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内蒙古温带草地丛枝菌根真菌群落对紫花苜蓿幼苗生长的影响

秦绍尉, 张静, 王伊乐, 许宇航, 周春菡, 陈科宇, 纪宝明

秦绍尉, 张静, 王伊乐, 许宇航, 周春菡, 陈科宇, 纪宝明. 内蒙古温带草地丛枝菌根真菌群落对紫花苜蓿幼苗生长的影响[J]. 北京林业大学学报, 2024, 46(11): 53-61. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20240213
引用本文: 秦绍尉, 张静, 王伊乐, 许宇航, 周春菡, 陈科宇, 纪宝明. 内蒙古温带草地丛枝菌根真菌群落对紫花苜蓿幼苗生长的影响[J]. 北京林业大学学报, 2024, 46(11): 53-61. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20240213
Qin Shaowei, Zhang Jing, Wang Yile, Xu Yuhang, Zhou Chunhan, Chen Keyu, Ji Baoming. Influence of arbuscular mycorrhizal fungi from two temperate grassland types on Medicago sativa seedling growth in Inner Mongolia of northern China[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2024, 46(11): 53-61. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20240213
Citation: Qin Shaowei, Zhang Jing, Wang Yile, Xu Yuhang, Zhou Chunhan, Chen Keyu, Ji Baoming. Influence of arbuscular mycorrhizal fungi from two temperate grassland types on Medicago sativa seedling growth in Inner Mongolia of northern China[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2024, 46(11): 53-61. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20240213

内蒙古温带草地丛枝菌根真菌群落对紫花苜蓿幼苗生长的影响

基金项目: 北京林业大学大学生创新训练计划(S202310022253、S202310022254),内蒙古自治区科技计划(2023KJHZ0021)。
详细信息
    作者简介:

    秦绍尉。主要研究方向:草地生态学。Email:qinshaowei@bjfu.edu.cn 地址:100083 北京市海淀区清华东路35号北京林业大学草业与草原学院

    责任作者:

    张静,副教授。主要研究方向:草地生态学。Email:zhangjing_2019@bjfu.edu.cn 地址:同上。

  • 中图分类号: S963.22+3.3;S812

Influence of arbuscular mycorrhizal fungi from two temperate grassland types on Medicago sativa seedling growth in Inner Mongolia of northern China

  • 摘要:
    目的 

    探究天然草原丛枝菌根真菌(AMF)群落与紫花苜蓿幼苗之间的互惠共生机制,为筛选能够促进紫花苜蓿生长的乡土优质菌种资源提供理论依据。

    方法 

    选用内蒙古温带草甸草原和典型草原AMF群落作为接种剂,同时设置不含有AMF的微生物滤液作为对照,分别对两种紫花苜蓿品种(北林201和中苜1号)进行接种。通过分析AMF群落与紫花苜蓿的互惠共生关系及其对植物幼苗生长发育和养分吸收的影响,评估天然草原AMF群落与紫花苜蓿幼苗的共生效应。

    结果 

    (1)不同草地类型AMF群落组成和结构均存在显著差异,均能与不同品种的紫花苜蓿建立良好的共生关系;球囊霉属和近明球囊霉属是所有接种处理根系统中的优势菌属。(2)与不接种相比,AMF群落接种能显著提高紫花苜蓿地上生物量和植物体内磷含量,但显著降低植物体内氮含量,尤其是在接种典型草原AMF群落后,紫花苜蓿的氮吸收效应表现为显著负效应,导致植物氮磷比显著降低(P < 0.05);北林201紫花苜蓿接种后的菌根生长响应、磷吸收效应和氮吸收效应均显著优于中苜1号的接种效应。(3)北林201接种后的磷吸收效应与根内AMF多样性呈显著正相关关系(P < 0.05),而中苜1号的磷吸收效应则与AMF多样性呈显著负相关系(P < 0.05),意味着多样化的AMF群落可能更有利于北林201对磷的吸收。

    结论 

    天然草原AMF群落能够显著促进紫花苜蓿幼苗生长和磷元素吸收,但是这种生态功能受到紫花苜蓿品种特征的影响,AMF群落组成在一定程度上决定了其生态功能的差异性。因此,在选择乡土AMF菌剂进行接种时,需要考虑紫花苜蓿品种与AMF群落之间的匹配性,以实现最佳的生产价值和生态效益。

    Abstract:
    Objective 

    This study aimed to investigate the mutualistic symbiotic mechanism between arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) communities from natural grasslands and Medicago sativa seedlings, providing a theoretical foundation for identifying suitable native high-quality microbial resources.

    Method 

    We collected two AMF community inoculants from temperate meadow steppe and typical steppe in Inner Mongolia of northern China and used microbial filtrates without AMF propagules as controls. Two M. sativa varieties, Beilin 201 and Zhongmu No.1, were inoculated with these AMF communities. By analyzing the symbiotic relationship between AMF community and M. sativa and their effects on seedling growth and nutrient absorption, we evaluated the symbiotic effect of AMF communities from natural grasslands on M. sativa seedlings.

    Result 

    (1) There were significant differences in composition and structure of AMF communities from different grassland types, and all communities successfully established symbiotic relationships with two varieties of M. sativa. Glomus and Claroideoglomus were dominant genera in inoculated root systems. (2) Compared with no inoculation, AMF inoculation significantly increased the aboveground biomass and phosphorus content in plant tissues of M. sativa, but significantly reduced the nitrogen content in plant tissues but reduced nitrogen content. Notably, plants inoculated with AMF from the typical steppe exhibited a significant negative effect on nitrogen uptake, resulting in a significant decrease in plant nitrogen-to-phosphorus ratio (P < 0.05). The mycorrhizal growth response, phosphorus uptake effect, and nitrogen uptake of Beilin 201 were significantly greater than those of Zhongmu No. 1. (3) The mycorrhizal phosphorus uptake response of Beilin 201 after inoculation showed a significant positive correlation with the diversity of AMF within the roots, whereas the mycorrhizal phosphorus uptake response of Zhongmu No.1 exhibited a significant negative correlation with AMF diversity (P < 0.05), which means that a diverse diversity of AMF community may be more conducive to phosphorus uptake by Beilin 201.

    Conclusion 

    The AMF community from natural grasslands can significantly promote the growth and phosphorus absorption of M. sativa seedlings, but this ecological function is influenced by characteristics of M. sativa varieties. The composition of AMF community plays a crucial role in determining these ecological functions. Therefore, when selecting native AMF community for inoculation, it is essential to consider the compatibility between plant varieties and AMF communities to maximize optimal production and ecological benefits.

  • 木材作为一种具有宏观、介观和微观多级孔隙结构的材料,根据其内部孔隙的大小,可将其分为微孔(2 nm以下)、中孔(2 ~ 50 nm)和大孔(50 nm以上)[1]。木材的孔隙效应在赋予木材高强重比、良好的热学和声学性能等优势的同时,也为水分提供了容纳空间,进而造成木材的吸水、吸湿性以及尺寸不稳定性等。在木材含水率变化过程中,水分子进入或离开木材通过影响细胞壁内部的瞬时孔隙,与木材实质发生相互作用,因此在考虑木材的宏观物理、力学性质随含水率变化的机理时,若简单归结为由结合水的增减所致,而忽略了水分造成的细胞壁微观结构变化,则难以建立对含水木材构效关系的完整而全面的理解。因此,由水分所引发的木材细胞壁孔隙结构变化规律与机制具有重要的理论意义与研究价值。

    木材细胞壁孔隙的表征技术多种多样,如压汞法、氮气吸附法、溶剂排斥法、差示扫描热孔计法等,不同方法各自有其优缺点和测量范围。压汞法是测量绝干木材的经典方法,由于汞对木材具有非润湿性,需借助外加压力才能进入木材孔隙中,汞压入的孔隙半径与所受外压力呈反比,压力越大,汞能进入的孔隙半径越小,通过测量不同压力下进入孔隙中汞的量,即可获知不同孔径相应的孔隙体积。根据压汞法测量原理,越小的孔需要越高的压力,但是极高的汞压力极有可能会导致纳米级孔隙的塌陷,当压力达到200 MPa时,细胞壁的微孔即被压溃,造成测量结果的偏差[2],因此压汞法仅适用于较大孔隙的测量。氮气吸附法同样用于绝干木材孔隙的测量,而该法通过解析吸附等温线可在保持材料原有特性的基础上对木材的孔隙体积、比表面积等孔隙特征进行测量[3-4],由于使用气体测量,避免了过高压力对于木材细胞壁结构的影响,从而保证了结果的可靠性。Yin等[5]使用氮气吸附法测量了杉木(Cunninghamia lanceolata)木块的孔隙结构,结果表明:样品等温吸附线介于Ⅱ型和Ⅳ型之间,边材和心材中均存在微孔和中孔,其尺寸范围为1 ~ 30 nm,且多以10 nm以下孔隙为主。对于含水木材的孔隙,溶质排斥法是经典的测量方法,其通过测量不同尺寸的溶质分子(探针分子)在水分饱和的试材中的渗透情况来确定细胞壁孔隙尺寸分布。由于测试过程需要将试样整体浸泡于不同的溶液中待其中溶质完全渗透,故该法仅适用于饱水状态的样品,且测量过程耗时长。出于对不同含水率下的木材孔隙的测量需求以及改善测量耗时的问题,差示扫描热孔计法是近年来常用的孔隙测量技术,该技术利用差示扫描量热法(DSC),结合吉布斯−汤姆逊方程,计算不同尺寸的孔隙内的水分含量,从而得到木材的孔隙分布[6-7]。Grigsby等[8]使用DSC研究了辐射松(Pinus radiata)生材边材经不同干燥处理后的孔径分布,结果表明:辐射松生材的孔隙主要分布在径级小于40 nm的范围内,超临界干燥至纤维饱和点(fiber saturation point,FSP)时的孔隙主要分布于径级小于20 nm的范围内,而且以径级小于10 nm的孔隙为主,早、晚材并无明显差异。

    尽管已有一定关于木材细胞壁孔隙的研究,但多数文献报告仅限于单一的含水率状态,而尚未对全含水率范围内水分变化过程中木材细胞壁孔隙的系统考察。本研究聚焦于绝干状态、气干状态、纤维饱和状态和饱水状态4种典型水分状态下的木材细胞壁孔隙结构的变化,基于氮气吸附法、差示扫描热孔计法考察孔隙的孔径分布、比表面积、孔体积等特征参数,从微观水平上解释木材与水分的相互作用机理,以期为木材的热质转移、渗透性以及木材改性提供理论指导,并服务于木制品的高效加工与利用,同时这也是阐释木材水分前沿科学问题以及其关联技术革新的迫切需求。

    采用我国资源丰富、用途广泛的阔叶树种杨树(Populus spp.)和针叶树种杉木,采购自中国河北省。取杨木和杉木边材,从纹理通直且无缺陷位置制取尺寸为5 mm(径向) × 5 mm(弦向) × 1 mm(轴向)的试样。

    绝干状态:不同的干燥方法对木材样品的孔隙结构造成一定影响,根据苌姗姗等[9]的研究,超临界干燥能较好地保持木材孔隙结构的完整。但超临界干燥条件较为理想,本研究基于为实际服务的考虑,故采用常用的常规干燥方法。将所有试材在103 ℃下烘干8 h至其绝干并称质量,保留一组绝干试样,其余试样进行吸湿或吸水。

    气干状态:在干燥器内放置NaBr饱和盐溶液,同时放入温湿度计以检测干燥器内湿度,将干燥器整体放入恒温恒湿箱,设置温度为室温25 ℃,待干燥器内的相对湿度达到60%左右时,将试样放入干燥器内进行吸湿。每日对样品进行称质量,当相邻两次样品质量变化小于0.02%时,则视为样品达到水分平衡[10]

    纤维饱和状态:在干燥器内加入去离子水,其余操作同气干状态。由外推法得到的FSP一般在23% ~ 33%[11]。由于木材的吸湿滞后,干燥后的木材重新吸湿所得的平衡含水率仅为解吸平衡含水率的80%左右[12]

    饱水状态:试样经绝干后直接放入去离子水中浸泡65 d。

    将所有达到平衡的试样进行质量称量并计算含水率,详见表1

    表  1  经处理后的试样含水率
    Table  1.  Moisture content of the sample after treatment %
    试样
    Sample
    气干状态
    Air-dry state
    纤维饱和状态
    Fiber saturation state
    饱水状态
    Saturated state
    杨木 Poplar wood1323180
    杉木 Fir wood1220283
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    对于绝干试样,采用美国康塔公司生产的Autosorb-iQ全自动比表面和孔径分布分析仪进行测试。试样首先在80 ℃下真空脱气11 h,目的是去除以物理形式依附在木材孔隙表面上的气体及其他吸附杂质分子,以使试样表面洁净,从而确保比表面积和孔径测量结果的准确有效。脱气处理完成后使样品自然冷却至室温,称取样品管与试样的质量并计算试样净质量。

    测得不同相对压力下的平衡氮气吸附量后,采用BET多层吸附理论及其公式可计算得到单分子层饱和吸附量,并根据氮分子在液氮沸点温度下的有效截面积和阿伏伽德罗常数,即可计算出比表面积:

    Sg=V0NAAmVmm×1018 (1)

    式中:Sg 为被测样品比表面积(m2/g);V0为标准状态下气体分子单层饱和吸附量(mL);NA为阿伏伽德罗常数;Am 为气体分子等效最大横截面积(m2);Vm为气体体积(cm3);m为被测样品质量(g)。

    代入上述数据后可得到氮气吸附法计算比表面积的简化公式:

    Sg=4.36V0m (2)

    氮气吸附发孔径分布常采用BJH(Barrett-Joiner-Halenda)方法进行计算[13-14],该方法假设材料孔隙为圆柱状,而在该假设下,可根据开尔文原理,用递推法计算不同区间的孔隙半径,其半径可由开尔文公式给出:

    Rk=2γVmRTlg(p/p0) (3)

    式中:Rk为毛细管半径(nm);γ为氮气沸点时的表面张力(N/m);Vm为氮气的摩尔体积(cm3);R为普适气体常数;T为绝对温度(K);p/p0为氮气的相对压力。

    根据开尔文公式所计算出的孔隙半径,进而中孔孔径分布利用BJH公式进行计算:

    Vpn=[rpnrkn+Δtn/2]2[ΔVnΔtn1J=1Acj] (4)

    式中:Vpn为孔隙体积(cm3);rpn为最大孔径(nm);rkn为毛细管半径(nm);Δtn为吸附的氮气层厚度(nm);ΔVn为毛细管体积(cm3);Acj为排空气体后的吸附面积(m2)。

    对于含水试材,利用美国TA公司生产的DSC-Q2000差示扫描量热仪进行冻融测试,并采用Park等[6]提出的方法测量。将试样裁切至直径4 mm左右的木片,放入密封铝坩埚中进行密封。每个试样首先冷却并校准到−40 ℃,平衡5 min后以2 ℃/min的恒定速率将试样预定的温度并进行保温使其热流回归基线,通过在每个升温过程中测量试样中熔化的水量来确定孔径分布,具体设置详见表2

    表  2  不同孔径对应的温度和保温时间
    Table  2.  Temperature and holding time corresponding to different pore sizes
    孔径
    Pore
    size/nm
    温度
    Temperature/℃
    保温时间 Holding time/min
    气干状态
    Air-dry
    state
    纤维饱和状态
    Fiber saturation
    state
    饱水状态
    Saturated
    state
    1.6−40.0885
    1.8−30.0333
    2.5−21.0332
    4.0−11.6332
    6.0−7.3333
    7.9−5.4333
    10.0−4.2333
    14.7−2.8334
    20.4−2.0335
    31.1−1.3338
    50.1−0.83312
    99.6−0.43316
    396.6−0.13320
    10.0333
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    以时间为x轴的DSC积分可得到各温度下的总热量,假定冻结的水分在第一个升温阶段不发生熔化,可根据此阶段的吸热量计算显热,而后续阶段的熔化焓则通过总热减去显热来计算:

    Hm=HtCpΔTmw (5)

    式中:Hm为水分的熔化焓(J);Ht为总吸热量(J);Cp为水的比热容(J/(g·℃));ΔT为温度变化量(℃),mw为样品水分质量(g)。

    冻结的水分质量可由升温过程中的吸热曲线进行积分而获得,计算方法如下:

    mFW=ΔHpeakmwHf (6)

    式中:mFW为冻结水分质量(g);ΔHpeak为峰积分面积,即熔融焓(J/g);Hf为冻结水分的熔化比热,取333.6 J/g。

    根据冰点降低原理,毛细管内水分的熔化温度降低与孔隙直径的关系可以通过吉布斯−汤姆逊方程得到[15],据此可以推导出孔隙直径D(nm)的计算公式:

    ΔT=T0Tm(D)=4T0γlscosθDρHf (7)

    式中:ΔT 为孔隙中的冻结水熔化温度下降值(K);T0为纯净水的熔化温度(K);Tm(D) 为直径为 D 的孔隙中冰晶的熔化温度(K);γls为冰−水界面表面能,取12.1 mJ/m2θ为冻结水与孔壁的接触角,取180°;ρ 为可冻结结合水密度,取1.0 × 103 kg/m3Hf 为冻结水分的熔化比热,取333.6 J/g。

    由公式(7)可见,随着孔隙直径的减小,其冰点降低的程度增大。

    图1所示为杨木与杉木绝干试材的氮气吸附等温线,两者的变化趋势类似,在相对压力p/p0小于0.9时,氮气吸附量近乎线性上升,当相对压力p/p0大于0.9时,由于吸附质发生毛细管聚集,因而氮气吸附量迅速攀升。杉木的氮气饱和吸附量高于杨木的,表明杉木内孔隙体积总体可能大于杨木。两种木材的吸附等温线相较于解吸等温线均可见明显的滞后现象,根据国际纯化学与应用化学联合会(IUPAC)的分类,吸附滞后环可分为H1、H2、H3和H4这4种情况[16],反映了4种不同的孔隙结构类型:H1型滞后是具有相同尺寸和形状的通道所穿过的材料的特征;H2型滞后对应于孔口小于孔腔的通道(即墨瓶孔);H3型滞后通常出现在孔径分布甚宽的材料中;而H4型滞后则表明中孔的数量受微孔限制。由杨木与杉木的滞后环形状来看,两者介于H3型与H4型之间,表明材料内部孔径分布较宽。

    图  1  绝干状态杨木与杉木氮气吸附与脱附等温线
    Figure  1.  Nitrogen adsorption and desorption isotherms of poplar wood and fir wood under oven-dry state

    关于绝干状态下木材细胞壁是否具有孔隙,不同学者有不同的结论,其观点主要分为无孔说和多孔说两类[17]。利用压汞法或置换法测得的结果表明绝干木材细胞壁与木材实质密度十分接近,因而认为细胞壁是无孔的[18]。另一方面,利用光学显微镜法测量的结果表明绝干状态下的细胞壁仍具有10.2% ~ 19.2%的孔隙[19]。而使用氮气吸附法对绝干杉木的测量结果表明:边材和心材中均存在微孔和中孔,其尺寸范围为1 ~ 30 nm,且多以10 nm以下孔隙为主[5]。因而认为绝干细胞壁是有孔的。

    表3列出了BET法所得的细胞壁孔隙比表面积和BJH法所得的中孔平均孔径与平均孔体积,表中的数据表明绝干状态下的木材细胞壁确实存在一定的孔隙。由表3可见:杉木在比表面积方面高于杨木51.36%,但在孔体积方面吸附和解吸过程得到的平均孔体积杨木则分别高于杉木47.42%和44.17%,而在平均孔径方面两者相差不大。图2显示了由BJH方法所计算的杨木与杉木的细胞壁中孔孔径分布,BJH方法所适用的孔径范围约为1.7 ~ 300 nm,但该方法对于中孔范围(2 ~ 50 nm[20])内的孔隙实用性更高,故取该范围内的计算结果;对于小于2 nm的孔隙,仅取与之相近的1.7 nm以上的结果。由图2可见:杨木与杉木的大部分孔隙分布于10 nm以下的较小孔隙,其中又以4 nm以下的孔隙为主,而在10 nm以上的孔隙较少,并呈现孔体积随孔径增大而迅速减小的趋势。这与Yin等[5]的测量结果相一致。图2显示杨木和杉木分别在6.5和17.5 nm处存在较小的峰值,但总体趋势与杉木的差异并不明显,对两者的孔体积数据进行双侧成对t检验,取显著性水平为0.05,检验结果t值为1.284 3,小于双尾临界值2.119 9,故不拒绝原假设,表明绝干状态下的杨木与杉木的平均孔径并无显著差异。

    表  3  杨木与杉木氮气吸附孔隙结构参数
    Table  3.  Pore structure parameters of poplar wood and fir wood obtained by nitrogen adsorption
    试样 SampleSBET/(m2·g−1)Da/nmVa/(mm3·g−1)Dd/nmVd/(mm3·g−1)
    杨木 Poplar wood5.6191.94933.702.20335.35
    杉木 Fir wood8.5051.94922.862.18224.52
    注:SBET为BET测得的孔隙比表面积;DaDd分别为吸附和解吸曲线计算的平均孔径;VaVd分别为吸附和解吸曲线计算的平均孔体积。Notes: SBET is pore specific surface area measured by BET; Da and Dd are the average pore size calculated by the adsorption and desorption curves, respectively; Va and Vd are the average pore volume calculated by the adsorption and desorption curves.
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    图  2  绝干状态下杨木与杉木细胞壁孔径分布
    Figure  2.  Pore size distribution of poplar wood and fir wood cellwall under oven-dry state

    含水样品孔隙数据均由DSC测量所得的冻融数据计算,结果如图3所示。其中,在饱水状态下,根据两种木材的DSC冻融数据所计算的孔隙数据远远高于气干状态以及纤维饱和状态,尤其在10 nm以上的孔隙,其间存在较大的数量级差异。该现象可能与自由水的含量有关,木材中的内含物会使自由水冰点降低0.1 ~ 2.0 ℃[21],在冻融过程中,这一温度范围内的自由水提前熔化而产生的大量吸热信号会覆盖本该在该温度下熔化的细胞壁内部结合水的吸热信号,故而直接影响该范围内所计算的孔隙体积,造成数据不准确。而在气干状态与纤维饱和状态下,由于木材内几乎不含有自由水,故不受此影响。由于木材细胞壁内的孔隙直径大多几乎不超过5 nm[22-23],故本节将选取10 nm以内的数据进行讨论分析,从而避免自由水信号的干扰。

    图  3  DSC测试所得杨木与杉木细胞壁孔径分布
    Figure  3.  Pore size distribution of poplar wood and fir wood cell wall obtained by DSC

    图4图5分别显示了10 nm下的样品孔径分布及其累计分布。总体上,随着木材含水率的提高,其细胞壁孔隙分布曲线亦有上升。当木材从气干状态吸湿至纤维饱和状态时,水分子进入细胞壁中的无定形区域,与主成分上的羟基或已吸附的水分子形成氢键结合,使得分子链间水层变厚,进而扩大细胞壁孔隙。

    图  4  10 nm以下杨木与杉木细胞壁孔径分布
    Figure  4.  Pore size distribution of poplar wood and fir wood cell wall below 10 nm
    图  5  10 nm以下杨木与杉木细胞壁累计孔径分布
    Figure  5.  Cumulative pore size distribution of poplar woodand fir wood cell wall below 10 nm

    通常认为,当木材含水率高于纤维饱和点时,水分子主要以液态自由水的形式存在于细胞腔及细胞间隙等较大的空间,故而对细胞壁内部的影响有限[12]。然而,图4图5的结果表明:在纤维饱和状态与饱水状态之间,木材细胞壁孔隙分布差异十分明显。Babiak等[24]提出:FSP可被分为吸湿极限与细胞壁饱和两部分。由于本研究采用在100%相对湿度条件下达到平衡含水率的方法获得纤维饱和状态的木材样本,实际上是木材的吸湿极限状态,而在饱水状态下,木材内部水分含量进一步升高,此时木材达到细胞壁饱和状态。与吸湿极限状态不同的是,在达到细胞壁饱和状态的过程中,水分子能够继续进入木材细胞壁,但新进入的水分子不会打破细胞壁基质之间原有的氢键[22, 24-26]。因此,在这一含水率范围内,含水率的增加仍会导致细胞壁孔隙的增大。而在木材达到细胞壁饱和状态以上,继续升高的信号数据则由自由水的增加造成,而不是由细胞壁内部孔隙增加造成。由于利用DSC测量孔隙的过程需要依靠样品内水分的相变得以实现,这一数据偏差属DSC自身测量原理所致的技术局限性。另外,在饱水状态下,木材内部各级孔隙几乎由水分完全填充,在冷冻过程中,由于液态水凝结成冰时体积发生膨胀,因此完全填充的孔隙可能受此影响被进一步扩大,这导致了饱水状态下的测量孔隙体积要略高于实际值。

    图4还显示,在纤维饱和状态下细胞壁孔径分布要略高于气干状态,故对两种状态下的孔径分布差异进行单侧成对t检验,取显著性水平为0.05,检验结果杨木t值为3.381,杉木t值为4.554,均高于单尾临界值2.132,表明两种木材的含水率从气干状态提高至纤维饱和状态的过程中,其细胞壁孔隙体积发生了显著的提升。

    需要注意的是,差示扫描热孔计法所得的孔隙结果与氮气吸附法有所不同,由于前者测量的是一段温度内的样品冻融吸热量,因此其测量结果也对应于一段孔径内的孔体积之和,而非单位孔径所对应的孔体积,故图4中各点数据代表的分别是1.8 ~ 2.5、2.5 ~ 4.0、4.0 ~ 6.0、6.0 ~ 8.0、8.0 ~ 10.0 nm孔径所对应的孔体积。从图4中可见:无论是杨木还是杉木,其细胞壁孔隙体积均在2.5 ~ 4.0 nm处达到极大值,从气干到纤维饱和状态,杨木细胞壁孔径分布极大值从2.75 mm3/g增加到4.20 mm3/g,增加了52.73%,杉木细胞壁孔径分布极大值从2.90 mm3/g增加到4.60 mm3/g,增加了58.62%;而在木材从纤维饱和状态到饱水状态的过程中,杨木细胞壁孔径分布极大值增加至22.48 mm3/g,增加了435.24%,杉木则增加至26.24 mm3/g,增加了470.43%。在2.4 ~ 4.0 nm之后的分布曲线下降,表明随着孔径的增加,孔隙体积逐渐减小。在6.0 ~ 8.0 nm处的气干状态与纤维饱和状态下,细胞壁孔隙体积减小至1.0 ~ 1.5 mm3/g,之后保持稳定。由此可见,木材细胞壁内大部分孔隙集中于2.0 ~ 4.0 nm,这与Telkki等[23]的研究结果相一致。

    如2.2节所述,由于氮气吸附法与DSC两种方法的测量原理有所不同,故两者无法直接进行孔隙微分分布的比较,而采用累计分布以避免数据的不一致。因此,图6a6b展示了4种典型状态下,杨木与杉木细胞壁在30 nm以下范围内的孔隙累计分布情况。如2.2节所述,在水分的润胀作用下,无论是杨木还是杉木,饱水样品的细胞壁孔隙体积增速远远大于其他3种状态。在木材改性的过程中,改性剂常需要通过浸渍的方式使之进入木材内部,并与木材细胞壁发生相互作用,因此在饱水状态下的细胞壁孔隙对于木材改性具有一定的积极作用,更高的孔隙率有助于改性剂的渗透以及物理或化学填充[27]

    图  6  30 nm以下木材细胞壁累计孔径分布
    Figure  6.  Cumulative pore size distribution of wood cell wall below 30 nm

    为进一步讨论吸湿范围内木材细胞壁的孔隙变化,图6c6d聚焦了绝干、气干、纤维饱和点3种状态的孔隙累计分布。图6c6d显示:随着木材含水率的增加,细胞壁孔体积整体具有上升趋势。其中以10 nm为界,在10 nm以下的部分孔体积增长最快,而在10 nm之后孔体积增长趋于平缓,再次表明木材细胞壁内部孔隙直径以10 nm以下为主,而较大的孔隙较少。这与Grigsby等[8]的结果相一致。此外,在5 nm以下的区域,绝干状态的累计孔隙略高于气干状态,部分甚至略高于纤维饱和状态。在木材干燥过程中,水分快速向外界移动,细胞壁内部部分孔隙发生塌陷[6],在降低整体孔径分布的同时生成了大量微小的孔隙,使得孔隙分布峰值向左上方移动,因此在更小的孔径区域绝干样品的孔隙累计体积反而高于含水样品。

    在树种方面,对两种树种的单位孔体积分布数据进行双侧成对t检验,结果见表4。除前文提到的绝干状态,在纤维饱和状态以及饱水状态下的检验结果均不显著,故无法认为杨木与杉木在该水分状态下孔径分布存在显著性差异。

    表  4  4种典型水分状态下杨木与杉木孔径分布差异显著性检验
    Table  4.  Significance test of difference in pore size distribution between poplar wood and fir wood underfour typical water states
    水分状态
    Water state
    t
    t value
    双尾t临界值
    t critical value
    of two-tail
    双尾p
    p value
    of two-tail
    绝干状态
    Oven-dry state
    1.284 32.119 90.217 3
    气干状态
    Air-dry state
    2.511 02.364 60.040 3
    纤维饱和状态
    Fiber saturation state
    1.906 92.364 60.098 2
    饱水状态
    Saturated state
    1.834 72.446 90.116 2
    注:绝干状态、气干状态以及纤维饱和点状态检验范围为0 ~ 32 nm,饱水状态检验范围为0 ~ 20 nm。Notes: the test range of oven-dry state, air-dry state and fiber saturation point state is 0−32 nm, and that of saturated state is 0−20 nm.
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    本研究聚焦于绝干、气干、纤维饱和点、饱水4种典型水分状态下的木材细胞壁孔隙结构的变化,结合氮气吸附法与差示扫描热孔计法两种方法考察孔隙的孔径分布、比表面积、孔体积等特征参数。研究结果表明:在木材由绝干状态逐渐吸湿及吸水至饱水状态的过程中,木材细胞壁孔隙体积呈明显增大趋势。从气干到纤维饱和状态,杨木细胞壁孔径分布最大值从2.75 mm3/g增加到4.20 mm3/g,增加了52.73%,杉木细胞壁孔径分布最大值从2.90 mm3/g增加到4.60 mm3/g,增加了58.62%;而在木材从纤维饱和状态到饱水状态的过程中,杨木细胞壁孔径分布最大值增加至22.48 mm3/g,增加了435.24%,杉木则增加至26.24 mm3/g,增加了470.43%。在木材达到吸湿极限后,含水率继续增加仍会有水分子进入细胞壁进而扩大细胞壁孔隙,当木材达到饱水状态后,细胞壁孔隙体积增大至极限,但由于大量自由水的信号干扰,差示扫描热孔计法所测得的孔径分布参考范围有限。此外,在绝干状态下的木材细胞壁孔隙发生塌陷而使孔隙减小。由于木材在4种典型水分状态下孔隙分布均存在十分明显的差异,因此在不同典型水分状态之间的木材吸湿或吸水过程中的细胞壁孔隙变化可作为后续深入研究的方向。

  • 图  1   不同草地类型AMF属的相对丰度

    AFM1.贝加尔针茅草甸草原根土混合物;AMF2.大针茅典型草原根土混合物。下同。AFM1, root-soil mixture of Stipa baicalensis meadow steppe; AMF2, root-soil mixture of Stipa grandis typical steppe. Same as below.

    Figure  1.   Relative abundance of each AMF genus in temperate meadow steppe and typical steppe

    图  2   不同接种处理下球囊霉属(a)和近明球囊霉属(b)的相对丰度变化

    不同小写字母表示同一AMF群落接种处理下,不同品种之间的相对丰度存在显著差异(P < 0.05)。Different lowercase letters indicate significant differences in relative abundance among different varieties under same AMF community inoculation treatment (P < 0.05).

    Figure  2.   Changes in relative abundance of Glomus (a) and Claroideoglomus (b) in roots under different inoculation treatments

    图  3   不同草地AMF群落对紫花苜蓿的菌根生长效应(a)、氮吸收效应(b)和磷吸收效应(c)

    *表示菌根效应与零模型具有显著差异(T检验,P < 0.05)。不同小写字母表示同一AMF群落接种处理下,不同品种之间的菌根效应存在显著差异。* indicates significant difference between mycorrhizal effect and null model after T test (P < 0.05). Different lowercase letters indicate significant differences in mycorrhizal effect among different varieties under same AMF community inoculation treatment.

    Figure  3.   Mycorrhizal growth effect (a), nitrogen uptake effect (b) and phosphorus uptake effect (c) of alfalfa seedlings under different inoculation conditions

    图  4   苜蓿菌根效应与AMF群落特征的相关性

    Figure  4.   Correlations between rhizobial growth effect and AMF community characteristics

    表  1   不同草地类型AMF群落物种多样性

    Table  1   Species diversity of AMF communities from different grassland types

    多样性指数
    Diversity index
    AMF1AMF2
    丰富度 Richness143 ± 6 b176 ± 10 a
    香农威纳多样性指数 Shannon-Wiener diversity index5.54 ± 0.09 a5.28 ± 0.20 a
    辛普森多样性指数 Simpson diversity index5.54 ± 0.09 a5.28 ± 0.20 a
    Pielou均匀度指数 Pielou evenness index0.77 ± 0.02 a0.71 ± 0.02 b
    注:小写字母表示不同草地类型AMF物种多样性存在差异显著(P < 0.05)。Note: lowercase letters indicate significant differences in species diversity of AMF from different grassland types (P < 0.05).
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    表  2   接种条件下AMF侵染率和α多样性指数

    Table  2   AMF colonization rate and α diversity indexes under inoculation conditions

    接种剂
    Inoculant
    苜蓿品种
    Alfalfa
    variety
    菌丝侵染率
    Hyphal
    colonization
    rate/%
    泡囊侵染率
    Vesicular
    colonization
    rate/%
    总侵染率
    Total
    colonization
    rate/%
    丰富度
    Richness
    香农威纳多样性指数
    Shannon-Wiener
    diversity index
    辛普森多样性指数
    Simpson diversity
    index
    Pielou均匀度指数
    Pielou evenness
    index
    AMF1北林201
    Beilin 201
    28.93 ± 3.0410.13 ± 1.5639.07 ± 3.9283 ± 84.44 ± 0.130.89 ± 0.030.70 ± 0.01
    中苜1号
    Zhongmu No.1
    18.00 ± 7.1717.11 ± 6.5135.12 ± 13.0678 ± 124.40 ± 0.180.89 ± 0.030.71 ± 0.03
    AMF2北林201
    Beilin 201
    35.51 ± 4.5615.82 ± 4.5651.33 ± 7.4292 ± 124.66 ± 0.270.9 ± 0.030.72 ± 0.03
    中苜1号
    Zhongmu No.1
    36.00 ± 7.9814.44 ± 2.3750.44 ± 6.64100 ± 164.90 ± 0.300.91 ± 0.020.74 ± 0.02
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    表  3   植物地上生物量、氮含量、磷含量和氮磷比

    Table  3   Plant aboveground biomass, nitrogen contents, phosphorus contents and nitrogen to phosphorus ratios

    接种剂
    Inoculant
    苜蓿品种
    Alfalfa variety
    生物量/(g·盆−1
    Biomass/ (g·pot−1
    N含量
    Nitrogen content/(mg·g−1
    P含量
    Phosphorus content/(mg·g−1
    N∶P
    CK 0.16 ± 0.02c 24.78 ± 0.97a 0.74 ± 0.02c 33.47 ± 2.05a
    AMF1 北林201
    Beilin201
    0.95 ± 0.06a 24.47 ± 0.62a 2.02 ± 0.09a 12.19 ± 0.37b
    中苜1号
    Zhongmu No.1
    0.74 ± 0.08ab 21.57 ± 1.17b 1.50 ± 0.12ab 14.67 ± 1.33b
    AMF2 北林201
    Beilin201
    0.77 ± 0.10ab 19.83 ± 0.91b 1.72 ± 0.07b 11.68 ± 0.94b
    中苜1号
    Zhongmu No.1
    0.63 ± 0.05b 16.50 ± 0.90c 1.62 ± 0.17b 10.65 ± 1.18b
    注:鉴于本研究不同CK之间的数据变异性较小,为更直观地展示,本表中CK为所有对照的平均值 ± 标准误。不同小写字母表示同一AMF群落接种和对照处理下,不同品种之间的相对丰度存在显著差异(P < 0.05)。Notes: due to small variation in data under different control treatments, for ease of presentation, the control values in this table are average values ± standard errors of all control treatments. Different lowercase letters indicate significant differences in relative abundance between different varieties under same AMF community inoculation and control treatment (P < 0.05).
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出版历程
  • 收稿日期:  2024-07-01
  • 修回日期:  2024-07-10
  • 网络出版日期:  2024-11-14
  • 刊出日期:  2024-11-24

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