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不同表土覆盖方式对种子库活力的影响

薛国连, 郭小平, 薛东明, 林雅超, 冯昶栋, 罗超, 李晓菲

薛国连, 郭小平, 薛东明, 林雅超, 冯昶栋, 罗超, 李晓菲. 不同表土覆盖方式对种子库活力的影响[J]. 北京林业大学学报, 2022, 44(4): 86-94. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20210392
引用本文: 薛国连, 郭小平, 薛东明, 林雅超, 冯昶栋, 罗超, 李晓菲. 不同表土覆盖方式对种子库活力的影响[J]. 北京林业大学学报, 2022, 44(4): 86-94. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20210392
Xue Guolian, Guo Xiaoping, Xue Dongming, Lin Yachao, Feng Changdong, Luo Chao, Li Xiaofei. Effects of different topsoil covering modes on seed bank vitality[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2022, 44(4): 86-94. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20210392
Citation: Xue Guolian, Guo Xiaoping, Xue Dongming, Lin Yachao, Feng Changdong, Luo Chao, Li Xiaofei. Effects of different topsoil covering modes on seed bank vitality[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2022, 44(4): 86-94. DOI: 10.12171/j.1000-1522.20210392

不同表土覆盖方式对种子库活力的影响

基金项目: 国家重点研发计划(2017YFC0504406),内蒙古自治区科技重大专项(2020ZD0021)。
详细信息
    作者简介:

    薛国连。主要研究方向:矿区生态修复。Email:xueguolian19@bjfu.edu.cn 地址:100083 北京市海淀区清华东路35号北京林业大学水土保持学院

    责任作者:

    郭小平,教授,博士生导师。主要研究方向:工程绿化。Email:guoxp@bjfu.edu.cn 地址:同上

  • 中图分类号: S793.3;S339.3

Effects of different topsoil covering modes on seed bank vitality

  • 摘要:
      目的  研究表土堆存中不同覆盖方式对种子库活力特征的影响,为荒漠地区煤矿损毁土地植被重建提供技术依据。
      方法  本研究采用实地表土堆存和种子库萌发试验相结合的方法,采用密目网覆盖和彩条布覆盖这2种工程上常用的表土覆盖方式,分析不同表土覆盖方式下的土壤温度、种子含水量、埋深对种子活力的影响,并监测种子库损耗情况。
      结果  柠条锦鸡儿、沙蒿、羊柴、花棒4种植物种子在堆存4个月后活力均有所下降,彩条布覆盖方式下活力下降速度更快,柠条锦鸡儿、沙蒿种子在密目网覆盖下活力显著高于彩条布,羊柴、花棒种子在两种覆盖方式下无明显差异;温度、种子含水量及埋深是影响种子活力下降的重要因素,埋深对种子萌发率的影响体现在表层种子萌发率最高,最深层次之,中间层萌发率最低;堆存表土初始土壤种子库多为一年生植物,种子库密度为335粒/m2,表土堆存4个月后土壤种子库密度显著下降,密目网覆盖方式下种子库密度为192粒/m2,彩条布覆盖方式下种子库密度为249粒/m2
      结论  表土堆存使得种子活力下降,温度、种子含水量及埋深对种子活力下降都有不同程度的影响,表土从冬季堆存到春季期间,彩条布覆盖方式下的土壤种子库较密目网覆盖下损失更低,此期间内可以考虑彩条布作为表土覆盖方式。
    Abstract:
      Objective  The aim of this study was to investigate the characteristics of seed bank vitality under different covering modes in topsoil stockpiles, and to provide technical basis for vegetation reconstruction of coal mine damaged land in desert area.
      Method  The method of combining field topsoil stacking with seed bank germination test was adopted, and two common topsoil covering modes, dense mesh covering and color strip covering, were used to analyze the effects of soil temperature, seed water content and buried depth on seed vitality under different topsoil covering modes, and monitor the loss of seed bank.
      Result  The seed viability of Caragana korshinskii, Artemisia desertorum, Hedysarum mongolicum and Hedysarum scoparium decreased after 4 months of storage, and the seed viability of Caragana korshinskii and Artemisia desertorum under dense mesh net coverage was significantly higher than that under color strip cloth. There was no significant difference between Hedysarum mongolicum and Hedysarum scoparium seeds under the two coverage modes; temperature, seed water content and buried depth were important factors affecting the decline of seed viability. The effect of buried depth on seed germination rate was reflected as the highest germination rate in the surface layer, then the deepest layer and the lowest germination rate in the middle layer; the initial soil seed bank of topsoil was mostly annual plants, and the seed bank density was 335 seed/m2. After 4 months of topsoil stacking, the soil seed bank density decreased significantly. The seed bank density under dense mesh coverage was 192 seed/m2, and the seed bank density under color strip coverage was 249 seed/m2.
      Conclusion  The storage of topsoil will reduce the seed vitality. The difference of temperature, seed water content and buried depth will lead to different degrees of seed vitality decline. From the storage of topsoil in winter to spring, the density of soil seed bank under the color strip covering method is lower than that under the dense mesh covering mode. During this period, the color strip covering mode can be considered as the topsoil covering mode.
  • 密码子是mRNA翻译的基本信息单位,除甲硫氨酸和色氨酸仅由1个密码子编码外,其余氨基酸均由多个同义密码子编码[1]。同义密码子在翻译过程中并非随机使用,而是具有偏好性,即同义密码子偏好性(synonymous codon usage bias, SCUB) [2]。SCUB以非随机方式广泛存在于多种生物中,反映了生物适应环境过程中的一些进化事件[3]。SCUB主要由自然选择和突变压力所引起,此外还受到基因表达水平、tRNA丰度、蛋白质长度、基因翻译起始信号、蛋白质结构、鸟嘌呤和胞嘧啶碱基(guanine and cytosine bases,GC)含量、突变频率与模式、以及随机遗传漂移等因素的影响[2,47]。因此,同义密码子使用偏好性分析有助于新基因发现、基因功能预测、转基因设计以及对生物分子进化和环境适应的理解[8]

    叶绿体在植物光合作用和代谢物生物合成过程中起着重要作用[9]。与核基因相比,叶绿体基因转化具有外源基因表达效率高、定点整合无位置效应、遗传稳定、不随花粉漂移等优点,现已被广泛用于分子进化、系统发育和遗传表达等研究领域[10]。随着高通量测序技术的不断发展,目前关于叶绿体基因组密码子偏好性的研究越来越多,如巨桉(Eucalyptus grandis[11]、金莲花(Trollius chinensis[12]、紫菜(Porphyra umbilicalis[13]、桔梗(Delphinium grandiflorum[14]、大戟科(Euphorbiaceae)植物[15]和水稻(Oryza sativa[16]等,极大地促进了这些物种的种质创新和开发应用。

    珙桐(Davidia involucrata)是蓝果树科(Nyssaceae)珙桐属唯一现存的第三纪孑遗植物,也是我国特有的濒危树种,被称为“活化石”[1718]。珙桐具有较高的研究价值、观赏价值和药用价值。自1869年被发现以来,科学家们在其分类学、形态学、生理学、生态学、繁殖育种等方面都进行了大量研究[1922]。然而,在分子水平上的研究却进展缓慢[23],限制了该物种的深入研究。本研究通过生物信息学方法分析珙桐叶绿体基因组的同义密码子偏好性,旨在为珙桐的遗传进化、系统发育、分子育种和物种保护等方面的进一步研究提供参考。

    从NCBI GenBank下载珙桐叶绿体基因组(登录号:KR061358.1)。序列全长为169 085 bp,包含82个蛋白编码基因。参照Duan等[14]的方法剔除长度小于300 bp的编码序列,并选择以ATG为起始密码子、以TAA、TAG和TGA为终止密码子的编码序列,最终筛选出59条序列进行后续分析研究。

    使用在线工具(http://112.86.217.82:9919/#/tool/alltool/detail/214)计算珙桐叶绿体基因组的SCUB相关指标,包括基因GC含量(GCall)、密码子第1、2、3位GC含量(GC1、GC2、GC3)、同义密码子相对使用度(relative synonymous codon usage, RSCU)、密码子适应指数(codon adaptation index,CAI)和有效密码子数(effective number of codon,ENC)[1415]。RSCU值表示编码氨基酸的所有密码子的平均使用次数,RSCU = 1时,表示同义密码子无偏好;RSCU > 1时,表示同义密码子偏好性强;而RSCU < 1时,则表示偏好性较弱[24]。CAI是指编码区同义密码子与最佳密码子使用频率的相符程度,用于评估外源基因在宿主内的表达水平,取值在0 ~ 1之间,CAI越高,表示外源基因在宿主内的表达水平越高。ENC常被用来衡量单个基因的密码子偏好性大小,取值范围在20 ~ 61之间。当ENC ≤ 35时,则被认为该基因具有强密码子偏好性;当ENC = 61时,则被认为密码子无偏好性,其标准计算公式为[6]

    ENC=2+t+29t2+(1t2)2

    式中: ENC为有效密码子数,t为密码子第3位GC含量 (GC3)。

    中性绘图是以GC1和GC2的均值(GC12)为纵坐标,以GC3为横坐标绘制的散点图,图中每1个点代表1个基因的位置。根据回归线的斜率和GC含量的分布,可以推断出突变压力和选择压力的作用。当回归线的斜率接近1时,突变压力被认为起着主要作用,而当回归线的斜率接近0时,则说明GC12和GC3之间缺乏相关性,表明选择压力起主要作用[25]

    表  1  珙桐叶绿体基因组密码子GC含量及CAI和ENC值
    Table  1.  GC proportion, CAI and ENC in chloroplast genomics of Davidia involucrata
    基因
    Gene
    CAI ENC GC含量 GC content 基因
    Gene
    CAI ENC GC含量 GC content
    GCall/% GC1/% GC2/% GC3/% GCall/% GC1/% GC2/% GC3/%
    rps8 0.08 37.04 36.13 39.86 43.36 25.17 ycf2 0.15 48.53 37.78 37.08 35.00 41.25
    rps18 0.11 37.57 35.29 35.29 44.12 26.47 ndhK 0.16 48.55 38.05 44.25 44.69 25.22
    rps14 0.11 38.09 41.91 44.55 49.50 31.68 ycf4 0.16 48.82 38.10 42.33 39.68 32.28
    ndhE 0.16 40.41 32.68 38.24 35.29 24.51 rpoB 0.15 48.85 38.94 50.89 37.72 28.20
    psbA 0.32 40.82 42.66 50.28 43.50 34.18 psbB 0.20 48.86 44.47 54.81 45.97 32.61
    ndhF 0.15 43.72 32.71 37.72 35.97 24.43 rpoA 0.16 49.64 34.62 44.38 32.84 26.63
    ndhF 0.15 43.72 32.71 37.63 36.16 24.60 rps4 0.14 49.84 39.27 51.98 39.11 26.73
    rps3 0.16 43.87 35.62 47.49 33.33 26.03 rps2 0.18 49.95 39.66 44.73 44.30 29.96
    psbD 0.25 44.42 42.28 52.26 43.22 31.36 rpoC2 0.15 50.04 37.97 45.82 38.50 29.58
    rps7 0.19 45.03 40.60 53.21 45.51 23.08 matK 0.15 50.13 34.19 41.39 32.08 29.11
    rps7 0.19 45.03 40.60 53.21 45.51 23.08 atpE 0.16 51.02 39.80 51.49 39.55 28.36
    rpl23 0.13 45.75 37.39 40.00 41.74 30.43 ndhH 0.16 51.13 39.26 51.52 37.06 29.19
    ndhG 0.13 45.96 34.09 44.07 33.90 24.29 ycf2 0.21 51.22 37.78 36.70 32.11 39.45
    atpB 0.21 46.12 42.48 56.31 42.08 29.06 ndhA 0.14 51.26 33.17 36.42 32.11 30.98
    ndhD 0.14 46.24 35.29 41.37 36.86 27.65 clpP 0.16 51.31 36.21 37.28 38.06 33.29
    psbC 0.18 46.25 44.02 53.38 46.20 32.49 ndhJ 0.15 51.37 40.25 51.57 37.74 31.45
    ndhC 0.20 46.41 34.44 45.45 33.06 24.79 ndhB 0.17 51.78 37.84 36.60 39.33 37.58
    rpl22 0.20 46.70 34.60 43.67 36.08 24.05 ndhB 0.16 52.51 37.84 35.82 41.33 36.40
    rps11 0.15 46.75 44.84 54.68 57.55 22.30 petA 0.18 53.14 39.98 52.34 37.07 30.53
    cemA 0.20 46.78 33.62 40.87 29.13 30.87 ycf3 0.15 53.19 35.92 34.78 39.49 33.48
    rpl14 0.18 46.80 41.46 56.10 37.40 30.89 petD 0.16 53.20 36.72 38.41 30.44 41.31
    atpF 0.13 46.85 36.25 33.88 34.30 40.58 rpl16 0.13 54.37 34.66 38.16 35.01 30.82
    accD 0.19 46.90 33.04 36.01 35.12 27.98 rpoC1 0.15 56.05 37.99 38.82 33.12 42.03
    atpI 0.18 47.17 37.90 48.39 37.90 27.42 rps16 0.16 56.33 34.92 40.63 31.93 32.19
    rpl20 0.09 47.55 36.16 38.98 44.07 25.42 rps12 0.15 56.58 39.74 44.21 40.14 34.86
    atpA 0.20 47.60 40.94 55.12 40.55 27.17 petB 0.15 57.40 36.23 38.52 31.15 39.01
    psaB 0.18 47.71 40.91 48.71 42.99 31.02 rpl2 0.15 58.12 42.08 39.32 45.64 41.29
    rbcL 0.28 47.86 43.77 57.77 43.70 29.83 rpl2 0.14 58.78 42.08 45.27 38.63 41.53
    psaA 0.20 48.40 42.79 52.73 43.41 32.22 rpl23 0.23 48.68 37.39 41.03 33.33 33.33
    ndhI 0.19 48.52 34.72 42.26 36.31 25.60 平均值 Mean 0.18 48.52 38.05 44.51 38.83 30.63
    注:CAI. 密码子适应指数; ENC. 有效密码子数; GCall . 基因中所有密码子的的GC含量;GC1 . 基因中所有密码子的第1位的GC含量;GC2. 基因中所有密码子的第2位的GC含量;GC3. 基因中所有密码子的第3位的GC含量。Notes: CAI, codon adaptation index; ENC, effective number of codon; GCall, GC content of all codons in the gene; GC1, the GC content in position 1 of all codons in the gene; GC2, the GC content in position 2 of all codons in the gene; GC3, the GC content in position 3 of all codons in the gene.
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    为了探究ENC与基因碱基组成之间的关系,以GC3为横坐标,以ENC为纵坐标绘制散点图,并在散点图中绘制标准ENC值的曲线[26]。当基因ENC值在标准曲线附近时,表明基因密码子使用偏好受突变压力的影响较大;而当ENC值偏离标准曲线较远时,表明密码子使用模式受选择压力的影响较大。以ENC检测值(ENCobs)和ENC标准值(ENCexp)两者的差值与ENC标准值的比值作为各基因有效密码子比值,并进行珙桐叶绿体基因组有效密码子比值频率分布分析。

    PR2-plot偏倚分析用于探求突变压力和选择压力对SCUB的影响。一般认为,在单个突变压力下,基因或基因组的简并密码子中A/T和C/G的比例是平衡的[27]。分别计算密码子第3位碱基上A、T、C、G的含量(A3T3C3G3),以G3/(G3 + C3)为横坐标,A3/(A3 + T3)为纵坐标进行偏倚分析[14]

    基于同义密码子相对使用度值进行对应分析,比较59个密码子(不包括甲硫氨酸、色氨酸密码子和3个终止密码子)的使用模式,得到一系列正交坐标轴,可用于显示叶绿体基因组密码子使用模式的变化。依据基因同义密码子在59个轴空间分布情况,可以得出各基因的分布情况及基因变异的最大比例,从而分析密码子使用变异的主要来源[14]

    最优密码子的确定参考杨祥燕等[28]的分析方法,以CAI值作为高表达和低表达基因的参考依据。首先,将所有基因按照CAI值进行排序,然后从排序总基因前后端各取10%的基因作为高、低表达样本组。随后计算高、低表达组的平均同义密码子相对使用度,以RSCU > 1的密码子为高频密码子,高表达组与低表达组RSCU差(ΔRSCU) > 0.08的为高表达密码子,ΔRSCU > 0.08且RSCU > 1的密码子判定为最优密码子。

    利用perl脚本除去长度小于300 bp的叶绿体基因,共获得59个独特基因,包括28个光合作用基因(psapsbpetatpndhrbcL)、18个核糖体基因(rpsrpl)、4个遗传系统基因(rpo)、4个保守基因(ycf)及5个其他基因(matKaccDcemAclpP),这些基因全长85 229 bp,占基因组全长的54.1%,长度范围在303 ~ 1 070 bp之间,平均长度为386 bp。对其进行密码子偏好性指标分析(表1)发现:叶绿体基因平均GC含量为38.05%,其中GC1(44.51%) > GC2(38.83%) > GC3(30.63%),ENC值范围在37.04 ~ 58.78之间,平均值为48.52;CAI值范围在0.08 ~ 0.32之间,平均值为0.18。以上结果表明,珙桐叶绿体基因组的第3个位置上的GC含量明显低于前2个位置,偏好使用碱基A或U,基因表达水平较低,且密码子使用偏好性较弱。RSCU分析(图1)显示:高频密码子(RSCU > 1)共有27个,其中13个以U结尾,12个以A结尾,2个以G结尾,以U和A结尾的密码子占92.59%。说明珙桐叶绿体基因组密码子的使用更倾向于使用以U或A结尾的同义密码子。

    图  1  珙桐叶绿体基因组同义密码子偏好性分析
    RSCU. 同义密码子相对使用度。*Ter为终止密码子。RSCU, relative synonymous codon usage. *Ter is stop codon.
    Figure  1.  Synonymous codon usage bias analysis of chloroplast genome of D. involucrate

    图2显示:GC12(GC1和GC2的平均值)的取值范围在34.09% ~ 56.12%之间,GC3的取值范围在17.3% ~ 42.7%之间,GC12和GC3的相关系数和斜率分别为0.109 2和−0.325 1,斜率接近0。说明珙桐叶绿体基因组基因密码子的3个碱基在组成上存在较大差异,自然选择对珙桐叶绿体基因组密码子使用偏好的影响较大。

    图  2  珙桐叶绿体基因组中性绘图分析
    GC12. GC1和GC2的平均值; GC3. 密码子第3位GC含量。 GC12, average of GC1 and GC2; GC3, the third GC content of codon.
    Figure  2.  Neutrality plot analysis of chloroplast genome of D. involucrata

    通过构建ENC-plot图分析造成密码子使用偏好的主要影响因素,发现大部分基因都聚集在ENC标准曲线附近,说明大多数基因的ENC检测值(ENCobs)与ENC标准值(ENCexp)很接近(图3)。通过计算ENC比值,来进一步量化ENCobs与ENCexp之间的差异。结果(表2)显示:35个基因(59.32%)的ENC比值位于−0.05 ~ 0.05区间,表明ENCobs值与ENCexp值略有差异,意味着选择压力并不是影响珙桐密码子使用偏好性的唯一因素,突变压力也是偏好性的重要影响因素之一。

    图  3  珙桐叶绿体基因组的ENC-plot绘图分析
    曲线为ENC标准曲线。The curve is ENC standard curve.
    Figure  3.  ENC-plot analysis of chloroplast genomes of D. involucrata
    表  2  ENC比值的频率分布
    Table  2.  Frequency distribution of ENC ratio
    组限
    Group value range
    组中值
    Group mid-value
    组数
    Group number
    频率
    Frequency/%
    −0.25 ~ 0.15 0.2 6 10.17
    −0.15 ~ 0.05 0.1 12 20.34
    −0.05 ~ 0.05 0 35 59.32
    0.05 ~ 0.15 0.1 6 8.47
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    PR2-plot分析结果(图4)显示:氨基酸密码子第3位碱基分布并不均匀,38个基因的A3/(A3 + T3)小于0.5,35个基因的G3/(C3 + G3)大于0.5,说明在总体上,基因组密码子中A与T的比例接近,G与 C的比例接近。然而,从图4也可以看出,很多基因并非聚集在平面图中心,而是分布在距离中心点较远的位置,大部分位于平面图的下半部和右半部,表明密码子第3位碱基嘧啶碱(T和C)的使用频率高于嘌呤碱(A和G),意味着突变压力不是珙桐叶绿体基因组的同义密码子使用偏好的唯一影响因素,其他因素对珙桐叶绿体基因组的同义密码子使用偏好也产生一定影响[11]

    图  4  珙桐叶绿体基因组PR2-plot绘图分析
    A3. 密码子第3位A碱基的含量;T3. 密码子第3位T碱基的含量;G3. 密码子第3位G碱基的含量;C3. 密码子第3位C碱基的含量。A3, adenine (A) content at the third position of codon; T3, thymine (T) content at the third position of codon; G3, guanine (G) content at the third position of codon; C3, cytosine (C) content at the third position of codon.
    Figure  4.  Analysis of PR2-plot of chloroplast genomes of D. involucrata

    对珙桐所有基因的SCUB的参数进行对应性分析。结果表明:前4个轴占总贡献率的50.20%,第1、2、3和4轴(Axis 1、2、3和4)贡献率分别为18.64%、11.58%、10.34%和10.64%,说明Axis 1是密码子使用偏好性的主要变异来源。以Axis 1为横坐标,Axis 2为纵坐标,将5类基因分布于平面,发现光合基因、遗传基因和其他基因分布相对集中,而核糖体和保守基因较为分散(图5),说明核糖体蛋白和保守基因的密码子使用偏好性相差较大,而其他基因的密码子使用偏好性相差较小。为确定密码子使用偏好性的影响因素,分别计算CAI、ENC、GC3、GC12与Axis 1之间的相关系数,结果(表3)显示:Axis 1与ENC(r = −0.685 0,P < 0.01)、GC3r = −0.927 0,P < 0.01)和CAI(r = −0.139 0, P < 0.05)均显著或极显著负相关,与GC12极显著正相关(r = 0.406 0,P < 0.01),表明珙桐叶绿体基因组基因密码子使用模式除了受突变压力的影响外,还受选择压力的影响。

    图  5  珙桐叶绿体基因组同义密码子使用与编码基因的对应分析
    Figure  5.  Correspondence analysis of synonymous codon usage towards the coding genes in D. involucrata chloroplast genome
    表  3  珙桐叶绿体基因组密码子偏好指标相关性分析
    Table  3.  Correlation analysis of codon usage index of chloroplast genomes of D. involucrata
    参数
    Parameter
    Axis 1 ENC CAI GC12 GC3
    ENC −0.685 0**
    CAI 0.139 0* −0.065 5**
    GC12 0.406 0** −0.240 0 0.361 0**
    GC3 −0.927 0** 0.625 0** −0.040 4 −0.330 0
    GCall −0.133 0 0.137 0 0.356 0** 0.817 0** 0.263 0*
    注:*. 显著相关(P < 0.05);**. 极显著相关(P < 0.01)。Notes: *, a significant correlation at P < 0.05 level; **, a highly significant correlation at P < 0.01 level.
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    密码子使用指数之间的相关性分析(表3)表明:CAI分别与GCallr = 0.356 0,P < 0.01)、GC12r = 0.361 0,P < 0.01)极显著正相关,与ENC(r = −0.065 5, P < 0.01)极显著负相关,其中CAI值是基因表达水平的重要指标,说明基因表达水平除了主要受碱基的影响外,也受到密码子偏好性的显著影响。ENC仅与GC3极显著正相关(r = 0.625 0,P < 0.01),表明密码子第3位碱基组成对密码子偏好性影响较大;而碱基之间的相关分析(表3)表明,GCall分别与GC12、GC3呈极显著(r = 0.817 0, P < 0.01)和显著正相关(r = 0.263 0, P < 0.05)。

    以RSCU > 1为标准共筛选出37个高频密码子,以ΔRSCU > 0.08为标准共筛选出27个高表达密码子(表4)。其中,高表达密码子以A或T结尾的共有21个,以C或G结尾的共有6个。以RSCU > 1且ΔRSCU > 0.08为标准共筛选出12个最优密码子,分别为UUA、AUU、GUU、GUA、GCU、UAU、UAA、CAU、AAU、AAA、GAU和UGU,所有最优密码子均以A或U结尾(表4),表明密码子更倾向于使用A或U结尾,这与前面RSCU分析的结果(图1)相一致。

    表  4  珙桐叶绿体基因组的最优密码子
    Table  4.  Optimal codons in chloroplast genome of D. involucrata
    氨基酸
    Amino acid
    密码子
    Codon
    高表达基因
    High expressed gene
    低表达基因
    Low expressed gene
    ΔRSCU 氨基酸
    Amino Acid
    密码子
    Codon
    高表达基因
    High expressed gene
    低表达基因
    Low expressed gene
    ΔRSCU
    数目
    Number
    RSCU 数目
    Number
    RSCU 数目
    Number
    RSCU 数目
    Number
    RSCU
    亮氨酸 Leu UUA** 54 1.59 26 1.28 0.31 酪氨酸 Tyr UAU** 50 1.39 25 1.04 0.35
    UUG 45 1.32 30 1.48 −0.16 UAC 22 0.61 23 0.96 −0.35
    CUU*** 41 1.21 12 0.59 0.62 *Ter UAA*** 5 1.88 32 1.16 0.72
    CUC 17 0.5 19 0.93 −0.43 UGA 2 0.75 31 1.12 −0.37
    CUA 32 0.94 24 1.18 −0.24 UAG 1 0.38 20 0.72 −0.34
    CUG 15 0.44 11 0.54 −0.1 组氨酸 His CAU* 34 1.36 14 1.27 0.09
    异亮氨酸 Ile AUU** 74 1.52 40 1.19 0.33 CAC 16 0.64 8 0.73 −0.09
    AUC** 49 1.01 23 0.68 0.33 谷氨酰胺 Gln CAA 46 1.44 26 1.44 0
    AUA 23 0.47 38 1.13 −0.66 CAG 18 0.56 10 0.56 0
    甲硫氨酸 met AUG 58 1 21 1 0 天冬酰胺 Asn AAU* 66 1.28 25 1.02 0.26
    缬氨酸 Val GUU* 49 1.39 19 1.21 0.18 AAC 37 0.72 24 0.98 −0.26
    GUC 13 0.37 13 0.83 −0.46 赖氨酸 Lys AAA* 60 1.46 46 1.23 0.23
    GUA*** 66 1.87 18 1.14 0.73 AAG 22 0.54 29 0.77 −0.23
    GUG 13 0.37 13 0.83 −0.46 天冬氨酸 Asp GAU** 59 1.37 20 1.05 0.32
    丝氨酸 Ser UCU*** 48 2.03 8 0.98 1.05 GAC 27 0.63 18 0.95 −0.32
    UCC* 23 0.97 7 0.86 0.11 谷氨酸 Glu GAA*** 99 1.56 37 0.94 0.62
    UCA* 25 1.06 8 0.98 0.08 GAG 28 0.44 42 1.06 −0.62
    UCG 7 0.3 6 0.73 −0.43 半胱氨酸 Cys UGU* 12 1.2 10 1.11 0.09
    AGU 26 1.1 11 1.35 −0.25 UGC 8 0.8 8 0.89 −0.09
    AGC 13 0.55 9 1.1 −0.55 色氨酸 Trp UGG 41 1 25 1 0
    脯氨酸 Pro CCU*** 52 2.12 9 0.97 1.15 精氨酸 Arg CGU*** 45 2.21 4 0.36 1.85
    CCC 14 0.57 5 0.54 0.03 CGC** 12 0.59 1 0.09 0.5
    CCA 19 0.78 16 1.73 −0.95 CGA** 23 1.13 8 0.72 0.41
    CCG 13 0.53 7 0.76 −0.23 CGG 5 0.25 2 0.18 0.07
    苏氨酸 Thr ACU*** 63 2 5 0.67 1.33 AGA 32 1.57 47 4.21 −2.64
    ACC* 24 0.76 4 0.53 0.23 AGG 5 0.25 5 0.45 −0.2
    ACA 28 0.89 15 2 −1.11 苯丙氨酸 Phe UUU 68 0.96 47 1.12 −0.16
    ACG 11 0.35 6 0.8 −0.45 UUC* 74 1.04 37 0.88 0.16
    丙氨酸 Ala GCU*** 92 2.19 5 1.25 0.94 甘氨酸 Gly GGU*** 87 1.87 7 0.46 1.41
    GCC 20 0.48 3 0.75 −0.27 GGC 17 0.37 8 0.52 −0.15
    GCA 40 0.95 4 1 −0.05 GGA 57 1.23 29 1.9 −0.67
    GCG 16 0.38 4 1 −0.62 GGG 25 0.54 17 1.11 −0.57
    注:加下划线的密码子的RSCU > 1;*代表0.08 < ΔRSCU < 0.3;**代表0.3 < ΔRSCU < 0.5;***代表ΔRSCU > 0.5,加粗密码子被认为是最优密码子。Notes: the underlined codon,RSCU > 1; *, 0.08 < ΔRSCU < 0.3; **, 0.3 < ΔRSCU < 0.5; ***, ΔRSCU > 0.5; the bold codons are thoght to be the optimal codons.
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    植物叶绿体和线粒体基因组的同义密码子使用偏好性与核基因的同义密码子使用偏好性在进化速率和模式上有所不同,植物叶绿体和线粒体基因组的同义密码子使用偏好性除了主要受DNA序列的定向突变压力和选择压力影响外[29],还受tRNA丰度、链特异突变偏倚、基因表达水平和基因长度等因素的影响[2,47],这些影响因素被广泛地用于解释种间密码子使用变异和基因组内密码子使用变异情况[8]。其中,叶绿体基因组的GC含量是与突变压力平衡适应的结果,这是密码子使用偏好性形成过程中最普遍的影响因素之一[14]。而密码子第3位碱基的同义突变虽然不能改变氨基酸的类型,但它仍然被认为是决定氨基酸类型的重要特征,因此GC3经常被用作密码子使用偏好性的重要指标[30]。当密码子的使用主要受选择压力的影响时,GC3值往往分布在一个较小的范围内,且GC12和GC3之间没有显著的相关性[31]。在本研究中,GC3含量平均值为30.63%,低于于水稻(Oryza sativa[16]、玉米(Zea mays[29]、小麦(Triticum aestivum[32]等单子叶农作物[33]。这或许是因为:单子叶植物与双子叶植物进化分离后,单子叶植物叶绿体基因组中编码序列的GC含量有普遍增加的趋势[29]。探究突变压力和选择压力对植物进化及育种的影响具有重要意义,中性绘图分析发现GC12和GC3之间并不存在显著相关性,说明珙桐叶绿体基因组的同义密码子使用偏好性主要受选择压力的影响,这与大部分被子植物的研究结果[15,28,3436]相一致,说明在长期进化过程中植物叶绿体基因组同义密码子使用偏好性相对保守且高度相似。

    通过ENC-plot分析叶绿体基因组中同义密码子使用偏好性是否受到突变压力的影响,显示大多数基因位于标准曲线附近,只有少数基因偏离预期曲线较远(图3),表明除了选择压力外,突变压力也参与了某些基因的同义密码子使用偏好性。然而,仅凭ENC-plot无法单独区分同义密码子使用偏好性主要受到突变压力还是选择压力的影响。在本研究中,通过结合中性绘图和PR2-plot分析,发现G、C和A、T碱基对在密码子第3个位置上的使用并不均等(图4)。根据Frank[37]的观点,如果突变压力是同义密码子使用偏好性的主要原因,那么G、C和A、T碱基对会在密码子中被均匀使用;相反,如果选择压力是主要原因,则G、C和A、T碱基对不会被均匀使用。综合中性绘图和PR2-plot的分析结果发现,珙桐叶绿体基因组的同义密码子使用偏好性主要受到自然选择压力的影响。此外,RSCU通常表示密码子偏好性的强弱[24],为探究基因表达水平和碱基等因素对珙桐同义密码子使用偏好性的影响,基于RSCU的对应分析结果表明,Axis 1与CAI、GC3、GC12、ENC均显著或极显著相关(表3)。结合中性绘图、ENC-plot、PR2-plot和对应性分析结果发现:珙桐叶绿体基因组同义密码子使用偏好性除了主要受选择压力影响外,还受到突变压力、碱基组成、基因表达水平等因素的影响,这一结果与麻风树(Jatropha curcas[38]和马尾松(Pinus massoniana[39]等木本植物的研究结果相类似。

    近年来,农作物叶绿体转化在抗盐、抗旱、抗除草剂等研究领域取得了重大进展,利用叶绿体基因进行育种研究时往往需要考虑叶绿体基因的稳定性,以及它们的遗传多样性[6]。同义密码子使用偏好性可以通过调节基因翻译的准确性和效率来影响基因表达,同义密码子使用偏好性越强,其基因的表达水平越高[4042]。在设计叶绿体基因表达载体时,若基于其同义密码子使用偏好性对密码子事前进行优化,则可以提升叶绿体基因组中插入基因的表达水平,也可以利用已知密码子的使用模式来预测未知基因的表达和功能[43]。珙桐叶绿体基因组高度保守,共筛选出37个高频密码子和27个高表达密码子,其中12个均以A或U结尾的密码子被确定为最优密码子(表4),最优密码子第3位碱基的组成与拟南芥(Arabidopsis thaliana)、烟草(Nicotiana tabacum)、杨树(Populus spp.等双子叶模式植物偏好相似[4446]。这些最优密码子不仅可以作为检测基因或开放阅读框表达水平的指标,还可以用于引物设计和点突变引入等生物育种研究当中。

    珙桐叶绿体基因组密码子使用偏好性较弱,其同义密码子使用偏好性除了主要受选择压力影响外,还受到突变压力、碱基组成和基因表达水平等因素的影响。同时筛选出12个最优密码子,可用于珙桐未来的遗传改良和种质创新研究。

  • 图  1   种子埋藏点位示意图

    Figure  1.   Schematic diagram of seed buried sites

    图  2   不同覆盖方式下物种萌发率

    不同大写字母表示不同覆盖方式相同点位下物种萌发率多重比较差异显著(P < 0.05),不同小写字母表示同一覆盖方式下物种萌发率的多重比较差异显著(P < 0.05)。Different capital letters indicate significant difference in multiple comparison of germination rate of species at the same point of varied mulching modes (P < 0.05), while different lowercase letters indicate significant difference in multiple comparison of germination rate of species at the same mulching modes (P < 0.05).

    Figure  2.   Germination rates of species under different covering modes

    图  3   不同埋深下的物种萌发率

    Figure  3.   Germination rates of species at different buried depth

    图  4   不同表土堆存方式下种子库密度变化

    Figure  4.   Variation of seed bank density under different topsoil stockpile methods

    表  1   供试植物种及种子基本信息

    Table  1   Basic information of tested plant species and seeds

    物种
    Species

    Family
    生活型 Life form千粒质量
    Thousand seed mass/g
    种子含水量
    Seed moisture
    content/%
    初始萌发率
    Initial germination
    rate/%
    柠条锦鸡儿
    Caragana korshinskii
    豆科
    Leguminosae
    灌木 Shrub 38.0 10.39 85
    花棒
    Hedysarum scoparium
    豆科
    Leguminosae
    灌木Shrub 23.0 8.55 65
    羊柴
    Hedysarum mongolicum
    豆科
    Leguminosae
    灌木 Shrub 21.5 9.69 70
    沙蒿
    Artemisia desertorum
    菊科
    Leguminosae
    多年生草本
    Perennial herb
    5.0 8.88 90
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    表  2   不同覆盖方式下的表土堆体温度

    Table  2   Temperature of surface mounds underdifferent covering modes

    覆盖方式
    Covering mode
    点位 Point position日最高温
    Daily maximum temperature/℃
    日最低温
    Daily minimum temperature/℃
    平均温度
    Average temperature/℃
    CTB C1-1 16.4 −1.7 6.6
    C1-2 16.9 −0.1 7.8
    C1-3 16.8 −3.2 5.9
    C2-1 21.5 −9.5 4.2
    C2-2 18.6 −8.2 3.9
    C3-1 22.1 −11.8 2.6
    MMW M1-1 32.1 3.3 14.7
    M1-2 33.4 4.2 16.0
    M1-3 36.1 4.5 16.5
    M2-1 26.9 −11.7 5.7
    M2-2 26.0 −7.2 7.6
    M3-1 21.1 −13.2 3.0
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    表  3   不同覆盖方式下的埋藏种子含水量

    Table  3   Water content of buried seeds under different covering modes %

    点位 Point position柠条锦鸡儿
    Caragana korshinskii
    花棒
    Hedysarum scoparium
    羊柴
    Hedysarum mongolicum
    沙蒿
    Artemisia desertorum
    C1-1 24.19 ± 0.10c 11.38 ± 0.09c 21.22 ± 0.04c 15.64 ± 0.02c
    C1-2 27.63 ± 0.11b 14.47 ± 0.13b 27.14 ± 0.12b 20.54 ± 0.03b
    C1-3 28.86 ± 0.17a 15.69 ± 0.08a 30.16 ± 0.11a 21.87 ± 0.02a
    C2-1 9.68 ± 0.06d 7.71 ± 0.06e 3.27 ± 0.01f
    C2-2 7.06 ± 0.07e 7.97 ± 0.13e 6.44 ± 0.07f 4.40 ± 0.01e
    C3-1 17.19 ± 0.12d 14.36 ± 0.07b 15.73 ± 0.10d 15.44 ± 0.02d
    M1-1 17.03 ± 0.13c 8.87 ± 0.05c 16.72 ± 0.05b 12.30 ± 0.03c
    M1-2 17.42 ± 0.10b 10.24 ± 0.06b 16.32 ± 0.06c 14.14 ± 0.03b
    M1-3 21.17 ± 0.07a 15.28 ± 0.07a 20.73 ± 0.07a 17.14 ± 0.03a
    M2-1 12.28 ± 0.10d 8.94 ± 0.03c 11.75 ± 0.08e 11.42 ± 0.03d
    M2-2 12.48 ± 0.11d 8.85 ± 0.05c 12.47 ± 0.05d 11.08 ± 0.02e
    M3-1 5.84 ± 0.08e 7.88 ± 0.06d 7.64 ± 0.07f 7.80 ± 0.02f
    注:小写字母表示同一覆盖方式下不同点位之间的比较,字母不同者之间有显著性差异(P < 0.05)。Notes: lowercase letters represent the comparison between different points in the same coverage mode. The same letter indicates that there is no significant difference among treatments for the same species (P < 0.05).
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    表  4   温度和种子含水量对萌发率的主效应和交互作用分析

    Table  4   Main effects and interaction analysis of temperature and seed water content on germination rate

    源 Sourcedf卡方值 Chi square valueSig.
    温度 Temperature 7 147.377 0.000
    种子含水量 Seed moisture content 125 5 736.752 0.000
    温度×种子含水量
    Temperature×seed moisture content
    3 241.316 0.000
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    表  5   物种和埋深对萌发率的主效应和交互作用分析

    Table  5   Main effects and interaction analysis of species and burial depth on germination rate

    源 Sourcedf卡方值 Chi square valueSig.
    物种 Species 3 274.086 0.001
    埋深 Buried depth 2 9.714 0.008
    物种×埋深 Species×buried depth 6 21.773 0.001
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    表  6   表土堆存4个月后的土壤种子库密度

    Table  6   Soil seed bank densities after 4 months of topsoil storage


    Family
    物种
    Species
    生活型
    Life form
    种子库密度/(粒·m−2) Seed bank density/(seed·m−2)
    初始密度
    Initial density
    MMWCTB
    藜科
    Chenopodiaceae
    尖头叶藜
    Chenopodium acuminatum
    一年生草本
    Annual herb
    220.42 ± 14.94 90.99 ± 9.41 154.95 ± 9.14
    雾冰藜
    Bassia dasyphylla
    一年生草本
    Annual herb
    12.61 ± 2.75 1.80 ± 0.90 7.21 ± 2.38
    沙蓬
    Agriophyllum squarrosum
    一年生草本
    Annual herb
    16.82 ± 4.20 9.01 ± 1.80 11.71 ± 0.90
    禾本科
    Gramineae
    狗尾草
    Setaria viridis
    一年生草本
    Annual herb
    53.45 ± 5.34 67.57 ± 1.56 59.46 ± 4.13
    画眉草
    Eragrostia pilosa
    一年生草本
    Annual herb
    12.01 ± 1.20 12.61 ± 0.90 0.90 ± 2.38
    菊科
    Compositae
    猪毛蒿
    Artemisia scoparia
    一年生草本
    Annual herb
    3.60 ± 1.04 4.50 ± 1.80 1.80 ± 0.90
    冷蒿
    Artemisia frigida
    多年生草本
    Perennial herb
    10.81 ± 1.04
    黑沙蒿
    Artemisia desertorum
    灌木
    Shrub
    5.41 ± 1.04 6.31 ± 0.90 2.70 ± 1.56
    合计
    Total
    335.14 ± 31.55 192.79 ± 17.27 249.55 ± 22.29
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出版历程
  • 收稿日期:  2021-09-29
  • 修回日期:  2021-11-30
  • 网络出版日期:  2022-03-31
  • 发布日期:  2022-04-24

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