高级检索

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究

曲凯 国浩平 王宝锐 周文玲 侯丽丽 李琴 李际红 程甜甜

曲凯, 国浩平, 王宝锐, 周文玲, 侯丽丽, 李琴, 李际红, 程甜甜. 基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究[J]. 北京林业大学学报, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
引用本文: 曲凯, 国浩平, 王宝锐, 周文玲, 侯丽丽, 李琴, 李际红, 程甜甜. 基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究[J]. 北京林业大学学报, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
Qu Kai, Guo Haoping, Wang Baorui, Zhou Wenling, Hou Lili, Li Qin, Li Jihong, Cheng Tiantian. Genetic diversity analysis of Chionanthus retusus natural population based on SRAP molecular markers[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
Citation: Qu Kai, Guo Haoping, Wang Baorui, Zhou Wenling, Hou Lili, Li Qin, Li Jihong, Cheng Tiantian. Genetic diversity analysis of Chionanthus retusus natural population based on SRAP molecular markers[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212

基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究

doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
基金项目: 山东省农业良种工程项目(2016LZGC036),山东省林业科技创新项目(LYCX02-2018-11),泰安市农业良种工程(2018)40号
详细信息
    作者简介:

    曲凯。主要研究方向:林木种质资源。Email:17661212306@163.com 地址:271000 山东省泰安市泰山区岱宗大街61号山东农业大学林学院

    通讯作者:

    李际红,教授。主要研究方向:林木分子生物学及林木种质资源收集利用。Email:jhli@sdau.edu.cn 地址:同上

Genetic diversity analysis of Chionanthus retusus natural population based on SRAP molecular markers

  • 摘要:   目的  揭示我国不同地区流苏树(Chionanthus retusus)天然群体的遗传多样性,更好地为合理保护和开发利用提供科学依据。  方法  采用相关序列扩增多态性(SRAP)分子标记技术对不同地区的7个流苏树天然群体的62份样品进行了遗传多样性和群体遗传结构研究。  结果  (1)7个流苏树天然群体具有较高的遗传多样性,8对SRAP引物共扩增出1 728条清晰条带,其中1 649条具有多态性,PPB(多态性条带比例)为95.43%;群体间的有效等位基因数为 1.213 7,Nei’s基因多样性指数为 0.153 7,Shannon’s信息多样性指数为0.268 0。(2)流苏树天然群体存在较高水平的种群内遗传变异和较低水平的群体间遗传变异(Gst = 0.133 6),7个流苏树天然群体间存在较高水平的基因交流(Nm = 3.243 7)。(3)流苏树群体间的遗传相似系数介于0.898 0 ~ 0.973 6之间,平均值为0.934 4,经Mantel检验(r = 0.288,P = 0.205)及群体间的聚类证明群体间的遗传距离与地理距离之间无明显相关性;62份流苏树初级种质聚类结果表明大部分种质表现为同一群体的多数个体聚在一起,部分种质存在不同群体间的个体聚在一起的现象,表现出群体间遗传变异相对稳定而种群内的遗传变异水平相对较高的特点,与基因多样性分析结果一致。  结论  综合多因素分析推测,太行山地区可能是我国流苏树种质资源的主要产区。
  • 图  1  不同流苏树天然群体间遗传关系聚类分析图

    Figure  1.  Dendrogram of UPGMA analysis of seven Chionanthus retusus natural populations

    图  2  7个流苏树天然群体间遗传距离与地理距离的相关性分析

    Figure  2.  Correlation analysis between genetic distance and geographic distance of seven Chionanthus retusus natural populations

    图  3  62份流苏树初级种质资源基于SRAP分析的UPGMA聚类结果

    Figure  3.  UPGMA dendrogram of primary collection of 62 Chionanthus retusus germplasm based on SRAP

    图  4  62份流苏树资源SRAP标记的主坐标分析图

    Figure  4.  Principal coordinate analysis for 62 samples of Chionanthus retusus

    表  1  流苏树天然群体采样地位置和生境

    Table  1.   Location and habitat of natural population sampling of Chionanthus retusus

    群体及编号
    Population and No.
    取样株数
    Sampling plant number
    海拔
    Altitude/m
    纬度
    Latitude (N)
    经度
    Longitude (E)
    北京市怀柔区 Huairou District, Beijing City (B-H) 10 40 116°38′ 40°17′
    河北省保定市 Baoding City, Hebei Province (H-B) 5 20 115°28′ 38°55′
    河南省南阳市桐柏县 Tongbai County, Nanyang City, Henan Province (H-T) 10 240 113°17′ 32°27′
    山东省青州市 Qingzhou City, Shandong Province (S-Q) 10 250 118°18′ 36°41′
    山西省临汾市安泽县 Anze County, Linfen City, Shanxi Province (S-A) 10 260 112°14′ 36°08′
    江苏省宿迁市沭阳县 Shuyang County, Suqian City, Jiangsu Province(J-S) 10 10 118°39′ 34°09′
    湖北省安陆市 Anlu City, Hubei Province (H-A) 7 130 113°41′ 31°15′
    下载: 导出CSV

    表  2  7个流苏树天然群体间的地理距离

    Table  2.   Geographic distance of seven Chionanthus retusus natural populations km

    群体 PopulationH-TH-AS-AS-QJ-SB-HH-B
    H-T
    H-A246
    S-A609752
    S-Q856966672
    J-S698795799373
    B-H1 0391 204736512809
    H-B862993547448710221
    下载: 导出CSV

    表  3  试验所用SRAP引物信息

    Table  3.   Information of SRAP primers used in the experiment

    上游引物
    Forward primer
    引物序列
    Primer sequence (5′→3′)
    下游引物
    Reverse primer
    引物序列
    Primer sequence (5′→3′)
    T-ATA TGAGTCCAAACCGGATA G-AAT GACTGCGTACGAATTAAT
    T-AGC TGAGTCCAAACCGGAGC G-TGC GACTGCGTACGAATTTGC
    T-AAT TGAGTCCAAACCGGAAT G-GAC GACTGCGTACGAATTGAC
    T-ACC TGAGTCCAAACCGGACC G-TGA GACTGCGTACGAATTTGA
    T-AAG TGAGTCCAAACCGGAAG G-AAC GACTGCGTACGAATTAAC
    T-TAA TGAGTCCAAACCGGTAA G-GCA GACTGCGTACGAATTGCA
    T-ACA TGAGTCCAAA CCGG ACA G-CAA GACTGCGTACG AATT CAA
    T-TGT TGAGTCCAAA CCGG TGT G-AGC GACTGCGTACG AATT AGC
    下载: 导出CSV

    表  4  基于SRAP选择性扩增引物产生的条带多态性

    Table  4.   Polymorphism of SRAP bands obtained by selective amplification based on the primer combinations

    引物组合
    Primer combination
    总带数
    Total number of band
    多态性条带数
    Polymorphic band number
    多态性条带比例
    Percentage of polymorphic band/%
    T-AGC/G-AAT 216 202 93.52
    T-AGC/G-GCA 216 203 93.98
    T-AGC/G-CAA 216 206 95.37
    T-ACC/G-AAT 216 212 98.15
    T-TAA/G-AAT 216 206 95.37
    T-TAA/G-GCA 216 211 97.69
    T-TAA/G-CAA 216 214 99.07
    T-ACA/G-TGA 216 195 90.28
    合计 Sum 1 728 1 649
    平均 Mean 216 206.13 95.43
    下载: 导出CSV

    表  5  基于不同引物组合的流苏树遗传多样性水平

    Table  5.   Genetic diversity level of Chionanthus retusus based on different primer combinations

    引物组合
    Primer combination
    有效等位基因数
    Number of effective allele (Ne)
    Nei’s基因多样性指数
    Nei’s gene diversity (H)
    Shannon多态性信息指数
    Shannon polymorphism information index (I)
    T-AGC/G-AAT 1.216 6 0.151 6 0.261 1
    T-AGC/G-GCA 1.235 6 0.163 3 0.278 4
    T-AGC/G-CAA 1.237 4 0.163 9 0.277 8
    T-ACC/G-AAT 1.227 3 0.164 8 0.286 7
    T-TAA/G-AAT 1.162 6 0.122 7 0.224 4
    T-TAA/G-GCA 1.221 2 0.168 5 0.298 7
    T-TAA/G-CAA 1.215 9 0.159 0 0.280 5
    T-ACA/G-TGA 1.193 2 0.135 6 0.236 3
    平均 Mean 1.213 7 0.153 7 0.268 0
    下载: 导出CSV

    表  6  7个流苏树天然群体内遗传多样性水平和显著性分析

    Table  6.   Analysis of genetic diversity and significance of the seven Chionanthus retusus natural populations

    群体 PopulationNe H I
    B-H1.220 4a0.146 1ab0.238 9a
    H-B1.204 3a0.131 5b0.207 7b
    H-T1.195 0a0.134 2ab0.224 1ab
    S-Q1.206 1a0.138 5ab0.228 2ab
    S-A1.210 3a0.143 7ab0.238 9a
    J-S1.226 5a0.150 4a0.245 2a
    H-A1.207 4a0.137 9ab0.223 7ab
    注:同列不同小写字母表示种群间差异显著(P < 0.05)。 Note: different lowercase letters in same column indicate significant differences among populations (P < 0.05).
    下载: 导出CSV

    表  7  7个流苏树天然群体遗传分化分析

    Table  7.   Genetic differentiation of the seven Chionanthus retusus natural populations

    所有群体
    All population
    总基因多样性指数
    Total gene diversity
    index (Ht)
    群体内基因多样性
    Genetic diversity within
    the population (Hs)
    群体间基因多样性
    Genetic diversity between populations (Dst)
    基因分化系数
    Coefficient of gene differentiation (Gst)
    基因流
    Gene flow (Nm)
    平均数 Mean0.408 60.354 00.054 60.133 63.243 7
    标准差 Standard deviation0.027 60.012 0
    下载: 导出CSV

    表  8  基于SRAP检测的7个流苏树天然群体间遗传一致度和遗传距离

    Table  8.   Genetic identity and genetic distance between seven Chionanthus retusus natural populations based on SRAP

    群体 PopulationH-TH-AS-AS-QJ-SB-HH-B
    H-T0.958 30.973 60.965 80.920 00.918 90.907 4
    H-A0.042 60.964 50.951 70.911 00.909 90.895 1
    S-A0.026 70.036 10.960 60.931 00.933 20.898 0
    S-Q0.034 80.049 50.040 20.954 70.947 20.935 8
    J-S0.083 40.093 30.071 50.046 40.957 80.904 1
    B-H0.084 50.094 40.069 20.054 20.043 10.922 8
    H-B0.097 20.110 80.107 50.066 30.100 90.080 4
    注:右上部为遗传一致度,左下部为遗传距离。Notes: Nei’s genetic identity is showed above diagonal and genetic distance is showed below diagonal.
    下载: 导出CSV
  • [1] 中国科学院中国植物志编辑委员会. 中国植物志[M]. 1版. 北京: 科学出版社, 2004.

    Flora of China Editorial Committee of the Academy of Sciences of China. Flora of China [M]. 1st ed. Beijing: Science Press, 2004.
    [2] 方丽. 流苏树的综合利用价值及栽培管理技术[J]. 现代农业科技, 2017(18):123−124. doi:  10.3969/j.issn.1007-5739.2017.18.086.

    Fang L. Comprehensive utilization value and cultivation and management technology of Chionanthus retusus[J]. Modern Agricultural Science and Technology, 2017(18): 123−124. doi:  10.3969/j.issn.1007-5739.2017.18.086.
    [3] 胡世才. 优良饮料植物—流苏树及其枝叶泡制法[J]. 林业科技开发, 1991(3):16.

    Hu S C. Excellent beverage plants: Chionanthus retusus and its leaf and branch soaking method[J]. China Forestry Science and Technology, 1991(3): 16.
    [4] 马震亚. 流苏树栽培技术[J]. 青海农林科技, 2015(4):72−73. doi:  10.3969/j.issn.1004-9967.2015.04.022.

    Ma Z Y. Cultivation technique of Chionanthus retusus[J]. Science and Technology of Qinghai Agriculture and Forestry, 2015(4): 72−73. doi:  10.3969/j.issn.1004-9967.2015.04.022.
    [5] Gill J D, Fogge F L. Chionanthus retusus L.[M]//Seeds of woody plant in the United States. Washington: USDA Agri Handbook, 1974, 450: 323−325.
    [6] Gulcin I, Elias R, Gepdiremen A, et al. Antioxidant secoiridoids from fringe tree (Chionanthus virginicus L.)[J]. Wood Science Technology, 2009, 43(3−4): 195−212. doi:  10.1007/s00226-008-0234-1.
    [7] Lee Y G, Lee H, Jung J W, et al. Flavonoids from Chionanthus retusus (Oleaceae) flowers and their protective effects against glutamate-induced cell toxicity in HT22 cells[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2019, 20(14): 3517. doi:  10.3390/ijms20143517.
    [8] Saeki I. Application of aerial survey for detecting a rare maple species and endangered wetland ecosystems[J]. Forest Ecology and Management, 2005, 216(1): 283−294.
    [9] Song J H, Kong M J, Hong S P, et al. Morphological characteristics, distribution and taxonomic consideration of Chionanthus retusus Lindl & Paxton in Korea[J]. Korean Journal of Plant Taxonomy, 2011, 41(2): 156−163. doi:  10.11110/kjpt.2011.41.2.156.
    [10] Soejima A, Maki M, Ueda K. Genetic variation in relic and isolated populations of Chionanthus retusus (Oleaceae) of Tsushima Island and the Tono Region, Japan[J]. Genes & Genetic Systems, 1998, 73(1): 29−37.
    [11] 刘棠瑞. 台湾木本植物图志:下卷 [M]. 台北: 台湾大学, 1991: 1061.

    Liu T R. Woody flora of Taiwan: Vol. 2 [M]. Taibei: Taiwan University, 1991: 1061.
    [12] 樊莉丽, 党远, 樊巍, 等. 珍稀树种流苏研究进展与保护利用策略[J]. 江苏农业科学, 2016, 44(6):20−24.

    Fan L L, Dang Y, Fan W, et al. Research progress and protection and utilization strategies of rare tree species Chionanthus retusus[J]. Jiangsu Agricultural Sciences, 2016, 44(6): 20−24.
    [13] 李际红. 山东省流苏古树资源[M]. 1版. 北京: 中国林业出版社, 2018.

    Li J H. Ancient tree resources of Chionanthus retusus in Shandong Province[M]. 1st ed. Beijing: China Forestry Publishing House, 2018.
    [14] 吴东旭. 辽西青龙河流域流苏树种子繁育技术[J]. 江西农业, 2016(19):72.

    Wu D X. Seed breeding techniques of Chionanthus retusus in Qinglong River Basin, western Liaoning Province[J]. Jiangxi Agriculture, 2016(19): 72.
    [15] 贾明财, 温保龙, 张璐, 等. 北京怀柔流苏树资源调查及繁育[J]. 中国花卉园艺, 2017(24):36. doi:  10.3969/j.issn.1009-8496.2017.24.017.

    Jia M C, Wen B L, Zhang L, et al. Investigation and breeding of Chionanthus retusus in Beijing Huairou District[J]. China Flowers & Horticulture, 2017(24): 36. doi:  10.3969/j.issn.1009-8496.2017.24.017.
    [16] Lee Y N, Jeong C H, Shim K H. Isolation of antioxidant and antibrowning substance from Chionanthus retusa leaves[J]. Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, 2004, 33(9): 1419−1425. doi:  10.3746/jkfn.2004.33.9.1419.
    [17] 缴丽莉. 流苏和青榨槭耐荫性与抗寒性研究[D]. 保定: 河北农业大学, 2006.

    Jiao L L. The study on shading-tolerance and freezing-resistance of Chionanthus retusus and Acer davidii[D]. Baoding: Agricultural University of Hebei, 2006.
    [18] 邓瑞雪, 卢宗元, 张创峰, 等. 流苏花的化学成分研究[J]. 河南科技大学学报(自然科学版), 2013, 34(6):92−95.

    Deng R X, Lu Z Y, Zhang C F, et al. Chemical constituents from flowers of Chionanthus retusa[J]. Journal of Henan University of Science and Technology (Natural Science), 2013, 34(6): 92−95.
    [19] 邹莉. 流苏树的栽培管理技术[J]. 农业与技术, 2018, 38(21):98−99.

    Zou L. Cultivation and management techniques of Chionanthus retusus[J]. Agriculture and Technology, 2018, 38(21): 98−99.
    [20] 禹霖, 柏文富, 李建辉, 等. ‘彩虹’彩桂高位嫁接技术研究[J]. 湖南林业科技, 2018, 45(6):19−23, 28. doi:  10.3969/j.issn.1003-5710.2018.06.004

    Yu L, Bai W F, Li J H, et al. Study on high-position grafting technology of Osmanthus fragrans var. semperflorens ‘Rainbow’[J]. Hunan Forestry Science & Technolog, 2018, 45(6): 19−23, 28. doi:  10.3969/j.issn.1003-5710.2018.06.004
    [21] Gardens R B. World checklist of selected plant families [EB/OL] [2016−04−14]. http://apps.kew.org/wcsp/Retrieved.
    [22] 曹福亮, 花喆斌, 汪贵斌, 等. 野生银杏资源群体遗传多样性的RAPD分析[J]. 浙江农林大学学报, 2008, 25(1):22−27. doi:  10.3969/j.issn.2095-0756.2008.01.005.

    Cao F L, Hua Z B, Wang G B, et al. Genetic diversity in wild populations of Ginkgo biloba using random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis[J]. Journal of Zhejiang Forestry College, 2008, 25(1): 22−27. doi:  10.3969/j.issn.2095-0756.2008.01.005.
    [23] 王凯, 韦善忠, 罗江, 等. DNA分子标记及其进展[J]. 黑龙江八一农垦大学学报, 2003, 15(1):39−43. doi:  10.3969/j.issn.1002-2090.2003.01.010.

    Wang K, Wei S Z, Luo J, et al. DNA molecular markers and their advances[J]. Journal of Heilongjiang BaYi Agricultural University, 2003, 15(1): 39−43. doi:  10.3969/j.issn.1002-2090.2003.01.010.
    [24] Li G, Quiros C F. Sequence-related amplified polymorphism (SRAP), a new marker system based on a simple PCR reaction:its application to mapping and gene tagging in Brassica[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2001, 103(2−3): 455−461. doi:  10.1007/s001220100570.
    [25] 贺蕤, 余学琼, 杨志建, 等. 河南省南召县玉兰遗传多样性SRAP分析[J]. 分子植物育种, 2019, 17(13):4320−4330.

    He R, Yu X Q, Yang Z J, et al. SRAP analysis of Yulania genetic diversity in Nanzhao County, Henan Province[J]. Molecular Plant Breeding, 2019, 17(13): 4320−4330.
    [26] 郭彩杰, 侯丽霞, 崔娜, 等. 番茄耐低温相关基因的SRAP标记筛选[J]. 植物生理学报, 2011, 47(1):102−106.

    Guo C J, Hou L X, Cui N, et al. Identification of the specific SRAP marker associated with cold resistance of Tamoto[J]. Plant Physiology Communications, 2011, 47(1): 102−106.
    [27] 王茂芊, 李博, 王华忠. 甜菜遗传连锁图谱初步构建[J]. 作物学报, 2014, 40(2):222−230. doi:  10.3724/SP.J.1006.2014.00222.

    Wang M Q, Li B, Wang H Z. Construction of molecular genetic linkage map of Sugarbeet[J]. Acta Agronomica Sinica, 2014, 40(2): 222−230. doi:  10.3724/SP.J.1006.2014.00222.
    [28] Budak H, Shearman R C, Parmaksiz I, et al. Molecular characterization of Buffalograss germplasm using sequence-related amplified polymorphism markers[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2004, 108(2): 328−334. doi:  10.1007/s00122-003-1428-4.
    [29] 王萱. 玉铃花遗传多样性的AFLP分析[D]. 泰安: 山东农业大学, 2016.

    Wang X. Genetic diversity of Styrax obassia Sieb & Zucc based on AFLP markers[D]. Taian: Shandong Agricultural University, 2016.
    [30] 曲凯. 流苏种质资源的收集评价及遗传多样性的分析[D]. 泰安: 山东农业大学, 2019.

    Qu K. Collection and evaluation of Chionanthus retusus resources and analysis of genetic diversity[D]. Taian: Shandong Agricultural University, 2019.
    [31] Rohlf F J. NTSYSpc: numerical taxonomy and multivariate analysis system [M]. New York: Exeter Software, Setauket, 1988.
    [32] Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals[J]. Genetics, 1978, 89(3): 583−590.
    [33] 沈浩, 刘登义. 遗传多样性概述[J]. 生物学杂志, 2001, 18(3):4, 5−7 . doi:  10.3969/j.issn.2095-1736.2001.03.002.

    Shen H, Liu D Y. Summary of genetic diversity[J]. Journal of Biology, 2001, 18(3): 4, 5−7 . doi:  10.3969/j.issn.2095-1736.2001.03.002.
    [34] Zietkiewicz E, Rafalski A, Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification[J]. Genomics, 1994, 20(2): 176−183. doi:  10.1006/geno.1994.1151.
    [35] Fang D Q, Roose M L. Identification of closely related citrus cultivars with inter-simple sequence repeat markers[J]. Theoretical and Applied Genetics, 1997, 95(3): 408−417. doi:  10.1007/s001220050577.
    [36] Esselman E J, Li J Q, Crawford D J, et al. Clonal diversity in the rare Calamagrostis porteri ssp. insperata (Poaceae): comparative results for allozymes and random amplified polymorphic DNA (RAPD) and intersimple sequence repeat (ISSR) markers[J]. Molecular Ecology, 1999, 8(3): 443−451. doi:  10.1046/j.1365-294X.1999.00585.x.
    [37] 钱韦, 葛颂, 洪德元. 采用RAPD和ISSR标记探讨中国疣粒野生稻的遗传多样性[J]. 植物学报, 2000, 42(7):741−750.

    Qian W, Ge S, Hong D Y. Assessment of genetic variation of Oryza granulata detected by RAPDs and ISSRs[J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2000, 42(7): 741−750.
    [38] 马朝芝, 傅廷栋, Stine Tuevesson, 等. 用ISSR标记技术分析中国和瑞典甘蓝型油菜的遗传多样性[J]. 中国农业科学, 2003, 36(11):1403−1408. doi:  10.3321/j.issn:0578-1752.2003.11.031.

    Ma C Z, Fu T D, Tuevesson S, et al. Genetic diversity of Chinese and Swedish rapeseed (Brassica napus L.) analysed by inter-simple sequence repeats(ISSRs)[J]. Scientia Agricultura Sinica, 2003, 36(11): 1403−1408. doi:  10.3321/j.issn:0578-1752.2003.11.031.
    [39] 陈良华, 胡庭兴, 张帆. 四川干旱干热河谷核桃资源遗传多样性分析[J]. 果树学报, 2009, 26(1):48−54.

    Chen L H, Hu T X, Zhang F. AFLP analysis on genetic diversity of Juglans populations in dry and dryhot valleys of Sichuan Province[J]. Journal of Fruit Science, 2009, 26(1): 48−54.
    [40] Hickey R J, Vincent M A, Guttman S I. Genetic variation in running buffalo clover Trifolium stoloniferum Fabaceae[J]. Conservation Biology, 1991, 5(3): 309−316. doi:  10.1111/j.1523-1739.1991.tb00142.x.
    [41] Swensen S M, Allan G J, Howe M, et al. Genetic analysis of the endangered island endemic Malacothamnus fasciculatus (Nutt.) Greene var. nesioticus (Rob.) Kearn. (Malvaceae)[J]. Conservation Biology, 1995, 9(2): 404−415. doi:  10.1046/j.1523-1739.1995.9020404.x.
    [42] Ayres D R, Ryan F J. Genetic diversity and structure of the narrow endemic Wyethia reticulate and its congener W. bolanderi (Asteraceae) using RAPD and allozyme techniques[J]. American Journal of Botany, 1999, 86(3): 344−353. doi:  10.2307/2656756
    [43] Kang U, Chang C S, Kim Y S. Genetic structure and conservation considerations of rare endemic Abeliophyllum distichum Nakai (Oleaceae) in Korea[J]. Journal of Plant Reserach, 2000, 113(2): 127−138. doi:  10.1007/PL00013923.
    [44] 肖龙骞, 葛学军, 龚洵, 等. 贵州苏铁遗传多样性研究[J]. 植物分类与资源学报, 2003, 25(6):648−652.

    Xiao L Q, Ge X J, Gong X, et al. Genetic diversity of Cycas guizhouensis[J]. Plant Diversity, 2003, 25(6): 648−652.
    [45] 明军, 顾万春. 紫丁香天然群体遗传多样性的AFLP分析[J]. 园艺学报, 2006, 33(6):1269−1274. doi:  10.3321/j.issn:0513-353X.2006.06.018.

    Ming J, Gu W C. Genetic diversity in natural populations of Syringa oblata detected by AFLP markers[J]. Acta Horticulturae Sinica, 2006, 33(6): 1269−1274. doi:  10.3321/j.issn:0513-353X.2006.06.018.
    [46] 孟宪婷. 东北地区不同种源水曲柳遗传分化的研究[D]. 哈尔滨: 东北林业大学, 2009.

    Meng X T. Study on genetic differentiation of Fraxinus Mandshurica Rupr. in different provenances, northeast of China[D]. Harbin: Northeast Forestry University, 2009.
    [47] 李梅, 侯喜林, 郝日明. 基于SRAP分子标记的桂花品种亲缘关系研究[J]. 园艺学报, 2009, 36(11):1667−1675. doi:  10.3321/j.issn:0513-353X.2009.11.015.

    Li M, Hou X L, Hao R M. Analysis of genetic relationships of Osmanthus fragrans based on SRAP markers[J]. Acta Horticulturae Sinica, 2009, 36(11): 1667−1675. doi:  10.3321/j.issn:0513-353X.2009.11.015.
    [48] 葛颂, 陈家宽, 杨继. 植物进化生物学[M]. 1版. 武汉: 武汉大学出版社, 1994.

    Ge S, Chen J K, Yang J. Plant evolutionary biology[M]. 1st ed. Wuhan: Wuhan University Press, 1994.
    [49] 何艳霞, 孔令茜, 陈鹏臻, 等. 雄全异株流苏树的花部特征及繁育系统研究[J]. 生态学报, 2017, 37(24):8467−8476.

    He Y X, Kong L Q, Chen P Z, et al. Floral syndrome and reproductive strategy of an androdioecious species, Chionanthus retusus (Oleaceae)[J]. Acta Ecologica Sinica, 2017, 37(24): 8467−8476.
    [50] Frankham R, Briscoe D A. Introduction to conservation genetics[M]. Cambridge: Cambridge University Press, 2010: 309−336.
    [51] Turpein T, Tehola T, Manninen O, et al. Microsatellite diversity associated with ecological factors in Hordeum spontaneum populations in Israel[J]. Molecular Ecology, 2001, 10(6): 1577−1591. doi:  10.1046/j.1365-294X.2001.01281.x.
    [52] 苏晓华, 张绮纹, 郑先武, 等. 利用RAPD分析大青杨天然群体的遗传结构[J]. 林业科学, 1997, 33(6):504−512. doi:  10.3321/j.issn:1001-7488.1997.06.004.

    Su X H, Zhang Q W, Zheng X W, et al. Genetic structure in Populus ussuriensis Kom. confirmed by RAPD markers[J]. Scientia Silvae Sinicae, 1997, 33(6): 504−512. doi:  10.3321/j.issn:1001-7488.1997.06.004.
    [53] 邱英雄, 黄爱军, 傅承新. 明党参的遗传多样性研究[J]. 植物分类学报, 2000, 38(2):111−120.

    Qiu Y X, Huang A J, Fu C X. Studies on genetic diversity in Changium smyrnioides Wolff (Umbelliferae)[J]. Journal of Systematics and Evolution, 2000, 38(2): 111−120.
    [54] Govindaraju D R. Relationship between dispersal ability and levels of gene flow in plants[J]. Oikos, 1988, 52(1): 31−35. doi:  10.2307/3565978.
    [55] 庞广昌, 王军厚. 胡杨群体遗传结构及其与自然环境关系的研究[J]. 西北植物学报, 1992, 12(4):295−302. doi:  10.3321/j.issn:1000-4025.1992.04.008.

    Pang G C, Wang J H. Study on population genetic structure geographical provenance of Populus euphratica Oliv. and their interaction with environment[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 1992, 12(4): 295−302. doi:  10.3321/j.issn:1000-4025.1992.04.008.
    [56] Heywood J S. Spatial analysis of genetic variation in plant population[J]. Annals Review of Ecology, Evolution and Systematics, 1991, 22(1): 335−355. doi:  10.1146/annurev.es.22.110191.002003.
    [57] 江亚雯, 孙小琴, 罗火林, 等. 基于ISSR标记的江西野生寒兰居群遗传多样性研究[J]. 园艺学报, 2017, 44(10):1993−2000.

    Jiang Y W, Sun X Q, Luo H L, et al. Studies on genetic diversity of Cymbidium kanran populations from the main mountains in Jiangxi Province based on ISSR marker[J]. Acta Horticulturae Sinica, 2017, 44(10): 1993−2000.
    [58] 穆立蔷, 刘赢男. 不同地理分布区紫椴种群的遗传多样性变化[J]. 植物生态学报, 2007, 31(6):1190−1198. doi:  10.17521/cjpe.2007.0148.

    Mu L Q, Liu Y N. Genetic diversity of Tilia Amurensis populations in different geographical distribution regions[J]. Journal of Plant Ecology, 2007, 31(6): 1190−1198. doi:  10.17521/cjpe.2007.0148.
  • [1] 高基朋, 秦岭, 曹庆芹, 房克凤, 田晔林.  北京山区3种栎属植物居群遗传结构与基因渐渗研究 . 北京林业大学学报, 2020, 42(7): 58-67. doi: 10.12171/j.1000-1522.20190402
    [2] 贺快快, 武文斌, 张子杰, 胡现铬, 韩方旭, 钮世辉, 李悦.  北京油松人工林遗传结构变异及与山西山系种群差异分析 . 北京林业大学学报, 2020, 42(6): 33-42. doi: 10.12171/j.1000-1522.20190399
    [3] 张妹, 何正权, 马江, 桑子阳, 朱仲龙, 张德春, 马履一, 陈发菊.  基于SSR和SRAP标记的红花玉兰品种遗传关系分析及分子鉴定 . 北京林业大学学报, 2019, 41(9): 69-80. doi: 10.13332/j.1000-1522.20190204
    [4] 姚俊修, 毛秀红, 李善文, 刘学良, 吴德军.  基于荧光SSR标记的白杨派种质资源遗传多样性研究 . 北京林业大学学报, 2018, 40(6): 92-100. doi: 10.13332/j.1000-1522.20170429
    [5] 郭斌.  栎属近缘种指纹图谱构建及遗传结构 . 北京林业大学学报, 2018, 40(5): 10-18. doi: 10.13332/j.1000-1522.20170444
    [6] 武文斌, 贺快快, 狄皓, 钮世辉, 马彦光, 张子杰, 李悦.  基于SSR标记的山西省油松山脉地理种群遗传结构与地理系统 . 北京林业大学学报, 2018, 40(10): 51-59. doi: 10.13332/j.1000-1522.20180057
    [7] 张俊娥, 范鑫磊, 梁英梅, 田呈明.  杨树腐烂病菌表观特征及遗传多样性分析 . 北京林业大学学报, 2017, 39(7): 76-86. doi: 10.13332/j.1000-1522.20160257
    [8] 周鹏, 林玮, 朱芹, 周祥斌, 吴林瑛, 陈晓阳.  基于SRAP分子标记的刨花润楠遗传多样性分析 . 北京林业大学学报, 2016, 38(9): 16-24. doi: 10.13332/j.1000-1522.20150423
    [9] 李义良, 赵奋成, 胡燕菲, 蔡坚, 吴惠姗, 张应中, 郭文冰.  非洲桃花心木不同地理群体遗传多样性分析 . 北京林业大学学报, 2014, 36(5): 82-86. doi: 10.13332/j.cnki.jbfu.2014.05.022
    [10] 陈凌娜, 马庆国, 张俊佩, 周贝贝, 裴东.  核桃BES-SSR 的开发及在遗传多样性分析中的应用 . 北京林业大学学报, 2014, 36(6): 24-29. doi: 10.13332/j.cnki.jbfu.2014.06.008
    [11] 李田, 郭俊娥, 郑成淑, 孙霞, 孙宪芝.  菊花品种的遗传多样性分析及CDDP指纹图谱构建 . 北京林业大学学报, 2014, 36(4): 94-101. doi: 10.13332/j.cnki.jbfu.2014.04.018
    [12] 董爱香, 王涛, 徐进, 赵梁军.  用SRAP分子标记分析一串红品种资源的亲缘关系 . 北京林业大学学报, 2012, 34(5): 134-138.
    [13] 廖卉荣, 顾万春, 明军.  紫丁香天然群体的等位酶遗传多样性分析 . 北京林业大学学报, 2009, 31(5): 84-89.
    [14] 李伦光, 贺萍, 贺伟, .  中国五针松疱锈菌遗传多样性的RAMS分析 . 北京林业大学学报, 2008, 30(6): 112-118.
    [15] 郎璞玫, 于海霞, 周艳萍, 于文吉, 焦雯珺, 许景伟, 陆平, 李黎, 宋先亮, 刘足根, 雷妮娅, 奚如春, 索安宁, 高克昌, 马玲, 武林, 张志山, 周睿, 郑景明, 邵杰, 孙志蓉, 张春晓, 吕文华, 张建军, 吴家兵, 金则新, 李俊, 饶兴权, 蔡锡安, 张小由, 葛剑平, 郑红娟, 余养伦, 戴伟, 毕华兴, 朱教君, 陈勇, 关德新, 习宝田, 赵广杰, 赵文喆, 李传荣, 韦方强, 李钧敏, Kwei-NamLaw, 朱清科, 于志明, 赵秀海, 陈少良, 马履一, 盖颖, 翟明普, 纳磊, 王文全, 贾桂霞, 王天明, 张宇清, 方家强, 赵平, 曾小平, 李俊清, 杨永福, 朱艳燕, 张弥, 张春雨, 马履一, 樊敏, 李笑吟, 李增鸿, 夏良放, 王瑞刚, 崔鹏, 袁小兰, 于波, ClaudeDaneault, 江泽慧, 谭会娟, 殷宁, 韩士杰, 何明珠, 郭孟霞, 袁飞, 唐晓军, 陈雪梅, 刘丽娟, 王卫东, 李庆卫, 吴秀芹, 王贺新, 邓宗付, 张欣荣, 贺润平, 李丽萍, 毛志宏, 王旭琴, 于贵瑞, 熊颖, 王娜, 蒋湘宁, 吴记贵, 王月海, 刘鑫, 孔俊杰, 郑敬刚, 江杰, 李新荣, 王贵霞, 葛剑平, 聂立水, 王瑞辉, 林靓靓, 孙晓敏, 郭超颖, 董治良.  浙江仙居长叶榧自然居群遗传多样性的ISSR分析 . 北京林业大学学报, 2007, 29(1): 53-59.
    [16] 魏潇潇, 郑小贤, 杨平, 颜绍馗, 王芳, 周永学, 李瑞, 邓小文, 张洪江, 秦爱光, 胡胜华, 张莉俊, 王费新, 吴彩燕, 张璧光, 袁怀文, 胡万良, 何亚平, 白岗栓, 黄荣凤, 殷亚方, 高黎, 毛俊娟, 刘杏娥, 罗晓芳, 王兆印, 李猛, 赵天忠, 费世民, 樊军锋, 王小青, 王胜华, 谭学仁, 孙向阳, 崔赛华, NagaoHirofumi, 杜社妮, 汪思龙, 王晓欢, 张克斌, 常旭, 刘燕, 张岩, 王正, 乔建平, 戴思兰, 张双保, 王海燕, 刘云芳, 龚月桦, 李华, 高荣孚, 张占雄, 徐嘉, 李昀, 张旭, 江玉林, 江泽慧, 范冰, KatoHideo, , 陈放, 孔祥文, 韩士杰, 陈秀明, 陈宗伟, 侯喜录, 任海青, IdoHirofumi, 刘秀英, 李媛良, 杨培华, 常亮, 李晓峰, 丁磊, , 郭树花, 李考学, 薛岩, 张桂兰, 高建社, , 张代贵, 徐庆祥, 陈学平, , 费本华, 蒋俊明, 涂代伦, 王晓东, 李雪峰, 续九如, 金鑫, 刘永红, , , , 丁国权, 张红丽, .  利用ISSR标记对天麻的贵州种群遗传多样性分析 . 北京林业大学学报, 2007, 29(6): 35-40.
    [17] 于寒颖, 宗世祥, 李贤军, 程丽莉, 刘智, 王志玲, 雷霆, 江泽慧, 张煜星, 施婷婷, 崔彬彬, 徐剑琦, 黄心渊, 周志强, 周国模, 雷相东, 陈伟, 张展羽, 程金新, 杜官本, 李国平, 曹伟, 肖化顺, 赵俊卉, 刘志军, 郭广猛, 刘童燕, 苏淑钗, 雷洪, 关德新, 张璧光, 曹金珍, 郝雨, 张璧光, 骆有庆, 苏里坦, 杨谦, 丁立建, 张贵, 王正, 李云, 张彩虹, 李云, 王海, 黄群策, 吴家森, 王正, 张则路, 张慧东, 黄晓丽, 陈晓光, 姜培坤, 秦岭, 许志春, 宋南, 刘彤, 贺宏奎, 张佳蕊, 李文军, 刘大鹏, 吴家兵, 张大红, 张国华, 方群, 周晓燕, 王勇, 金晓洁], 张书香, 秦广雍, 常亮, 张金桐, 蔡学理, 李延军, 高黎, 张弥, 于兴华, 姜静, 刘海龙, 陈燕, 刘建立, 姜金仲, 苏晓华, 冯慧, 陈绪和, 王安志, 朱彩霞, 周梅, 王德国, 张冰玉, 尹伟伦, 王谦, 成小芳, 张勤, 张连生, 亢新刚, 金昌杰, 陈建伟3, 聂立水, 冯大领, 韩士杰, 崔国发, 梁树军, 胡君艳, 姚国龙.  光皮桦天然群体遗传多样性研究 . 北京林业大学学报, 2006, 28(6): 28-34.
    [18] 刘震, 李景文, 符韵林, 熊瑾, 殷亚方, 饶良懿, 杜华强, 
    王保平, 杨晓晖, 黄国胜, 宋小双, 侯亚南, 李景文, 龙玲, 詹亚光, 张一平, 杨海龙, 张秋英, 李全发, 王明枝, 李慧, 李梅, 马文辉, 秦瑶, 徐峰, 王洁瑛, 韩海荣, 窦军霞, 李发东, 吕建雄, 李妮亚, 陈晓阳, 李俊清, 范文义, 李俊清, 李吉跃, 朱金兆, 刘文耀, 耿晓东, 赵敏, 王雪军, 梁机, 尹立辉, 朱金兆, 张克斌, 陆熙娴, 赵宪文, 刘雪梅, 刘桂丰, 康峰峰, 倪春, 李云, 陈素文, 唐黎明, 乔杰, 于贵瑞, 孙玉军, 欧国强, 陈晓阳, 沈有信, 李凤兰, 李黎, 秦素玲, 慈龙骏, 毕华兴, 齐实, 韦广绥, 黎昌琼, 赵双菊, 魏建祥, 宋献方, 张桂芹, 朱国平, 王玉成, 李伟, 刘伦辉, 任海青, 李伟, 蒋建平, 王雪, 马钦彦, 文瑞钧, 周海江, 丁霞, , 孙涛, 杨谦, 宋清海, 张万军, 李慧, 孙晓敏, 孙志强, 刘莹, 李宗然, 
    , .  欧亚大陆水青冈种群遗传多样性对比分析 . 北京林业大学学报, 2005, 27(5): 1-9.
    [19] 黄国胜, 杜华强, 龙玲, 李梅, 殷亚方, 侯亚南, 张一平, 饶良懿, 刘震, 李慧, 杨晓晖, 马文辉, 符韵林, 詹亚光, 张秋英, 李景文, 
    王保平, 杨海龙, 李景文, 李全发, 熊瑾, 王明枝, 宋小双, 窦军霞, 秦瑶, 朱金兆, 陆熙娴, 范文义, 吕建雄, 徐峰, 张克斌, 尹立辉, 耿晓东, 李俊清, 韩海荣, 朱金兆, 陈晓阳, 李俊清, 王洁瑛, 梁机, 刘文耀, 王雪军, 李吉跃, 李发东, 赵敏, 李妮亚, 孙玉军, 毕华兴, 沈有信, 慈龙骏, 赵宪文, 陈晓阳, 乔杰, 齐实, 倪春, 李云, 欧国强, 唐黎明, 陈素文, 康峰峰, 李凤兰, 刘雪梅, 刘桂丰, 李黎, 于贵瑞, 秦素玲, 李伟, 刘伦辉, 文瑞钧, 张桂芹, 任海青, 黎昌琼, 朱国平, 魏建祥, 马钦彦, 王玉成, 李伟, 赵双菊, 蒋建平, 王雪, 宋献方, 韦广绥, 李慧, , 宋清海, 周海江, 丁霞, 孙涛, 张万军, 杨谦, 孙志强, 孙晓敏, 刘莹, 李宗然, 
    欧亚大陆水青冈种群遗传多样性对比分析 . 北京林业大学学报, 2005, 27(4): 1-9.
    [20] 高莉萍, 李红, 周存宇, 孙仁山, 程广有, 包仁艳, 贺康宁, 吕建雄, 王继强, 王跃思, 李利平, 谢力生, 赵东, 高峰, 李吉跃, 姜春宁, 邢韶华, 李世荣, 向仕龙, 殷亚方, 周国逸, 包满珠, 高林, 于志明, 李文彬, 孙扬, 赵勃, 曹全军, 郑彩霞, 王迎红, 史常青, 赵有科, 葛春华, 刘娟娟, 田勇臣, 孙磊, 丁坤善, 张德强, 王清春, 姜笑梅, 唐晓杰, 高亦珂, 孙艳玲, 华丽, 周心澄, 崔国发, 刘世忠, 张启翔, .  四川省珍稀濒危植物延龄草遗传多样性分析 . 北京林业大学学报, 2005, 27(4): 0-6.
  • 加载中
图(4) / 表 (8)
计量
  • 文章访问数:  135
  • HTML全文浏览量:  38
  • PDF下载量:  9
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2020-07-13
  • 修回日期:  2020-08-15
  • 网络出版日期:  2020-12-04
  • 刊出日期:  2021-01-07

基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究

doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
    基金项目:  山东省农业良种工程项目(2016LZGC036),山东省林业科技创新项目(LYCX02-2018-11),泰安市农业良种工程(2018)40号
    作者简介:

    曲凯。主要研究方向:林木种质资源。Email:17661212306@163.com 地址:271000 山东省泰安市泰山区岱宗大街61号山东农业大学林学院

    通讯作者: 李际红,教授。主要研究方向:林木分子生物学及林木种质资源收集利用。Email:jhli@sdau.edu.cn 地址:同上

摘要:   目的  揭示我国不同地区流苏树(Chionanthus retusus)天然群体的遗传多样性,更好地为合理保护和开发利用提供科学依据。  方法  采用相关序列扩增多态性(SRAP)分子标记技术对不同地区的7个流苏树天然群体的62份样品进行了遗传多样性和群体遗传结构研究。  结果  (1)7个流苏树天然群体具有较高的遗传多样性,8对SRAP引物共扩增出1 728条清晰条带,其中1 649条具有多态性,PPB(多态性条带比例)为95.43%;群体间的有效等位基因数为 1.213 7,Nei’s基因多样性指数为 0.153 7,Shannon’s信息多样性指数为0.268 0。(2)流苏树天然群体存在较高水平的种群内遗传变异和较低水平的群体间遗传变异(Gst = 0.133 6),7个流苏树天然群体间存在较高水平的基因交流(Nm = 3.243 7)。(3)流苏树群体间的遗传相似系数介于0.898 0 ~ 0.973 6之间,平均值为0.934 4,经Mantel检验(r = 0.288,P = 0.205)及群体间的聚类证明群体间的遗传距离与地理距离之间无明显相关性;62份流苏树初级种质聚类结果表明大部分种质表现为同一群体的多数个体聚在一起,部分种质存在不同群体间的个体聚在一起的现象,表现出群体间遗传变异相对稳定而种群内的遗传变异水平相对较高的特点,与基因多样性分析结果一致。  结论  综合多因素分析推测,太行山地区可能是我国流苏树种质资源的主要产区。

English Abstract

曲凯, 国浩平, 王宝锐, 周文玲, 侯丽丽, 李琴, 李际红, 程甜甜. 基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究[J]. 北京林业大学学报, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
引用本文: 曲凯, 国浩平, 王宝锐, 周文玲, 侯丽丽, 李琴, 李际红, 程甜甜. 基于SRAP分子标记的流苏树天然群体遗传多样性研究[J]. 北京林业大学学报, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
Qu Kai, Guo Haoping, Wang Baorui, Zhou Wenling, Hou Lili, Li Qin, Li Jihong, Cheng Tiantian. Genetic diversity analysis of Chionanthus retusus natural population based on SRAP molecular markers[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
Citation: Qu Kai, Guo Haoping, Wang Baorui, Zhou Wenling, Hou Lili, Li Qin, Li Jihong, Cheng Tiantian. Genetic diversity analysis of Chionanthus retusus natural population based on SRAP molecular markers[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2020, 42(12): 40-50. doi: 10.12171/j.1000-1522.20200212
  • 流苏树(Chionanthus retusus)是木犀科(Oleaceae)流苏树属(Chionanthus)落叶灌木或乔木,树形高大优美,花色清雅宜人,是国家珍稀名贵树木、国家二级保护植物,素有“四月雪”之称,是优良的园林绿化树种[1]。流苏树耐盐碱、耐瘠薄,抗旱、适应性强,是山区退耕还林的首选树种,也是我国一种极具开发潜能的乡土树种[2]。该树种具有较高的综合利用价值,其花叶可煎作茶饮或泡水直饮,是经济实惠的饮料植物[3];其木质坚重细致,纹理美观,可用于制作器具和供细木工用;果实含油量高可作为工业用油[4]。流苏树的芽、叶、根和树皮亦有药用价值,是公认的药用经济作物[5-6],特别是流苏树花中含有的黄酮类化合物对多种炎症及神经性疾病均有着显著治疗效果,应用前景广阔[7]

    流苏树在世界范围内呈间断分布,野生种质资源近年来遭受严重破坏而趋于濒危,流苏树天然群体面积和分布范围逐渐缩小[8];隶属于韩国西南省份全罗北道的大丘市和全州市以及南部沿海的许多岛屿上都有流苏树天然群体的分布,与我国隔黄海相望的韩国首府首尔市及仁川广域市则是流苏树的集中栽种地区[9];本州中部和马岛的最北部地区是日本野生流苏树分布的限制区域[10]。在我国,流苏树分布范围广泛,南北跨度大,涵盖了热带、亚热带和温带地区,东北(辽宁省)、华北(北京市、河北省、山西省、天津市)、华东(福建省、安徽省、江苏省、山东省)、华中(湖北省、河南省)、西北(陕西省、甘肃省)、西南(四川省、云南省)及台湾地区等16个省级行政区均有野生天然群体及古树的分布[11-15];从流苏树全球分布范围分析,流苏树相对集中分布在中低纬度地区的山区丘陵,故推测我国中低纬纬度山区或极有可能是流苏树的中心产区。但当前对流苏树的研究多集中于化学组成、抗逆性及繁殖技术等方面[16-20],流苏树种质资源的收集、保存和遗传学评价却鲜有报道[21],缺少从分子学层面对其遗传多样性研究,故对分布在我国中低纬度地区流苏树天然群体遗传多样性的研究具有重要意义。

    遗传多样性是物种或种群长期进化的产物,也是物种生存适应和发展进化的前提,它的本质是生物体在遗传物质上的变异,对其进行研究有助于该物种的保护和利用[22]。目前来说,遗传标记是研究遗传多样性的常用方法,其中DNA分子标记技术是检测遗传多样性最直接、最准确的方法[23]。SRAP(sequence related amplified polymorphism)分子标记技术是美国加州大学Li等[24]依据基因中内含子(或启动子)富含AT而外显子富含GC特点而设计的独特的引物对 ORFs(open reading frames)进行扩增,外显子、内含子(或启动子)区域分别与正反引物配对,由于不同物种、不同个体的内含子(或启动子)与间隔区之间片段长度不同而显示出多态性。SRAP分子标记技术在规避了AFLP(amplified fragment length polymorphism)成本高昂、技术繁杂等缺点的同时克服了RAPD(random amplified polymorphic DNA)重复性差的问题,因其易于测序、操作简易、成本低和多态性水平高、稳定等优点,作为理想的分子标记技术在植物种质鉴定[25]、基因标记[26]、遗传图谱构建[27]以及亲缘关系研究[28]等方面得到广泛应用。本研究在对我国中低纬度地区具有地理代表性的7个省市的野生流苏树资源调查的基础上,应用SRAP分子标记对不同流苏树天然群体间遗传多样性水平和群体遗传结构特点进行研究,探讨流苏树天然群体间的亲缘关系,对了解流苏树起源及进化,构建核心种质资源库、支撑珍稀乡土树种可持续发展提供了一定的理论支持,为更好地保护和开发利用这一珍贵资源提供科学依据。

    • 试验样品主要采集于华北(北京、山西、河北)、华中(湖北、河南)、华东(山东、江苏)地区的7个省级行政区,采样地分布于燕山山脉与太行山山脉交界处、太岳山脉(广义太行山)、淮阳山脉西段(隶属大别山)、泰沂山脉。北京怀柔流苏树群体(B-H)属于燕山山脉;河北保定群体(H-B)是来自于太行山脉的异地保存群体;山西安泽群体(S-A)属于太岳山脉;河南桐柏群体(H-T)和湖北安陆群体(H-A)均属于淮阳山脉西段;山东青州群体(S-Q)位于泰沂山脉的雀山;江苏沭阳群体(J-S)处在鲁南丘陵和江淮平原的过渡带(表1)。2018年10月,采用随机抽样法,在各个采样地点分散取样,每个群体分别取样10株,分别编号1 ~ 10(湖北省及河北省的流苏树天然群体,由于取样环境所限,分别取7株和5株,编号1 ~ 7和1 ~ 5), 个体株距在 5 m 以上。本研究共取样62株,每株选取新鲜幼嫩叶片10片,装入盛有硅胶的密封袋中密封保存,用于提取 DNA。

      表 1  流苏树天然群体采样地位置和生境

      Table 1.  Location and habitat of natural population sampling of Chionanthus retusus

      群体及编号
      Population and No.
      取样株数
      Sampling plant number
      海拔
      Altitude/m
      纬度
      Latitude (N)
      经度
      Longitude (E)
      北京市怀柔区 Huairou District, Beijing City (B-H) 10 40 116°38′ 40°17′
      河北省保定市 Baoding City, Hebei Province (H-B) 5 20 115°28′ 38°55′
      河南省南阳市桐柏县 Tongbai County, Nanyang City, Henan Province (H-T) 10 240 113°17′ 32°27′
      山东省青州市 Qingzhou City, Shandong Province (S-Q) 10 250 118°18′ 36°41′
      山西省临汾市安泽县 Anze County, Linfen City, Shanxi Province (S-A) 10 260 112°14′ 36°08′
      江苏省宿迁市沭阳县 Shuyang County, Suqian City, Jiangsu Province(J-S) 10 10 118°39′ 34°09′
      湖北省安陆市 Anlu City, Hubei Province (H-A) 7 130 113°41′ 31°15′

      7个流苏树天然群体之间的地理距离介于221 ~ 1 204 km之间(表2),北京市怀柔区与湖北省安陆市的距离最远,为1 204 km;河北省保定市与北京市怀柔区相距最近(221 km);不同流苏树群体间的地理距离能够使群体间产生遗传分化。

      表 2  7个流苏树天然群体间的地理距离

      Table 2.  Geographic distance of seven Chionanthus retusus natural populations km

      群体 PopulationH-TH-AS-AS-QJ-SB-HH-B
      H-T
      H-A246
      S-A609752
      S-Q856966672
      J-S698795799373
      B-H1 0391 204736512809
      H-B862993547448710221
    • 参考王萱[29]基因组提取和纯化的方法,在其基础上稍加改进,利用CTAB法从流苏树叶片中提取基因组DNA,使用0.8%琼脂糖凝胶进行电泳及 Nanodrop 核酸蛋白分析仪检测DNA浓度、完整性和含量,在−20 ℃的冰箱中保存备用。

    • SRAP分析参照 Li等[24]的方法进行。从64对 SRAP引物中筛选出条带清晰、多态性高、稳定性强的8对引物组合(T-AGC/G-AAT、T-AGC/G-GCA、T-AGC/G-CAA、T-ACC/G-AAT、T-TAA/G-AAT、T-TAA/G-GCA、T-TAA/G-CAA、T-ACA/G-TGA,引物序列见表3)用于SRAP选择性扩增。PCR反应体系的总体积为25 µL,包括18.5 µL ddH2O、2.0 µL的基因组DNA、1.0 µL的引物(上、下游引物各0.5 µL)、2.5 µL的 10 × buffer(含Mg2+)、0.5 µL的dNTPs、0.5 µL的Taq DNA聚合酶。SRAP的PCR扩增流程为:94 ℃预变性 5 min;然后94 ℃变性1 min,35 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,5个循环;随后94 ℃变性1 min,50 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,35个循环;最后 72 ℃延伸 10 min。从SRAP-PCR产物中取2.0 µL 选择性扩增产物加9.2 µL甲酰胺和0.2 µL ROX, 在 94 ℃变性4 min后立即置于−20 ℃冷却, 取变性的 PCR产物进行4%的聚丙烯酰胺凝胶电泳检测。

      表 3  试验所用SRAP引物信息

      Table 3.  Information of SRAP primers used in the experiment

      上游引物
      Forward primer
      引物序列
      Primer sequence (5′→3′)
      下游引物
      Reverse primer
      引物序列
      Primer sequence (5′→3′)
      T-ATA TGAGTCCAAACCGGATA G-AAT GACTGCGTACGAATTAAT
      T-AGC TGAGTCCAAACCGGAGC G-TGC GACTGCGTACGAATTTGC
      T-AAT TGAGTCCAAACCGGAAT G-GAC GACTGCGTACGAATTGAC
      T-ACC TGAGTCCAAACCGGACC G-TGA GACTGCGTACGAATTTGA
      T-AAG TGAGTCCAAACCGGAAG G-AAC GACTGCGTACGAATTAAC
      T-TAA TGAGTCCAAACCGGTAA G-GCA GACTGCGTACGAATTGCA
      T-ACA TGAGTCCAAA CCGG ACA G-CAA GACTGCGTACG AATT CAA
      T-TGT TGAGTCCAAA CCGG TGT G-AGC GACTGCGTACG AATT AGC
    • 利用测序仪检测聚丙烯酰胺凝胶电泳的图谱的片段大小(ABI PRISM 377 sequencer),采用GENESCAN对每2个碱基读1次数,本试验所使用的Marker片段范围介于70 ~ 500 bp,在其中共读取到216个数,参照泳道校对修正,并根据片段移动的位置和荧光信号得到原始的片段大小。对于不可避免的误差,处于Bin Range设置范围内的片段,将其看作是同一条带[30]。按照NESTY[31]、POPGENE等软件要求将获得的原始数据处理成标准的“01”总数据,将原始数据中有带的地方替代为“1”,无带的替代为“0”。在“01” 数据的基础上,利用POPGENE计算遗传多样性的相关参数: Nei’s遗传一致度和遗传距离[32]、多态位点百分率(PPB)、Nei’s 基因多样性指数(H)、Shannon多态性信息指数(I)以及有效等位基因数(Ne)等;对以上遗传多样性参数使用SPSS软件作显著性分析;利用Mantel Test对群体间的地理距离和遗传距离进行相关性分析;利用NESTY 进行UPGMA 聚类分析(非加权配对算数平均法)和主坐标分析。

    • 采用8对SRAP引物对7个流苏树天然群体的62份种质材料进行扩增,共产生1 728条清晰可辨的条带,1 649条多态性条带,PPB(多态带比例)为95.43%。多态性条带在不同引物组合之间存在一定差异,T-TAA/G-CAA产生的多态性条带数量最多为214条(PPB = 99.07),T-ACA/G-TGA产生的最少是195条(PPB = 90.28),这表明筛选的引物在不同流苏树群体间表现出较高的多态性水平,流苏树种质材料间的遗传多样性较高(表4)。所有多态性条带中共产生了102条特异性条带,占总多态带的6.19%,这也说明了62份流苏树种质间存在着丰富的变异。

      表 4  基于SRAP选择性扩增引物产生的条带多态性

      Table 4.  Polymorphism of SRAP bands obtained by selective amplification based on the primer combinations

      引物组合
      Primer combination
      总带数
      Total number of band
      多态性条带数
      Polymorphic band number
      多态性条带比例
      Percentage of polymorphic band/%
      T-AGC/G-AAT 216 202 93.52
      T-AGC/G-GCA 216 203 93.98
      T-AGC/G-CAA 216 206 95.37
      T-ACC/G-AAT 216 212 98.15
      T-TAA/G-AAT 216 206 95.37
      T-TAA/G-GCA 216 211 97.69
      T-TAA/G-CAA 216 214 99.07
      T-ACA/G-TGA 216 195 90.28
      合计 Sum 1 728 1 649
      平均 Mean 216 206.13 95.43

      多样性指数是衡量及评价流苏树天然群体遗传多样性丰富程度的重要参数。62份流苏树种质的Ne平均值为1.213 7,H平均值为0.153 7,I平均值为0.268 0;其中T-AGC/G-CAA的Ne(1.237 4)最大;T-TAA/G-GCA的H(0.168 5)、I(0.298 7)最大;T-TAA/G-AAT的Ne(1.162 6)、H(0.122 7)、I(0.224 4)最小(表5)。这表明7个流苏树天然群体的多态性丰富,流苏树的遗传多样性处于一个较高的水平。

      表 5  基于不同引物组合的流苏树遗传多样性水平

      Table 5.  Genetic diversity level of Chionanthus retusus based on different primer combinations

      引物组合
      Primer combination
      有效等位基因数
      Number of effective allele (Ne)
      Nei’s基因多样性指数
      Nei’s gene diversity (H)
      Shannon多态性信息指数
      Shannon polymorphism information index (I)
      T-AGC/G-AAT 1.216 6 0.151 6 0.261 1
      T-AGC/G-GCA 1.235 6 0.163 3 0.278 4
      T-AGC/G-CAA 1.237 4 0.163 9 0.277 8
      T-ACC/G-AAT 1.227 3 0.164 8 0.286 7
      T-TAA/G-AAT 1.162 6 0.122 7 0.224 4
      T-TAA/G-GCA 1.221 2 0.168 5 0.298 7
      T-TAA/G-CAA 1.215 9 0.159 0 0.280 5
      T-ACA/G-TGA 1.193 2 0.135 6 0.236 3
      平均 Mean 1.213 7 0.153 7 0.268 0
    • 通过对不同流苏树群体内部的遗传多样性分析可知(表6),J-S的Ne、HI 值均最大, 分别为1.226 5、0.150 4、0.245 2,而H-B的Ne(1.204 3)、H(0.131 5)、I(0.207 7)相比于其他群体较小, 表明J-S群体内的遗传多样性水平最高,后者相对较低;对7个群体的Ne、HI值差异利用SPSS进行显著性分析(显著性水平为0.05), 结果显示:群体间Ne、HIP值分别是0.408 8、0.239 8、0.058 9(P < 0.05为显著,P值越小表明结果越显著);H-B与J-S间的HI存在一定差异,同属太行山系的B-H和S-A群体间遗传多样性差异不显著,H-T、H-A和S-Q群体之间遗传多样性差异不显著,说明北京怀柔和山西安泽地区的流苏树种质资源属于相同产区,河南桐柏、湖北安陆和山东青州的流苏树群体可能属于同一产区,而河北保定与江苏沭阳的流苏树种质资源属于不同的产区。

      表 6  7个流苏树天然群体内遗传多样性水平和显著性分析

      Table 6.  Analysis of genetic diversity and significance of the seven Chionanthus retusus natural populations

      群体 PopulationNe H I
      B-H1.220 4a0.146 1ab0.238 9a
      H-B1.204 3a0.131 5b0.207 7b
      H-T1.195 0a0.134 2ab0.224 1ab
      S-Q1.206 1a0.138 5ab0.228 2ab
      S-A1.210 3a0.143 7ab0.238 9a
      J-S1.226 5a0.150 4a0.245 2a
      H-A1.207 4a0.137 9ab0.223 7ab
      注:同列不同小写字母表示种群间差异显著(P < 0.05)。 Note: different lowercase letters in same column indicate significant differences among populations (P < 0.05).
    • 流苏树天然群体的基因多样性分析结果显示(表7):总基因多样性指数(Ht)为0.408 6,群体内的基因多样性指数(Hs)为0.354 0,7个流苏树群体间的遗传多样性(Dst)是0.054 6,分化指数(Gst)为0.133 6,表明在总的遗传变异中有 13.36%发生在群体间,86.64%存在于种群内部,种群内和群体间的差异均极显著(P < 0.001);基因流(Nm)为3.243 7,说明流苏树天然群体间存在频繁的基因交流。

      表 7  7个流苏树天然群体遗传分化分析

      Table 7.  Genetic differentiation of the seven Chionanthus retusus natural populations

      所有群体
      All population
      总基因多样性指数
      Total gene diversity
      index (Ht)
      群体内基因多样性
      Genetic diversity within
      the population (Hs)
      群体间基因多样性
      Genetic diversity between populations (Dst)
      基因分化系数
      Coefficient of gene differentiation (Gst)
      基因流
      Gene flow (Nm)
      平均数 Mean0.408 60.354 00.054 60.133 63.243 7
      标准差 Standard deviation0.027 60.012 0

      7个流苏树群体间的遗传一致度(In)介于0.898 0 ~ 0.973 6,平均值为0.934 4;遗传距离(GD)介于0.026 7 ~ 0.110 8,平均值为0.068 2(表8)。S-A与H-T的遗传一致度最大(0.973 6),遗传距离最小(0.026 7),两个群体显示出相近的亲缘关系,遗传差异性最小。S-A与H-B间的遗传一致度最小(0.898 0),遗传距离为0.107 5,仅次于H-A,H-B与H-A之间的遗传距离最大(0.110 8),遗传一致度为0.895 1(略高于H-B与S-A),说明H-B与S-A的亲缘关系最远,差异性最大。利用SPSS软件进行Mantel检验,结果表明遗传距离和地理距离间没有显著相关性(r = 0.288,P = 0.205);流苏树群体间所表现出的较高水平遗传一致度,也表明群体间的遗传变异性较低,流苏树天然群体的遗传变异主要存在于种群内部。

      表 8  基于SRAP检测的7个流苏树天然群体间遗传一致度和遗传距离

      Table 8.  Genetic identity and genetic distance between seven Chionanthus retusus natural populations based on SRAP

      群体 PopulationH-TH-AS-AS-QJ-SB-HH-B
      H-T0.958 30.973 60.965 80.920 00.918 90.907 4
      H-A0.042 60.964 50.951 70.911 00.909 90.895 1
      S-A0.026 70.036 10.960 60.931 00.933 20.898 0
      S-Q0.034 80.049 50.040 20.954 70.947 20.935 8
      J-S0.083 40.093 30.071 50.046 40.957 80.904 1
      B-H0.084 50.094 40.069 20.054 20.043 10.922 8
      H-B0.097 20.110 80.107 50.066 30.100 90.080 4
      注:右上部为遗传一致度,左下部为遗传距离。Notes: Nei’s genetic identity is showed above diagonal and genetic distance is showed below diagonal.
    • 基于以上SRAP分析结果,利用PopGen软件计算群体间遗传一致度矩阵,并构建UPGMA遗传关系聚类图(图1)。聚类图显示:将不同地区的流苏树天然群体分为3大类:H-T、S-A、S-Q、H-A聚为第Ⅰ类,H-B、B-H为第Ⅱ类,J-S为第Ⅲ类。聚类结果表明,流苏树天然群体的地理距离和遗传距离间不存在显著性的关系,地理位置距离相近的群体并没有优先聚在一起,这一结果与Mantel检验结果相同(图2

      图  1  不同流苏树天然群体间遗传关系聚类分析图

      Figure 1.  Dendrogram of UPGMA analysis of seven Chionanthus retusus natural populations

      图  2  7个流苏树天然群体间遗传距离与地理距离的相关性分析

      Figure 2.  Correlation analysis between genetic distance and geographic distance of seven Chionanthus retusus natural populations

      由62份初级种质资源的遗传相似性系数聚类图(图3)可知,种质资源个体间聚类关系复杂,遗传相似性系数变化范围介于0.74 ~ 0.84,在相似性系数为0.742时,可将试材分为三大类群,其中第一大类群囊括了本试验试材的绝大部分,第二、三类均属于J-S,也说明J-S的2、4、5及9号试材与其他试材之间的遗传相似性小,亲缘关系较远;当遗传相似性系数为0.746时,第一大类群又可以细分为4个亚类群,其中第一亚类包含了55份试材,S-Q-7和S-Q-8号试材的亲缘关系最近, 其次是H-T-3和H-T-4试材,大多数种质表现为同一群体的多数个体聚在一起,但也存在不同群体的部分种质聚在一起的现象,说明在群体间遗传变异相对稳定,而种群内的遗传变异水平高,这与前面基因多样性分析结果吻合。

      图  3  62份流苏树初级种质资源基于SRAP分析的UPGMA聚类结果

      Figure 3.  UPGMA dendrogram of primary collection of 62 Chionanthus retusus germplasm based on SRAP

      图4a主坐标分析图可以看出,H-B和B-H、H-T和S-A的试材相互间有掺杂,没有完全分开,说明流苏树群体个体间的遗传一致度较高,这一结果与群体间的遗传一致度和遗传距离分析结果相似,与群体间构建的UPGMA遗传关系聚类图(图1)结果相同。与62份流苏树初级种质的UPGMA聚类图(图1)结果相比,两种分析方法在研究流苏树群体亲缘关系的过程中存在部分差异:如J-S的4号和B-H的7号试材在初级种质的UPGMA中(图3)并未聚在一起, 但在主坐标分析图中却聚在一起,由此也可以看出,流苏树天然群体的基因型复杂。两种聚类结果比对显示:流苏树群体内的个体间聚类结果虽然不完全相同,但它们的群组划分趋向一致, 主坐标分析能够更清晰地反映62份流苏树种质之间的遗传分化和亲缘关系的远近。

      图  4  62份流苏树资源SRAP标记的主坐标分析图

      Figure 4.  Principal coordinate analysis for 62 samples of Chionanthus retusus

    • 遗传多样性是物种生存、发展和进化的前提,是物种长期进化而产生的结果[33],遗传多样性研究能为植物遗传改良提供理论依据和指导[34-38]。通常PPB超过50%,就可以认为该物种的遗传多样性较为丰富[39]。Hickey等[40] 和Swensen等[41]认为,分布区狭窄或珍稀物种的遗传变异水平低,但近年来也有研究表明一些濒危物种仍保持较高水平的遗传多样性[42-43]。流苏树被列为国家二级保护植物,本文在流苏树天然群体遗传多样性研究中发现其PPB达到了95.43%,多态性水平高于一些典型稀有濒危植物[44],且高于同科丁香属(Syringa)的紫丁香(Syringa oblata)(PPB为12.66%)[45]、梣属(Fraxinus)的水曲柳(Fraxinus mandshurica)(PPB为73.24%)[46]以及木犀属桂花(Osmanthus fragrans)(PPB为83.78%)[47],说明流苏树的遗传多样性较高,遗传基础宽。繁育系统是影响遗传多样性的重要因素之一[48],流苏树拥有自然界罕见的雄全异株繁育系统,形态的雄全异株其繁育本质是雌雄异株,雄全异株植物在进化过程中要得以维持必须是完全杂交或者自交亲和率很低,并且伴随很强的自交衰退[49],保证了流苏树群体的高度遗传多样性。

      流苏树天然群体内的遗传多样性分析结果表明:J-S内遗传变异最多,H-B内的遗传变异相比于其他群体最少,这可能与其生境有一定关联。偏远地区的J-S流苏树群体生长旺盛且规模数量大,相比之下生长于市区异地保存的H-B流苏树群体,由于频繁的人为因素影响导致在异地保存过程中出现生境破碎化现象,这与王萱[29]研究玉玲花(Styrax obassia)的遗传多样性分析结果相似,现存的流苏树群体甚至可能是原种群的部分或者一小部分,因此流苏树生长势较弱,分布零乱,这种状况下极有可能导致群体的遗传变异,尤其是等位基因多样性的流失,进而导致遗传多样性下降。

    • 了解种群的遗传结构及其遗传分化是制定物种保护策略的前提条件。本文通过对7个流苏树天然群体间的遗传多样性研究可知,流苏树群体间的平均遗传一致度为 0.934 4,平均遗传距离为 0.068 2,流苏树群体间遗传一致度水平较高;本研究中群体间的基因分化系数Gst为0.133 6,表明流苏树天然群体的遗传多样性主要分布在种群内,占变异成分的 86.64%,只有 13.36%的变异存在于群体间;一般情况下,生物种群体间Gst 值高于 0.15 就可以认为其群体间具有显著的遗传分化[50],因此流苏树天然群体间的遗传分化低于显著水平,这一结果与许多木本植物研究结果相似[51],异于大青杨(Populus ussuriensis[52]和明党参(Chingium smyrnjoides[53]。流苏树主要靠风和昆虫(主要是蓟马科(Thripidae)和食蚜蝇科(Syrphidae))传粉,流苏树果实是核果,种子外层裹有丰富果肉,故推测动物体内传播是种子主要传播方式,即鸟类取食后随粪便排出,这种传播方式通常可以将种子带到远处,促进群体间的基因交流。基因流(Nm)是影响遗传分化的重要因素,依据Nm值的大小可将其划分为低(0 ~ 0.249)、中(0.250 ~ 0.990)、高(≥ 1.0)3个等级水平[54],当Nm > 1时,基因流就能够防止近交引起的群体间遗传分化以及遗传漂变现象的出现,本研究中基因流Nm值为3.243 7,说明流苏树天然群体间具有较高水平的基因流动。流苏树群体间的基因流动性大,群体间的基因分化程度低,推测可能是较频繁的基因流动在一定程度上阻止了流苏树群体间的遗传分化。除了基因流的阻隔作用,环境因子的选择作用也是影响群体间遗传分化的重要原因;生态系统小,环境的变异会使不同流苏树群体之间在遗传结构上呈现显著差异。所以,流苏树天然群体间遗传变异大小可在一定程度上说明流苏树对不同环境适应的广泛程度。群体间变异越大,该物种适应环境的能力越强[55],流苏树天然群体趋于显著的遗传分化反映了该物种具有较强的环境适应能力。

      Heywood[56]曾指出,种群间的遗传距离通常与其地理距离(空间距离)呈正相关。7个流苏树天然群体的采样地多为山区,各个种群之间存在高大山脉阻隔,群体间大范围交流困难,从表5可以看出,遗传距离最小的S-A与H-T地理距离并不是最小的,地理距离最大的B-H与H-A遗传距离也不是最大的,这表明群体间的遗传距离似乎与群体间地理距离之间没有相关性,通过Mantel检验也证明了这一点(r = 0.288,P = 0.205),这与江亚雯等[57]对寒兰(Cymbidium kanran),穆立蔷等[58]对紫椴(Tilia amurensis)的研究结果一致。

    • 流苏树天然群体具有丰富的遗传多样性,为流苏树遗传改良提供了丰富的种质资源。该树种具有较强的传粉及结实能力在一定程度上有助于群体间基因交流,使得群体间的遗传分化较低,由此看出流苏树天然群体间遗传分化格局的复杂性,其复杂性可能与部分采样地毗邻,空间范围相近有关。近年野生种质资源的遗传多样性研究已经成为热点问题之一,在人为破坏、地理隔离等因素综合作用下,野生流苏树资源破坏严重,但在实地调查中发现,流苏树在太行山分布集中且数量较多,有很好的代表性。B-H、H-B、S-A3个天然群体均属于太行山群体,H-T、H-A位于河南、湖北交接处的秦岭与大别山过渡地带也与太行山相接壤,显著性分析结果显示(表6)H-T、H-A及S-Q群体遗传多样性差异不显著,可能源于同一产区,7个流苏树群体中6个群体(J-S除外)均与太行山地区有一定意义上的关联,这进一步证明了太行山地区在我国野生流苏树种质资源中占有重要地位。

      优异的种质资源是进行遗传育种的基础,只有了解种质资源的遗传关系才能有效的加以利用。本文首次利用SRAP分子标记技术对我国天然分布的流苏树群体资源进行遗传多样性研究,不仅为我国流苏树资源提供了更多遗传学信息,对已有的研究内容进行补充,也为理清7个省份流苏树亲缘关系,指导遗传多样性保护及优良品种选育提供理论依据,为流苏树这一珍贵稀有树种的后续研究提供借鉴和参考。

参考文献 (58)

目录

    /

    返回文章
    返回