8 考古木材与现代木材中水分的微分吸着熵（ΔS）随含水率的变化曲线

Figure 8. Variation curves of differential entropy of sorption (ΔS) of moisture in archaeological wood and recent wood againstmoisture content

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进一步分析考古木材与现代木材的曲线差异，考古木材ΔS值低于现代木材，这是因为考古木材在经历长期酸碱环境下软腐菌等真菌的降解后^[27]，细胞壁出现的孔洞分布是随机的，且与水结合的−OH分布也十分不均匀，造成考古木材中吸着的水分子排列更无序。

2.3.3 水分吸湿与解吸的比较

以50 ℃考古木材为例，分别绘制Q_S、ΔG、ΔS三大热力学量随MC的变化曲线，每张图包含吸湿和解吸平衡态下的两条曲线（图9）。发现吸湿和解吸变化曲线形状基本一致，但解吸的Q_S、ΔG和ΔS值均大于吸湿的值^[14]，对应于水分吸湿滞后（图5），这个现象即为“热力学吸湿滞后”，其表征在吸湿与解吸平衡态下，每一个吸着水分子与木材吸着点之间的氢键结合平均数的差异^[13]。

图 9 50 ℃下考古木材吸湿与解吸过程中的Q_S（a）、ΔG（b）、ΔS（c）随含水率的变化曲线

Figure 9. Variation curves of Q_S (a), Δ G (b), Δ S (c) in archaeological wood against moisture content during moisture adsorption and desorption at 50 ℃

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热力学吸湿滞后同样可以用水分吸湿滞后的“有效羟基说”^[28]解释，即在干燥状态下，部分木材吸着点之间形成氢键结合，当木材从干燥状态开始吸湿时，由于这部分已经形成的氢键结合的影响，处于游离状态能够吸着水分子的吸着点的数量减少，每个吸着水分子与木材吸着点之间的氢键结合平均数减少，从而吸湿的热力学量也低于解吸过程。

3. 结　　论

为探究考古木材的水分吸着行为与现代木材的差异机理，本研究从考古木材与现代木材微观结构与吸附热力学两个层面进行了研究。

考古木材三大主要成分（纤维素、半纤维素、木质素）均发生不同程度的降解，且考古木材中极性基团−OH、−COOH含量均减少，导致考古木材对水分的吸着减少。其中半纤维素、纤维素降解程度更大，因此在SEM中可观察到细胞壁产生腐朽，且可见孔洞分布；而考古木材中多糖类物质（纤维素、半纤维素）比芳环类物质（木质素）降解程度更高，因而木质素相对含量升高。

在吸附热力学研究中，通过DVS等温吸附实验并利用Hailwood-Horrobin模型拟合等温吸附曲线，在给定温度条件下考古木材的平衡含水率高于现代木材。结合Clausius-Clapeyron公式计算考古木材与现代木材的Q_S、ΔG和ΔS三大热力学量。考古木材因纤维素、半纤维素降解导致−OH、−COOH数量减小，Q_S值低于现代木材；考古木材与现代木材的ΔG值差异不大，且随温度升高而减小；考古木材的细胞壁孔洞、−OH分布不均匀，所以ΔS值低于现代木材；在MC小于5%，考古木材Q_S值和ΔS值随MC的变化曲线趋势相似，在此范围内木材中吸着的水分子主要为单分子层吸着水，随后在5%处产生一拐点，此时单分子层吸着水达到饱和，此后木材中吸着的水分子以多分子层吸着水占主导。最后，通过对比吸湿和解吸过程的热力学量（吸湿 < 解吸），发现考古木材存在热力学吸湿滞后现象。

基于以上对于考古木材水分吸着行为差异的研究，考古木材的吸湿性在经历长时间的泡水、腐朽下发生了较大变化，因此在出土饱水木质文物的保护工作中，建议采用各种物理、化学手段减少木质文物与环境中水分的相互作用，如涂覆防水涂层、浸渍脱水材料等，从而提高木质文物的尺寸稳定性^[29]，为我国出土饱水木质文物的保护提供理论支撑。

图 1 加纳木霉ACCC30153对山新杨幼苗促生作用

CK.对照；T1.孢子浓度1.5 × 10³ cfu/mL；T2.孢子浓度1.5 × 10⁵ cfu/mL；T3.孢子浓度1.5 × 10⁷ cfu/mL。不同小写字母表示同一时间不同处理之间差异显著（P < 0.05）。CK, control; T1, spore concentration of 1.5 × 10³ cfu/mL; T2, spore concentration of 1.5 × 10⁵ cfu/mL; T3, spore concentration of 1.5 × 10⁷cfu/mL. Different lowercase letters indicate significant differences in same time under varied treatments (P < 0.05).

Figure 1. Promotion function of Trichoderma ghanense ACCC30153 on growth of P. davidiana × P. bolleana seedlings

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图 2 不同处理下山新杨移栽苗净光合速率（P_n）日变化特性

Figure 2. Diurnal variation characteristics of net photosynthetic rates (P_n) in P. davidiana × P. bolleana under different treatments

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图 3 不同处理下山新杨移栽苗的净光合速率（P_n）、蒸腾速率（E）、气孔导度（G_s）和胞间CO₂浓度（C_i）

不同小写字母表示同一时间不同处理间的显著性差异（P < 0.05）。Different lowercase letters indicate significant differences between varied processes at the same time (P < 0.05).

Figure 3. Net photosynthetic rate (P_n), transpiration rate (E), stomatal conductance (G_s) and intercellular CO₂ concentration(C_i) of transplanted P. davidiana × P. bolleana seedlings under different treatments

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图 4 山新杨幼苗叶片生理酶活性

Figure 4. Leaf physiological enzyme activity of P. davidiana × P. bolleana seedlings

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图 5 对峙试验

T.加纳木霉ACCC30153；A.叶枯病病原菌；T-A.加纳木霉ACCC30153与叶枯病病原菌对峙；C.烂皮病病原菌；T-C.加纳木霉ACCC30153与烂皮病病原菌对峙。T, T. ghanense ACCC30153; A, A. alternate; T-A, confrontation test of T. ghanense ACCC30153 and A. alternate; C, C. chrysosperma; T-C, confrontation test of T. ghanense ACCC30153 and C. chrysosperma.

Figure 5. Confrontation test

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图 6 加纳木霉ACCC30153不同诱导下溶解酶基因表达量

MM. 微量无机盐基础培养基Mineral inorganic salt medium；CA. 细链格孢菌细胞壁 Cell walls of A. alternata；CC. 金黄壳囊孢菌细胞壁 Cell walls of C. chrysosperma；FA. 细链格孢菌发酵液 Fermentation supernatant of A. alternata；FC. 金黄壳囊孢菌发酵液 Fermentation supernatant of C. chrysosperma

Figure 6. Expression levels of lytic enzyme gene of T. ghanense ACCC30153 under different treatments

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表 1 引物设计

Table 1 Primer design

基因编号 Gene No.	引物序列（5′—3′） Primer sequence (5′—3′)
TghECh	F：GCGACCTGCTCCAGAGATTGAG	R：GCCCGTGTTTGTCACCTCCA
TghChi	F：GGCACTTGGTACGAGCCATTCA	R：CCGCTTGTAGTCCTCGCCATT
TghAsp	F：AGGCGTCCAGGTCATCGTAGA	R：CGGATCGAGCAGCGAGTTGTT
TghAse	F：TGGACTCTGGATGTGCGTCAAC	R：GCCGATCCATGTGCCTTCTTCT
TghXyn	F：TTGTCACTTTCTCCGGCGTCG	R：CCGTGTTCTTGGCCGTAACGA
TghNac	F：CTTTGTCGGCGGCAAGGGAT	R：CGATGATGGACGGCTGGTTGA
TghSep	F：CCGTCGTCTACTGCCTCAACAA	R：GCTCTACGATGCTGCGGTGAA
TghGlu	F：CGGCATCCACAAGCGACACA	R：TCATCGTCTTCGTCCTCGTCCT
TghEgl	F：GAGTTCAACGCCCGCAACCA	R：CGCTCCGGCATTGACCTTCTT
TghGTP	F：CTTTGTCGGCGGCAAGGGAT	R：CGATGATGGACGGCTGGTTGA
actin	F：AAGGAGTCCGTCGTCGAGGTT	R：AGTTGAGGGCGGAGCGGATA
α-tublin	F：CTGGTCACGGCTGGACTACAAG	R：GCATCAAGTCGTCGTCGTCGT
β-tublin	F：GTTACCTGACGTGCTCCACCAT	R：CGGAACATGGCGGTGAACTGT

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表 2 不同处理60 d后山新杨移栽苗的生长状况

Table 2 Growth of P. davidiana × P. bolleana seedlings under different treatments after 60 days

生长指标 Growth indicators	CK	T1	T2	T3
茎粗 Stem diameter/cm	0.21 ± 0.004^a	0.26 ± 0.011^a	0.38 ± 0.005^b	0.55 ± 0.010^b
根长 Root length/cm	2.26 ± 0.261^a	2.29 ± 0.142^a	5.26 ± 0.166^b	6.11 ± 0.211^b
叶片数 Leaf number	13.6 ± 0.050^a	15.2 ± 0.115^a	22.6 ± 0.168^b	23.8 ± 0.008^b
鲜质量 Fresh mass/g	6.05 ± 0.035^a	6.79 ± 0.122^a	9.28 ± 0.135^b	11.55 ± 0.256^b
干质量 Dry mass/g	1.03 ± 0.056^a	2.34 ± 0.045^a	4.54 ± 0.246^b	5.08 ± 0.002^b
注：同行不同小写字母表示不同处理下同一生长指标的差异显著（P < 0.05）。Note: different lowercase letters in the same line indicate significant differences in same growth index under varied treatments (P < 0.05).

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表 3 不同处理下山新杨叶片叶绿素a含量

Table 3 Contents of chlorophyll a in leaves of P. davidiana × P. bolleana under different treatments μg/g

处理 Treatment	0 h	1 h	3 h	6 h	12 h	1 d	5 d	10 d	15 d
CK	0.84^a	1.07^b	2.72^b	2.11^b	3.53^b	3.61^b	3.65^b	3.68^b	3.39^b
T1	0.94^a	2.81^b	2.55^b	3.82^ab	3.42^b	4.16^ab	4.35^b	5.46^a	6.31^a
T2	0.97^a	2.85^b	3.78^ab	5.83^a	5.29^a	7.11^a	7.67^a	6.02^a	7.72^a
T3	0.94^a	5.98^a	4.71^a	4.16^ab	4.53^ab	5.95^ab	5.68^ab	5.80^a	6.74^a
注：同列不同小写字母表示不同处理之间差异显著（P < 0.05）。下同。Notes: different lowercase letters in the same column indicate significant differences under varied treatments (P < 0.05). The same below.

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表 4 不同处理下山新杨叶片叶绿素b含量

Table 4 Contents of chlorophyll b in leaves of P. davidiana × P. bolleana under different treatments μg/g

处理 Treatment	0 h	1 h	3 h	6 h	12 h	1 d	5 d	10 d	15 d
CK	0.81^a	0.24^b	1.85	1.88^b	2.08^b	2.08^b	3.68^b	2.07^b	3.33^b
T1	0.77^a	4.93^a	4.63^a	4.95^a	4.93^a	4.90^a	4.94^ab	5.46^ab	5.32^a
T2	0.91^a	3.73^a	2.65^b	4.23^a	4.48^a	5.04^a	5.71^a	6.66^a	6.16^a
T3	1.21^a	3.67^a	3.92^ab	4.40^a	4.99^a	4.82^a	5.36^a	6.21^a	6.15^a

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表 5 不同处理下山新杨叶片叶绿素总含量

Table 5 Total contents of chlorophyll in leaves of P. davidiana × P. bolleana under different treatments μg/g

处理 Treatment	0 h	1 h	3 h	6 h	12 h	1 d	5 d	10 d	15 d
CK	1.64^a	1.30^c	4.57^b	3.99^b	5.62^b	5.69^b	7.33^b	5.75^b	6.72^b
T1	1.71^a	7.74^b	7.18^a	8.77^ab	8.35^ab	9.06^ab	9.28^ab	10.93^ab	11.63^ab
T2	1.87^a	6.57^b	6.43^ab	10.07^a	9.78^a	12.15^a	13.38^a	12.68^a	13.88^a
T3	2.14^a	9.65^a	8.64^a	8.56^ab	9.51^a	10.76^ab	11.04^ab	12.01^a	12.90^a

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1. 材料与方法
1.1 材　料
1.2 细胞壁微观形貌表征
1.3 化学成分表征
1.4 吸附热力学量测定
2. 结果与讨论
2.1 细胞壁结构
2.2 化学成分变化
2.3 吸附热力学分析
2.3.1 Hailwood-Horrobin模型拟合
2.3.2 吸湿平衡状态下的热力学量分析
2.3.2.1 微分吸着热
2.3.2.2 自由能变化
2.3.2.3 微分吸着熵
2.3.3 水分吸湿与解吸的比较
3. 结　　论

1. 材料与方法
1.1 材　料
1.2 细胞壁微观形貌表征
1.3 化学成分表征
1.4 吸附热力学量测定
2. 结果与讨论
2.1 细胞壁结构
2.2 化学成分变化
2.3 吸附热力学分析
2.3.1 Hailwood-Horrobin模型拟合
2.3.2 吸湿平衡状态下的热力学量分析
2.3.2.1 微分吸着热
2.3.2.2 自由能变化
2.3.2.3 微分吸着熵
2.3.3 水分吸湿与解吸的比较
3. 结　　论

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加纳木霉ACCC30153对山新杨幼苗促生抗病功能分析

作者简介: 黄颖，博士。主要研究方向：森林保护。Email：729218328@qq.com 地址：150040 黑龙江省哈尔滨市和兴路 26 号东北林业大学林学院

责任作者: 刁桂萍，博士，副教授。主要研究方向：森林保护。Email：dgp2003@126.com 地址：同上。

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