Effects of different concentrations of IBA, NAA on rooting of etiolated shoots of Quercus variabilis and Quercus mongolica
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摘要:目的以不同质量浓度的NAA、IBA对选育的栓皮栎、蒙古栎优良种源当年生实生苗半木质化黄化嫩枝扦插生根的影响，探究何种质量浓度下最有利于其扦插生根，以期选出最合适的质量浓度组合，为今后栓皮栎和蒙古栎的无性选育提供技术支持。方法本研究以选育的栓皮栎、蒙古栎优良种源当年生实生苗半木质化黄化嫩枝为材料，采用萘乙酸（NAA）、吲哚丁酸（IBA）2种植物生长调节剂，分别设置6个质量浓度（3 000、2 000、1 500、750、600、400 mg/L），并用清水、未黄化实生苗半木质化嫩枝为对照，调查不同质量浓度NAA、IBA对栓皮栎、蒙古栎黄化嫩枝扦插生根的影响。结果黄化插穗在生根率、生根数、根长和根径方面均明显优于未黄化插穗，2种植物生长调节剂对黄化栓皮栎、蒙古栎嫩枝插穗不定根诱导差异显著。IBA分别为2 000、1 500、750、600、400 mg/L时处理黄化或未黄化栓皮栎、蒙古栎嫩枝的生根效果均优于NAA相对应的5个不同质量浓度处理的生根效果。在生长调节剂各个质量浓度条件下，处理的黄化栓皮栎、蒙古栎插穗，其不定根发生率、生根数等生根指标均明显高于未黄化插穗所对应的指标。当质量浓度为1 500 mg/L时，栓皮栎黄化嫩枝生根率比未黄化栓皮栎嫩枝的还要高20.0%，蒙古栎黄化嫩枝生根率比未黄化蒙古栎嫩枝的还要高14.6%。结论栓皮栎、蒙古栎优良种源当年生实生苗半木质化的黄化与未黄化嫩枝扦插繁殖的最佳植物生长调节剂处理剂量均为1 500 mg/L的IBA。其不定根发生率、生根数等生根指标均最大，其中黄化栓皮栎插穗生根率达100%，黄化蒙古栎插穗生根率达84.6%。Abstract:ObjectiveThe effects of different concentrations of NAA and IBA on the rooting of one-year-old semi-lignified etiolated shoots of the selected provenances of Quercus variabilis and Quercus mongolica were investigated, aiming to find out what kind of mass concentration is most favorable for the rooting of semi-lignification of the etiolated shoot cuttings of current-year seedlings from fine provenances of Quercus variabilis and Quercus mongolica, and to select the most suitable mass concentration, and provide technical support for the asexual selection of Quercus variabilis and Quercus mongolica.MethodIn this study, semi-lignified etiolated shoots of current-year seedlings from selected provenances of Quercus variabilis and Quercus mongolica were used as materials. Two kinds of growth regulators（Butyric acid (IBA) and naphthylacetic acid (NAA)）were used. Setting 6 mass concentrations of 3 000, 2 000, 1 500, 750, 600, 400 mg/L, respectively, and rinsing, non-etiolated semi-lignified shoots of the seedlings were used as control to investigate the effects of different concentrations of IBA and NAA on rooting of etiolated shoots of Quercus variabilis and Quercus mongolica.ResultThe results showed that the etiolated cuttings were superior to the non-etiolated cuttings in rooting rate, rooting number, root length and root diameter. There were significant differences in adventitious rooting induction between two plant growth regulators for shoot cuttings of Quercus variabilis and Quercus mongolica. When the concentration was 2 000, 1 500, 750, 600, 400 mg/L for IBA, the rooting effects of treated etiolated or non-etiolated shoots of Quercus variabilis and Quercus mongolica were better than those of NAA. Under each mass concentration of growth regulators, the rooting indexes such as the adventitious root incidence and the number of roots of etiolated Quercus variabilis and Quercus mongolica were significantly higher than those of the non-etiolated cuttings. Under the condition of 1 500 mg/L, rooting rate of the etiolated Quercus variabilis was 20.0% higher than that of the non-etiolated one, and the rooting rate of etiolated Quercus mongolica was 14.6% higher than that of the non-etiolated one.Conclusion1 500 mg/L IBA is the best plant growth regulator treatment for the etiolated and non-etiolated semi-lignified shoots of the current-year seedlings of Quercus variabilis and Quercus mongolica from superior provenance. The rooting rate of adventitious roots and rooting number were the highest, among which the rooting rate of etiolated Quercus variabilis cuttings was 100%, and that of etiolated Quercus mongolica cuttings was 84.6%.
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栓皮栎（Quercus variabilis）又名软木栎，是壳斗科栎属落叶乔木，木材坚韧耐磨，纹理直，耐水湿，结构略粗，是30个主要工业用材树种之一[1]。蒙古栎（Quercus mongolica）属壳斗科栎属，落叶乔木，是国家二级珍贵树种，也是中国东北林区中主要的次生林树种。栎类在生态建设中也发挥着重要的作用。
对插穗进行黄化处理可使插穗幼化，也是一种复幼的方法，可有效促进植物生根，许多难生根树种经过黄化处理后能够生根[2]。裴东[3]在核桃（Juglans regia）无性繁殖中采用埋干黄化催芽嫩枝扦插生根的方法，扦插成活率大大提高，且操作方法比常规的繁殖方法简易。有关黄化嫩枝扦插在栎类树种上的应用未见报道。
栎树体内含有酚类等阻碍生根物质，属扦插极难生根树种，采用生长调节剂使难生根树种长出不定根是无性繁殖扦插中最常用的技术手段，使用一定浓度的植物生长调节剂处理插穗可以提高穗内某些酶活性，调节内源激素的含量，加快细胞代谢，从而促进插穗生根[4]。有关栓皮栎和蒙古栎扦插成功的报道较少[5]。闫文涛等[6]研究了不同生长调节剂对蒙古栎嫩枝扦插生根的影响，研究结果表明：1 000 mg/L的IBA处理10 s，同时和1 000 mg/L的IBA+NAA处理10 s，可有效促进愈伤组织发育，但生根率仅为3.3%。刘家财等[7]通过对弗吉尼亚栎（Quercus virginiana）的引种与扦插繁殖生产试验研究，发现采用1 000 mg/L的IBA速蘸处理的中部枝条生根效果最佳，其成活率达75.0%。吴幸连[8]对大叶栎（Quercus griffithii）扦插繁殖技术的研究结果表明：未木质化的嫩枝以 550 mg/L的IBA + 500 mg/L的ABT-1号处理最好，平均生根率高达80.3%，平均生根数达7.8条/株。吕秀立等[9]对苏玛栎（Quercus shumardii）无性繁殖的研究表明：1 ~ 3年生实生母树上的穗条有一定的扦插繁殖潜力，以0.5 mg/L的IBA浸泡1 h处理苏玛栎插穗效果最佳，生根率达到24.2%；从4 ~ 13年生苏玛栎母树上采穗扦插，并进行相同处理后则不能生根，基部腐烂且无愈伤组织产生。胡婉仪等[10]在栓皮栎、麻栎（Quercus acutissima）、小叶栎（Quercus chenii）、石栎（Lithocarpus glaber）扦插简报中写到：1年生栓皮栎生根率为56%，2年生栓皮栎生根率为44%，1年生麻栎生根率为56%，1年生小叶栎生根率31%，1年生石栎生根率为32%，但这些试验材料仅使用了生根粉处理。从以上可以看出，绝大多数的栎树扦插生根还不理想，严重影响了优良种质、优良家系和优良无性系栎树的无性扩繁和推广。目前，已有的研究仅限于未经过实施黄化处理的嫩枝所进行的扦插试验，缺乏对其枝条进行黄化处理后的扦插研究。
本研究在实生苗上部搭建遮阳网，进行遮荫，获得黄化的繁殖材料，在此基础上进行扦插试验，以期研究黄化处理对两种栎树嫩枝扦插生根的影响。为了探索黄化处理栓皮栎、蒙古栎枝条后的扦插生根效果，提高生根率，本试验从栎树枝条黄化处理、不同生长调节剂种类及其不同质量浓度3个方面，对栓皮栎、蒙古栎扦插育苗生根影响进行研究，以期筛选出科学合理的最佳处理组合，总结栓皮栎、蒙古栎扦插育苗技术，为其扦插育苗提供技术支撑和科学依据[11]。
1. 材料与方法
1.1 材 料
试验于2018年7月—2018年9月，在河北省易县洪崖山国有林场管理局七里亭示范场苗圃塑料大棚进行，以当年生栓皮栎和蒙古栎实生苗为材料，在实生苗上部搭建遮阳网，进行遮荫，对苗木进行黄化处理，黄化处理10 d后采集生长势良好，有黄化特征的且无病虫害的当年生嫩枝，修剪成长7 ~ 8 cm的插穗，每个插穗预留2 ~ 3片叶，每片叶剪去2/3，预留3个以上腋芽，上切口在距上端芽1 cm处平切，下切口距下端芽0.5 cm处斜切。扦插基质为颗粒状珍珠岩（直径为3 mm），并将珍珠岩装入营养杯（直径为10 cm）中备用。在带有遮阳网的塑料大棚中进行扦插。
1.2 试验设计
本试验以选育的栓皮栎、蒙古栎优良种源当年生实生苗半木质化黄化嫩枝为材料，以未黄化实生苗半木质化嫩枝为对照，选用IBA、NAA 这2种植物生长调节剂，分别设置3 000、2 000、1 500、750、600和400 mg/L共6个质量浓度，以清水处理为对照，共14个处理（包括对照），每个处理48株插穗，3次重复，共2 016株插穗。
1.3 扦插与管理
将栓皮栎和蒙古栎插穗基部1 ~ 2 cm浸入到不同质量浓度的IBA、NAA溶液中，分别浸泡30 s，进行扦插处理，插入深度为1/3插穗。插穗扦插前将珍珠岩基质用0.1%高锰酸钾溶液消毒，1 h后浇透水，扦插后略喷水至叶片不滴水为宜，每天多次喷水保湿至叶片不滴水，保持棚内空气相对湿度在80%以上，并适当遮荫。插后22 d，统计存活插穗数、总根条数、根径粗度、根长度，用电子游标卡尺测量根径粗度，并计算生根率、总生根条数、根长和根径。
1.4 数据分析
扦插22 d，调查生根率、根径粗度、总根条数、根长度等指标，采用隶属函数模糊综合评价法，对栎树不同品种不同质量浓度NAA、IBA下的单株根数、单株根长、单株根径进行分析，即依据公式生根率（%） = （生根株数/供试总数） × 100%计算得分值，然后根据平均得分值进行排序[12]。隶属函数值
U(Xj) 计算公式为：U(Xj)=(Xj−Xmin 式中：Xj为指标测定值，Xmin、Xmax为所有处理某一指标的最小值和最大值。将各处理不同指标的隶属值进行累加求其平均值，平均值越大扦插生根效果越好[13]。
2. 结果与分析
2.1 不同质量浓度NAA、IBA对栓皮栎嫩枝扦插生根的影响
2.1.1 NAA对栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
本试验条件下，栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插属于皮生根类型，NAA各质量浓度处理的栓皮栎黄化嫩枝扦插生根指标均优于对照。当质量浓度达到1 500 mg/L时，生根指标水平均达到最高，其中黄化处理的生根率、平均生根数、平均根长、平均根径分别为90.0%、（3.70 ± 0.29）条、（3.40 ± 0.41）cm、（0.20 ± 0.04）mm，比未黄化的分别高出约15.0%、2.20 条、2.20 cm、0.04 mm。当质量浓度为400 mg/L时，黄化插穗平均根长为（1.20 ± 0.50）cm；当质量浓度为600、400 mg/L时，未黄化插穗生根率为0（表1、图1、图2）。其中，用清水处理的插穗3 d后叶片开始发黄，7 d后开始出现枯萎现象，10 d后死亡，生根率为0。用NAA处理的黄化插穗18 d时可在插穗基部观察到愈伤组织比未黄化插穗提前1 d，在扦插第24 d时黄化比未黄化的各项生根指标都高，其中黄化插穗最长不定根约4.50 cm，比未黄化插穗长3 cm，但根系较白，侧根较少。黄化与未黄化插穗生根指标均随着NAA质量浓度的升高而出现先升高后降低的趋势，随着NAA质量浓度增加到2 000 mg/L时，黄化与未黄化插穗各项生根指标水平均开始下降,当NAA质量浓度增加到3 000 mg/L时，黄化与未黄化生根率均为0。4个生根指标综合比较表明：在低质量浓度时，随NAA质量浓度的增加，对栓皮栎黄化与未黄化插穗生根有促进作用，当NAA质量浓度达1 500 mg/L时，黄化与未黄化插穗生根效果最佳，是较适宜的生长调节剂浓度。
表 1 不同质量浓度NAA对栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响Table 1. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus variabilis处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 20.0 16.0 1.00 ± 0.20 1.00 ± 0.1 1.40 ± 0.30 1.00 ± 0.12 0.20 ± 0.08 0.15 ± 0.09 1 500 mg/L NAA 90.0 75.0 3.70 ± 0.29 1.50 ± 0.25 3.40 ± 0.41 1.20 ± 0.31 0.20 ± 0.04 0.16 ± 0.03 750 mg/L NAA 25.0 17.0 3.00 ± 0.30 1.10 ± 0.33 2.50 ± 0.60 1.10 ± 0.40 0.20 ± 0.06 0.13 ± 0.04 600 mg/L NAA 2.0 0 1.50 ± 0.10 0 1.20 ± 0.80 0 0.20 ± 0.07 0 400 mg/L NAA 5.0 0 2.50 ± 0.50 0 1.20 ± 0.50 0 0.20 ± 0.05 0 ![]()
图 1 不同质量浓度NAA对栓皮栎黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 1. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of etiolated Quercus variabilis shoots![]()
图 2 不同质量浓度NAA对栓皮栎未黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 2. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of non-etiolated Quercus variabilis shoots2.1.2 IBA对栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
本试验条件下，栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插均属于皮生根类型，IBA各质量浓度处理的栓皮栎黄化嫩枝扦插生根均优于对照，当质量浓度达到1 500 mg/L时，生根指标水平达到最高，其中黄化处理的生根率、平均生根数、平均根长、平均根径分别为100.0%、（5.20 ± 0.23）条、（5.20 ± 0.40） cm、（0.16 ± 0.02） mm，比未黄化分别高出约20.0%、1.1条、0.80 cm、0.02 mm（表2、图3、图4）。其中，用清水处理的插穗3 d后叶片开始发黄，7 d后开始出现枯萎现象，10 d后死亡，生根率为0。用IBA处理的黄化插穗17 d时可在插穗下部观察到乳白嫩根，比未黄化的提前了1 d，22 d后最长不定根约5.20 cm，比未黄化的长了0.80 cm，但根系较细长呈褐色，侧根较多。黄化和未黄化嫩枝生根指标随着IBA质量浓度的升高呈现先升高后降低的趋势。随着IBA质量浓度增加到2 000 mg/L时，各项指标水平开始下降，当IBA质量浓度增加到3 000 mg/L，生根率为0。4个生根指标综合比较表明：在低质量浓度时，随IBA质量浓度的增加，对栓皮栎黄化嫩枝插穗生根有促进作用，当IBA质量浓度为1 500 mg/L时，生根效果最佳，是较适宜的生长调节剂浓度。
表 2 不同质量浓度IBA对栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响Table 2. Effects of different mass concentrations of IBA on rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus variabilis处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 12.5 0 2.90 ± 0.50 0 2.90 ± 0.20 0 0.12 ± 0.02 0 1 500 mg/L NAA 100.0 80.0 5.20 ± 0.23 4.10 ± 0.20 5.20 ± 0.40 4.40 ± 0.40 0.16 ± 0.02 0.14 ± 0.02 750 mg/L NAA 54.0 46.0 4.40 ± 0.34 3.20 ± 0.80 4.40 ± 0.20 3.80 ± 0.30 0.15 ± 0.04 0.14 ± 0.03 600 mg/L NAA 11.0 8.0 2.10 ± 0.50 2.90 ± 0.40 2.80 ± 0.80 1.60 ± 0.20 0.15 ± 0.10 0.13 ± 0.05 400 mg/L NAA 10.0 5.0 2.20 ± 0.70 2.20 ± 0.90 3.90 ± 0.60 2.60 ± 0.94 0.13 ± 0.03 0.13 ± 0.01 ![]()
图 3 不同质量浓度IBA对栓皮栎黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 3. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of etiolated Quercus variabilis shoots![]()
图 4 不同质量浓度IBA对栓皮栎未黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 4. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of non-etiolated Quercus variabilis shoots2.2 不同质量浓度NAA、IBA对蒙古栎嫩枝扦插生根的影响
2.2.1 不同质量浓度NAA对蒙古栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
本试验条件下，蒙古栎黄化和未黄化插穗扦插属于皮生根类型，NAA各质量浓度处理的蒙古栎黄化插穗扦插生根指标均优于对照。当质量浓度达到1 500 mg/L时，生根指标达到最高，其中黄化处理的生根率、平均生根数、平均根长、平均根径分别为43.0%、（5.50 ± 0.20）条、（3.70 ± 0.60） cm、（0.30 ± 0.04） mm，比未黄嫩枝分别高出约13.0%、3.20条、1.10 cm、0.10 mm（表3）。其中，用清水处理的插穗3 d后叶片开始发黄，7 d后开始出现枯萎现象，10 d后死亡，生根率为0（图5、图6）。用NAA处理的黄化插穗17 d时，可在插穗基部观察到愈伤组织比未黄化插穗提前了2 d；22 d时，黄化插穗最长不定根长为3.91 cm，比未黄化插穗长1.17 cm，但根系较白，侧根较少。生根指标均随着NAA质量浓度的升高呈现先升高后降低的趋势。在NAA低质量浓度（400 mg/L）处理下，对蒙古栎黄化插穗扦插生根促进效果不明显；当质量浓度达到1 500 mg/L时，明显高于其他质量浓度下的对应指标；随着NAA质量浓度增加到2 000 mg/L时，各项指标开始下降；当NAA质量浓度增加到3 000 mg/L，生根率为0。当NAA质量浓度为3 000、2 000、600、400 mg/L时，未黄化插穗生根率为0。4个生根指标综合比较表明：在低质量浓度时，随NAA质量浓度的增加，对蒙古栎黄化和未黄化插穗生根均有促进作用；当NAA质量浓度为1 500 mg/L时，生根效果最佳，是较适宜的生长调节剂浓度。
表 3 不同质量浓度NAA对蒙古栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响Table 3. Effects of different mass concentrations of NAA on rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus mongolica处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝
平均生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 11.0 0 1.30 ± 0.70 0 2.20 ± 0.20 0 0.20 ± 0.02 0 1 500 mg/L NAA 43.0 30.0 5.50 ± 0.20 2.30 ± 0.10 3.70 ± 0.60 2.60 ± 0.10 0.30 ± 0.04 0.20 ± 0.01 750 mg/L NAA 27.0 5.0 4.10 ± 0.40 1.90 ± 0.40 3.60 ± 0.20 1.60 ± 0.40 0.20 ± 0.03 0.20 ± 0.02 600 mg/L NAA 12.0 0 3.10 ± 0.30 0 3.00 ± 0.18 0 0.20 ± 0.06 0 400 mg/L NAA 5.0 0 1.20 ± 0.50 0 1.10 ± 0.50 0 0.19 ± 0.07 0 ![]()
图 5 不同质量浓度NAA对蒙古栎黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 5. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of etiolated Quercus mongolica shoots![]()
图 6 不同质量浓度NAA对蒙古栎未黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 6. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of non-etiolated Quercus mongolica shoots2.2.2 不同质量浓度IBA对蒙古栎黄化和未黄嫩枝扦插生根的影响
本试验条件下，蒙古栎黄化和未黄化扦插属于皮生根类型，IBA各质量浓度处理的蒙古栎黄化嫩枝扦插生根均优于对照。其中，用清水处理的插穗3 d后叶片开始发黄，7 d后开始出现枯萎现象，10 d后死亡，生根率为0。用IBA处理的黄化插穗15 d时可在插穗下部观察到乳白嫩根，22 d后最长不定根约6.82 cm（图7），但根系较细长呈褐色，侧根较多。当质量浓度达到1 500 mg/L时，生根指标水平达到最高，其中黄化处理的生根率、平均生根数、平均根长、平均根径分别为84.6%、（4.80 ± 0.60）条、（6.30 ± 0.60）cm、（0.15 ± 0.01）mm，比未黄化的分别高出约14.6%、3.00条、1.70 cm、0.01 mm（表4）。生根指标均随着IBA质量浓度的升高出现先升高后降低的趋势。随着IBA质量浓度增加到2 000 mg/L时，各项指标开始下降；当IBA质量浓度增加到3 000 mg/L，生根率为0（图8）。4个生根指标综合比较表明：在低质量浓度时，随IBA质量浓度的增加，对蒙古栎黄化和未黄化插穗生根有促进作用；当IBA质量浓度为1 500 mg/L时，生根效果最佳，是较适宜的生长调节剂浓度。
表 4 不同质量浓度IBA对蒙古栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响Table 4. Effects of different mass concentrations of IBA on rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus mongolica处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝
平均生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 20.0 16.0 2.80 ± 0.26 1.0 ± 0.20 3.80 ± 0.80 2.50 ± 0.30 0.13 ± 0.05 0.13 ± 0.02 1 500 mg/L NAA 84.6 70.0 4.80 ± 0.60 1.80 ± 0.10 6.30 ± 0.60 4.60 ± 0.50 0.15 ± 0.01 0.14 ± 0.03 750 mg/L NAA 10.0 8.0 2.50 ± 0.20 1.50 ± 0.30 3.60 ± 0.50 3.20 ± 0.40 0.14 ± 0.09 0.13 ± 0.06 600 mg/L NAA 6.0 5.0 2.00 ± 0.10 1.30 ± 0.80 3.50 ± 0.30 1.10 ± 0.20 0.11 ± 0.06 0.13 ± 0.08 400 mg/L NAA 9.0 4.5 2.00 ± 0.70 1.24 ± 0.50 3.50 ± 0.40 1.00 ± 0.10 0.13 ± 0.03 0.02 ± 0.04 ![]()
图 7 不同质量浓度IBA对蒙古栎黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 7. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of etiolated Quercus mongolica shoots![]()
图 8 不同质量浓度IBA对蒙古栎未黄化嫩枝扦插生根的影响Figure 8. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of non-etiolated Quercus mongolica shoots3. 讨论与结论
植物扦插生根诱导是一个复杂的生理过程，它受到生理、形态、生化等多方面因素的影响，其中植物生长调节剂和插穗处理方式是关键的制约因素。本研究以选育的栓皮栎、蒙古栎优良种源当年生实生苗半木质化的黄化嫩枝为扦插材料，未黄化嫩枝作对照，选取了NAA、IBA两种外源植物生长调节剂进行研究，发现植物生长调节剂质量浓度过高或过低都会较大地影响插穗生根效果。IBA分别为2 000、1 500、750、 600、400 mg/L时处理黄化或未黄化栓皮栎、蒙古栎嫩枝的生根效果均优于NAA相对应的5个不同质量浓度处理的生根效果。因此，栓皮栎与蒙古栎黄化与未黄化嫩枝扦插最适合的生根生长调节剂为IBA，最适合的质量浓度为1 500 mg/L。外源植物生长调节剂通过调节插穗细胞新陈代谢，增加组织再生能力，提高酶活性诱导根源基的发生，从而有利于植物扦插繁殖形成不定根[14-15]，但不同种类外源植物调节剂对植物插穗生根效果的影响不同。郭素娟[16]认为用植物生长调节剂处理是促进难生根树种插穗生根的重要技术手段，不仅有利于根原始体的诱导，而且能够促进不定根的发育和生长。例如，IBA在蒙古栎扦插中对蒙古栎嫩枝插穗不定根的诱导效果优于ABT1号、NAA和IBA+NAA的处理[6]；IBA在国槐（Sophora japonica）嫩枝扦插生根中，生根效果显著高于NAA、ABT1号生根粉[17]。申展[18]通过对闽楠（Phoebe bournei）无性繁殖的研究发现：多年生母树上的当年生半木质化的闽楠枝条和当年实生苗茎段作为插穗，均能生根成苗，在生根率和生根时间方面均有较好的效果；采用多年生母树上的当年生木质化枝条也能生根，但是效果远不如当年生实生苗好。高茜茜等[19]以晚松（Pinus rigida）当年生实生苗嫩枝为插穗，研究不同的扦插环境和扦插基质对晚松嫩枝扦插生根的影响情况，试验结果表明：不同扦插环境和基质均可显著影响晚松扦插的生根效果，其中扦插环境以180 cm的塑料拱棚最佳，生根率为26.67%，在带有自动间歇喷雾装置的扦插池中，扦插基质以珍珠岩为最佳，生根率为28.00%[19]。由于栎树属于难生根树种，绝大多数的栎树扦插生根还不理想，本研究充分考虑了材料的幼化效应与生根困难的问题，因此对插穗选择了黄化处理，结果表明：采用1 500 mg/L的IBA速蘸30 s扦插时，无论栓皮栎还是蒙古栎，其生根率均最高，且根系发达，主根粗壮，有侧根和须根；在相同质量浓度下，NAA、IBA处理后的黄化嫩枝扦插的生根率、平均生根数和平均根长，均高于未黄化嫩枝扦插。因此，我们推测黄化处理对于生根能力的影响，可能是由于黄化处理对枝条生长的方向性和极性的改变，引起枝条内源激素分布的变化。黄化处理不仅能够抑制生根阻碍物质的生成，增强植物生根激素的活性，使叶绿素消失，组织黄化，皮层增厚，薄壁细胞增多，淀粉和生长素有所积累，单宁减少，有利于根原始体分化，而且还可以使插穗木质化速度减慢，保持组织的幼嫩性。黄化处理结合生长调节剂处理可使难生根树种获得生根能力[2]，经过黄化处理的树木通常具有良好的生根能力，保持树木幼态特性，不仅对于林木生产和良种无性繁殖具有重要的实践意义，而且也对体细胞再生和生物技术在林木上应用有借鉴价值[20]。
致谢 真诚感谢李云老师和孙宇涵老师的悉心指导，感谢河北省洪崖山国有林场管理局的工作人员及师弟李健康等人给予的帮助，正是集体的努力才使得本试验进展顺利！
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图 1 不同质量浓度NAA对栓皮栎黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 1. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of etiolated Quercus variabilis shoots
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图 2 不同质量浓度NAA对栓皮栎未黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 2. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of non-etiolated Quercus variabilis shoots
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图 3 不同质量浓度IBA对栓皮栎黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 3. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of etiolated Quercus variabilis shoots
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图 4 不同质量浓度IBA对栓皮栎未黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 4. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of non-etiolated Quercus variabilis shoots
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图 5 不同质量浓度NAA对蒙古栎黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 5. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of etiolated Quercus mongolica shoots
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图 6 不同质量浓度NAA对蒙古栎未黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 6. Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of non-etiolated Quercus mongolica shoots
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图 7 不同质量浓度IBA对蒙古栎黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 7. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of etiolated Quercus mongolica shoots
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图 8 不同质量浓度IBA对蒙古栎未黄化嫩枝扦插生根的影响
Figure 8. Effects of different mass concentrations of IBA on the rooting of non-etiolated Quercus mongolica shoots
表 1 不同质量浓度NAA对栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
Table 1 Effects of different mass concentrations of NAA on the rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus variabilis
处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 20.0 16.0 1.00 ± 0.20 1.00 ± 0.1 1.40 ± 0.30 1.00 ± 0.12 0.20 ± 0.08 0.15 ± 0.09 1 500 mg/L NAA 90.0 75.0 3.70 ± 0.29 1.50 ± 0.25 3.40 ± 0.41 1.20 ± 0.31 0.20 ± 0.04 0.16 ± 0.03 750 mg/L NAA 25.0 17.0 3.00 ± 0.30 1.10 ± 0.33 2.50 ± 0.60 1.10 ± 0.40 0.20 ± 0.06 0.13 ± 0.04 600 mg/L NAA 2.0 0 1.50 ± 0.10 0 1.20 ± 0.80 0 0.20 ± 0.07 0 400 mg/L NAA 5.0 0 2.50 ± 0.50 0 1.20 ± 0.50 0 0.20 ± 0.05 0 
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表 2 不同质量浓度IBA对栓皮栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
Table 2 Effects of different mass concentrations of IBA on rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus variabilis
处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 12.5 0 2.90 ± 0.50 0 2.90 ± 0.20 0 0.12 ± 0.02 0 1 500 mg/L NAA 100.0 80.0 5.20 ± 0.23 4.10 ± 0.20 5.20 ± 0.40 4.40 ± 0.40 0.16 ± 0.02 0.14 ± 0.02 750 mg/L NAA 54.0 46.0 4.40 ± 0.34 3.20 ± 0.80 4.40 ± 0.20 3.80 ± 0.30 0.15 ± 0.04 0.14 ± 0.03 600 mg/L NAA 11.0 8.0 2.10 ± 0.50 2.90 ± 0.40 2.80 ± 0.80 1.60 ± 0.20 0.15 ± 0.10 0.13 ± 0.05 400 mg/L NAA 10.0 5.0 2.20 ± 0.70 2.20 ± 0.90 3.90 ± 0.60 2.60 ± 0.94 0.13 ± 0.03 0.13 ± 0.01
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表 3 不同质量浓度NAA对蒙古栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
Table 3 Effects of different mass concentrations of NAA on rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus mongolica
处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝
平均生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 11.0 0 1.30 ± 0.70 0 2.20 ± 0.20 0 0.20 ± 0.02 0 1 500 mg/L NAA 43.0 30.0 5.50 ± 0.20 2.30 ± 0.10 3.70 ± 0.60 2.60 ± 0.10 0.30 ± 0.04 0.20 ± 0.01 750 mg/L NAA 27.0 5.0 4.10 ± 0.40 1.90 ± 0.40 3.60 ± 0.20 1.60 ± 0.40 0.20 ± 0.03 0.20 ± 0.02 600 mg/L NAA 12.0 0 3.10 ± 0.30 0 3.00 ± 0.18 0 0.20 ± 0.06 0 400 mg/L NAA 5.0 0 1.20 ± 0.50 0 1.10 ± 0.50 0 0.19 ± 0.07 0
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表 4 不同质量浓度IBA对蒙古栎黄化和未黄化嫩枝扦插生根的影响
Table 4 Effects of different mass concentrations of IBA on rooting of etiolated and non-etiolated shoots of Quercus mongolica
处理条件
Treatment
condition黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of etiolated shoots/%未黄化嫩枝
生根率
Rooting rate of non-etiolated shoots/%黄化嫩枝平均
生根数
Average rooting number of etiolated shoots未黄化嫩枝
平均生根数
Average rooting number of non-etiolated shoots黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of etiolated shoots/cm未黄化嫩枝
平均根长
Mean root length of non-etiolated shoots/cm黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of etiolated shoots/mm未黄化嫩枝
平均根径
Mean root diameter of non-etiolated shoots/mm清水对照
Water control0 0 0 0 0 0 0 0 3 000 mg/L NAA 0 0 0 0 0 0 0 0 2 000 mg/L NAA 20.0 16.0 2.80 ± 0.26 1.0 ± 0.20 3.80 ± 0.80 2.50 ± 0.30 0.13 ± 0.05 0.13 ± 0.02 1 500 mg/L NAA 84.6 70.0 4.80 ± 0.60 1.80 ± 0.10 6.30 ± 0.60 4.60 ± 0.50 0.15 ± 0.01 0.14 ± 0.03 750 mg/L NAA 10.0 8.0 2.50 ± 0.20 1.50 ± 0.30 3.60 ± 0.50 3.20 ± 0.40 0.14 ± 0.09 0.13 ± 0.06 600 mg/L NAA 6.0 5.0 2.00 ± 0.10 1.30 ± 0.80 3.50 ± 0.30 1.10 ± 0.20 0.11 ± 0.06 0.13 ± 0.08 400 mg/L NAA 9.0 4.5 2.00 ± 0.70 1.24 ± 0.50 3.50 ± 0.40 1.00 ± 0.10 0.13 ± 0.03 0.02 ± 0.04
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